Oak mushroom (Lentinus edodes) is cultivated by using oak logs and sawdust medium. Green mold (Trichoderma) infection on these media severely suppresses the growth of oak mushroom. Usages of antibiotics and chemicals are not generally allowed to control of green mold since the mushroom is a fresh food. Tolaasin and its analogues, peptide toxins secreted by Pseudomonas tolaasii, have the antifungal activity and they have been successful to control the green mold disease. When the green mold, Trichoderma harzianum H1, was cultured in the presence of these toxins, the growth of fungus was effectively suppressed. In sawdust media, when the bacterial culture supernatants were sprayed on the aerial hyphae of green molds, the fungal growth was completely suppressed. Particularly, the antifungal activity was greatly increased by the combined culture extracts of P. tolaasii 6264 and HK11 strains. Therefore, these bacterial strains and their peptide toxins were able to suppress the growth of green molds and these can be good candidates to prevent from Trichoderma disease in oak mushroom cultivation.
Tolaasin, a peptide toxin produced by Pseudomonas tolaasii, causes a serious disease on the cultivated mushrooms, known as brown blotch disease. Hemolysis using red blood cells was designed to measure the cytotoxicity of tolaasin molecules. Since tolaasin has two amine groups near the C-terminus, its membrane binding will be dependent on the ionic states of the amine groups. When the tolaasin peptide was titrated, its titration curve indicated the presence of titratable amine(s) at pH ranges from 7.0 to 9.6. When the pH-dependence of tolaasin-induced hemolysis was measured at various pHs, hemolysis was more efficient at alkaline pHs. In order to measure the membrane binding activity of tolaasin at different pHs, RBCs were incubated with tolaasin molecules for short time periods and washed out with fresh buffer. Because of the tolaasin binding during the preincubation period, fast hemolyses were observed at pH 8 or higher. These results imply that non-charged or less positively charged states of tolaasin molecules easily bind to membrane and show high hemolytic activity.
The antibacterial protein gene, nuecin was expressed in Sf9 cells using baculovirus expression vector system (BEVS). The antibactetial activity of mature nuecin against Pectobacterium carotovorum subsp. carotovorum, Ralstonia solanacearum and Pseudomonas tolaasii was significantly high, demonstrating that nuecin had a wider antibacterial spectrum on gram negative and positive bacteria. The result appears to be superior to other antibacterial peptide, attacin. The nuecin was purified by SP-sepharose and Mono Q HR ion-exchange chromatography, and then by Superdex 200 HR 10/30 column. The purified nuecin is quite stable at 80$\^{C}$ and 100$\^{C}$ for several hours of incubation and in a wide pH range (pH 2-12).
Brown blotch disease of oyster mushrooms is caused by tolaasin and its analog peptide toxins which are produced by Pseudomonas tolaasii. Tolaasin peptides form pores in the plasma membrane and destroy the fruiting body structure of mushroom. Lysis of red blood cells, hemolysis, can be occurred by cytotoxic activity of tolaasin. The hemolytic activity of tolaasin is inhibited by metal ions, such as Zn2+ and Ni2+. When Gadolinium ion was added, a biphasic effect was observed on tolaasin-induced hemolysis, an increase in hemolysis at submillimolar concentrations and an inhibition at millimolar concentrations. The mechanism of gadolinium ion-induced inhibition of tolaasin activity may not be similar to those of the inhibitions by other metal ions. Since gadolinium ion has been reported to change a lateral pressure of lipid membrane by binding to the negative charges of membrane lipids, it may not directly work on the tolaasin channel gating, but rather decrease the stability of tolaasin channel by increasing firmness of membrane.
Contamination and growth of Trichoderma, a green mold, on the oak log and wooden chip or sawdust media can severely inhibit the growth of oak mushroom. Chemicals including pesticides and antibiotics are generally not allowed for the control of green mold disease during mushroom cultivation. In this study, bacterial pathogens causing blotch disease on the oyster mushrooms were isolated and their peptide toxins were purified for the control of green mold disease. Strains of Pseudomonas tolaasii secret various peptide toxins, tolaasin and its structural analogues, having antifungal activities. These peptides have shown no effects on the growth of oak mushrooms. When the peptide toxins were applied to the green mold, Trichoderma harzianum H1, they inhibited the growth of green molds. Among the 20 strains of peptide-forming P. tolaasii, strong, moderate, and weak antifungal activities were measured from 8, 5, and 7 strains, respectively. During oak mushroom cultivation, bacterial culture supernatants containing the peptide toxins were sprayed on the aerial mycelia of green molds grown on the surface of sawdust media. The culture supernatants were able to suppress the fungal growth of green molds while no effect was observed on the mushroom growth and production. They changed the color of molds from white aerial mycelium into yellowish dried scab, representing the powerful anti-fungal and sterilization activities of peptide toxins.
Pseudomonas tolaasii causes brown blotch disease on the oyster mushroom (Pleurotus ostreatus). Various pathogenic strains of P. tolaasii were isolated and divided into three subtypes, $P1{\alpha}$, $P1{\beta}$, and $P1{\gamma}$. For phage therapy, bacteriophages against to these subtype strains were applied to mushroom cultivation and very successful to prevent from the disease. In this study, bacteriophages were isolated against the representative strains of subtype pathogens and their polyclonal antibodies were synthesized to investigate structural relationship among capsid proteins of phages. Phage preparations over $10^{10}pfu/mL$ were injected to rabbit thigh muscle and polyclonal antibodies were obtained after three times of boost injection. Titers of the antibodies obtained were over $2{\times}10^7Ab/mL$ for the phage ${\phi}6264$, $1{\times}10^6Ab/mL$ for the phage ${\phi}HK2$, and $1{\times}10^7Ab/mL$ for the phage ${\phi}HK19$ and phage ${\phi}HK23$. High specific activities were observed between antibodies and the corresponding bacteriophages. Some cross-reactivities between the antibodies and non-corresponding bacteriophages were also measured. Antibody $Ab{\phi}6264$ inactivated all phages of $P1{\alpha}$ subtype and only phage ${\phi}HK16$ among $P1{\beta}$ subtype phages. Antibody $Ab{\phi}HK23$ of $P1{\gamma}$ subtype neutralized all phages of $P1{\beta}$ subtype as well as the phage ${\phi}HK23$, showing the widest phage-inactivation range. When the structural-similarity studies of phages were investigated by using phage antibodies, closeness obtained by phylogenetic analysis of 16S rRNA genes of pathogenic strains were quite different from that of polyclonal antibody-specific structural similarity of phage capsid proteins. In conclusion, there is weak correlation between the host strain specificity of bacteriophage and its capsid structural similarity measured by phage antibodies.
A total of 12 strains of fluorescent Pseudomonas isolated from the cultivated mushrooms such as Agaricus bisporus and Pleurotus ostreatus were collected. They consisted of pathogenic Pseudomonas spp. and epiphytic Pseudomonas spp. of the cultivated mushroom. To analyze the phylogenetic relationship of these strains, ITS I region, the 16S-23S intergenic spacer region in the ribosomal RNA (rRNA) operon, was cloned and sequenced. The spacer regions of these strains were 495∼527 nucleotides in length and contained the genes encoding isoleucine-tRNA (tRNAIle) and alanine-tRNA (tRNAAla). The reciprocal homologies of each ITS I sequence among these strains were in the range of 84.2%∼98.8%. According to the analysis of ITS I sequences, the fluorescent Pseudomonas spp. were phylogenetically classified into three clusters. Cluster I consisted of Pseudomonas fluorescens, P. tolaasii, P. gingeri’, and P.‘reactans’(WLRO). Cluster II comprised Pseudomonas fluorescens biovar C and F. Cluster III composed P. agarici. Cluster I and II could be classified into P. fluorescens complex. P. agarici formed an independent taxon clearly separable from P. florescens complex.
This study was carried out in an attempt to select chemicals such as zeolite granules, chitosan, wood-vinegar, $Ca(OCl)_2$, NaOCl, against bacterial brown blotch caused by Pseudomonas tolaasii on Flammulina velutipes in laboratory and mushroom unit. Results obtained using these chemicals were summarized. Inhibitory effect on $Ca(OCl)_2$ and wood-vinegar with 0.5% concentration was shown to caual pathogen, P. tolaasii, by slight damage on the mycelial growth of F. velutipes. Those materials were recognized as promising one for control of bacterial brown bloth on F. velutipes. Disease incidence in control was the highest value as 43.8%; whereas chemical treatment was estimated as 14.6% with 0.5% of $Ca(OCl)_2$. Disease incidence was inhibited about 20% in chemical treatment with 0.5% of wood-vinegar, 1.0% of $Ca(OCl)_2$, and 26.1% with 1.0% of wood-vinegar. For the inhibition effects of chemical concentrations, it was effective at the low concentration which was 0.5% rather than that of 1.0%. Quality of mushrooms was significantly improved, and yields was also increased by 30% in the chemical treatment. In case of $Ca(OCl)_2$ treatment at 1.0% concentration, the yields was increased by 35.6% showed the highest value among tested chemicals. However, the overall effects including disease incidence, quality and yields suggests that $Ca(OCl)_2$ is relatively more effective than wood-vinegar, and the optimal concentration controlling the disease was $0.5{\sim}1.0%$ with $Ca(OCl)_2$ and 0.5% with wood-vinegar.
In this study, the bacterial communities distributed in sea water of the whitening areas of Gangjeong and Seongsan, Jeju-do have been analysed using the PCR amplification of 16S rRNA to obtain fundamental data and information on relationship of the whitening phenomenon and microbial ecosystem. In Gangjeong, diverse bacteria such as Alcanivorax, Paracoccus, Damselae, Pseudomonas, Rhodowlum, Silicibacter, Suiftobacter, and Roseobacter have been found, and Alcanivorax was the most abundant clone. The most abundant clone from Seongsan was Pseudomonas, of which Pseudomonas tolaasii and Pseudomonas mandeli were most abundantly occurred in the frequency of approx44% and 24%, respectively. Approx4% of the bacterial clones closest to Verrucomicrobiales and other unidentified clones were also fecund in Seongsan, suggesting there is a great discrepancy between bacterial communities from the whitening areas of Seongsan and Gangjeong. The mean temperature, chlorine concentration, pH, and dissolved oxygen (DO) of the sea water of Gangieong and Seongsan in August of 2001 (sampling period) was $27^{\circ}C$~$27.5^{\circ}C$, 30.24~30.60%, pH 8.23~8.36,7 .20~7.28 mg/ι, suggesting other environmental factors except far the factors mentioned above might result in difference of bacterial communities distributed in both areas.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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