A disease resistance related gene, MbR7, was identified in the wild apple species, Malus baccata. The MbR7 gene has a single open reading frame (ORF) of 3,288 nucleotides potentially encoding a 1,095-amino acid protein. Its deduced amino acid sequence resembles the N protein of tobacco and the NL27 gene of potato and has several motifs characteristic of a TIR-NBS-LRR R gene subclass. Ectopic expression of MbR7 in Arabidopsis enhanced the resistance against a virulent pathogen, Pseudomonas syringae pv. tomato DC3000. Microarray analysis confirmed the induction of defense-related gene expression in 35S::MbR7 heterologous Arabidopsis plants, indicating that the MbR7 gene likely activates a downstream resistance pathway without interaction with pathogens. Our results suggest that MbR7 can be a potential target gene in developing a new disease-resistant apple variety.
Ahn, Soon Young;Baek, Kwang-Hyun;Moon, Yong Sun;Yun, Hae Keun
The Plant Pathology Journal
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v.29
no.1
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pp.110-115
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2013
Theobroxide, a novel compound isolated from a fungus Lasiodiplodia theobromae, stimulates potato tuber formation and induces flowering of morning glory by initiating the jasmonic acid synthesis pathway. To elucidate the effect of theobroxide on pathogen resistance in plants, Nicotiana benthamiana plants treated with theobroxide were immediately infiltrated with Pseudomonas syringae pv. tabaci. Exogenous application of theobroxide inhibited development of lesion symptoms, and growth of the bacterial cells was significantly retarded. Semiquantitative RT-PCRs using the primers of 18 defense-related genes were performed to investigate the molecular mechanisms of resistance. Among the genes, the theobroxide treatment increased the expression of patho-genesis-related protein 1a (PR1a), pathogenesis-related protein 1b (PR1b), glutathione S-transferase (GST), allen oxide cyclase (AOC), and lipoxyganase (LOX). All these data strongly indicate that theobroxide treatment inhibits disease development by faster induction of defense responses, which can be possible by the induction of defense-related genes including PR1a, PR1b, and GST triggered by the elevated jasmonic acid.
A cDNA clone for a wound- and pathogen-induced gene in Chinese cabbage (Brassica rapa subsp. pekinensis) was isolated and characterized. The cabbage gene, designated BrPR4, encodes a pathogenesis-related protein 4 (PR4) of 140 amino acids. The BrPR4 protein shows high similarity with wound-inducible antifungal proteins of tobacco, potato, barley, and wheat. The BrPR4 gene is locally induced by a nonhost pathogen, Pseudomonas syringae pv. tomato, that elicits a hypersensitive response in Chinese cabbage. Treatment of the cabbage leaves with benzothiadiazole (BTH), methyl jasmonate or ethephon showed that the BrPR4 gene expression is strongly induced by ethylene, but not by methyl jasmonate or BTH. The BrPR4 gene is also activated by wounding. Interestingly, however, the wound-inducible BrPR4 gene expression is repressed by salicylic acid or BTH, suggesting that there is cross-talk between salicylate-dependent and -independent signaling pathways.
Plant defence responses to various biotic stresses via systemic acquired resistance (SAR) are induced by avirulent pathogens and chemical compounds, including certain plant hormones in volatile form, such as methyl salicylate and methyl jasmonate. SAR refers to the observation that, when a local part of a plant is exposed to elicitors, the entire plant exhibits a resistance response. In the natural environment, plants are continuously exposed to avirulent pathogens that induce SAR and volatile emissions affecting neighbouring plants as well as the plant itself. However, the underlying mechanism has not been intensively studied. In this study, we evaluated whether plants "memorise" the previous activation of plant immunity when exposed repeatedly to plant defensive volatiles such as methyl salicylate and methyl jasmonate. We hypothesised that stronger SAR responses would occur in plants treated with repeated applications of the volatile plant defence compound MeSA than in those exposed to a single or no treatment. Nicotiana benthamiana seedlings subjected to repeated applications of MeSA exhibited greater protection against Pseudomonas syringae pv. tabaci and Pectobacterium carotovorum subsp. carotovorum than the control. The increase in SAR capacity in response to repeated MeSA treatment was confirmed by analysing the defence priming of the expression of N. benthamiana Pathogenesis-Related 1a (NbPR1a) and NbPR2 by quantitative reverse-transcription PCR compared with the control. We propose the concept of plant memory of plant defence volatiles and suggest that SAR is strengthened by the repeated perception of volatile compounds in plants.
Kim, Min-Jung;Chae, Dae-Han;Cho, Gyeongjun;Kim, Da-Ran;Kwak, Youn-Sig
The Plant Pathology Journal
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v.35
no.5
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pp.473-485
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2019
Kiwifruit (Actinidia spp.) is an economically important crop and a bacterial canker disease, caused by Pseudomonas syringae pv. actinidiae (Psa), is the most destructive disease in kiwifruit production. Therefore, prevent and control of the disease is a critical issue in kiwifruit industry worldwide. Unfortunately, there is no reliable control methods have been developed. Recently, interest in disease control using microbial agents is growing. However, kiwifruit microbiota and their roles in the disease control is mainly remaining unknown. In this study, we secured bacterial libraries from kiwifruit ecospheres (rhizosphere, endospere, and phyllosphere) and screened reliable biocontrol strains against Psa. As the results, Streptomyces racemochromogenes W1SF4, Streptomyces sp. W3SF9 and S. parvulus KPB2 were selected as anti-Psa agents from the libraries. The strains showed forcible antibacterial activity as well as exceptional colonization ability on rhizosphere or phyllosphere of kiwifruit. Genome analyses of the strains suggested that the strains may produce several anti-Psa secondary metabolites. Our results will contribute to develop biocontrol strains against the kiwifruit canker pathogen and the disease management strategies.
Defense priming allows plants to enhance their immune responses to subsequent pathogen challenges. Recent reports suggested that acquired resistances in parental generation can be inherited into descendants. Although epigenetic mechanisms are plausible tools enabling the transmission of information or phenotypic traits induced by environmental cues across generations, the mechanism for the transgenerational inheritance of defense priming in plants has yet to be elucidated. With the initial aim to elucidate an epigenetic mechanism for the defense priming in plants, we reassessed the transgenerational inheritance of plant defense, however, could not observe any evidence supporting it. By using the same dipping method with previous reports, Arabidopsis was exposed repeatedly to Pseudomonas syringae pv tomato DC3000 (Pst DC3000) during vegetative or reproductive stages. Irrespective of the developmental stages of parental plants that received pathogen infection, the descendants did not exhibit primed resistance phenotypes, defense marker gene (PR1) expression, or elevated histone acetylation within PR1 chromatin. In assays using the pressure-infiltration method for infection, we obtained the same results as above. Thus, our results suggest that the previous observations on the transgenerational inheritance of defense priming in plants should be more extensively and carefully reassessed.
The mitogen-activated protein kinase (MAPK) signaling cascade is essential for a wide range of cellular responses in plants, including defense responses, responses to abiotic stress, hormone signaling, and developmental processes. Recent investigations have shown that the stress, ethylene, and MAPK signaling pathways negatively affect the formation of nitrogen-fixing nodules by directly modulating the symbiotic signaling components. However, the molecular mechanisms underlying the defense responses mediated by MAPK signaling in the organogenesis of nitrogen-fixing nodules remain unclear. In the present study, I demonstrate that the Medicago truncatula mitogen-activated protein kinase kinase 5 (MtMKK5)-Medicago truncatula mitogen-activated protein kinase 3/6 (MtMPK3/6) signaling module, expressed specifically in the symbiotic nodules, promotes defense signaling, but not ethylene signaling pathways, thereby inhibiting nodule development in M. truncatula. U0126 treatment resulted in increased cell division in the nodule meristem zone due to the inhibition of MAPK signaling. The phosphorylated TEY motif in the activation domain of MtMPK3/6 was the target domain associated with specific interactions with MtMKK5. I have confirmed the physical interactions between M. truncatula nodule inception (MtNIN) and MtMPK3/6. In the presence of high expression levels of the defense-related genes FRK1 and WRKY29, MtMKK5a overexpression significantly enhanced the defense responses of Arabidopsis against Pseudomonas syringae pv. tomato DC3000 (Pst DC3000). Overall, my data show that the negative regulation of symbiotic nitrogen-fixing nodule organogenesis by defense signaling pathways is mediated by the MtMKK5-MtMPK3/6 module.
Cinnamaldehyde is a natural compound extracted from cinnamon bark essential oil, acclaimed for its versatile properties in both pharmaceutical and agricultural fields, including antimicrobial, antioxidant, and anticancer activities. Although potential of cinnamaldehyde against plant pathogenic bacteria like Agrobacterium tumefaciens and Pseudomonas syringae pv. actinidiae causative agents of crown gall and bacterial canker diseases, respectively has been documented, in-depth studies into cinnamaldehyde's broader influence on plant pathogenic bacteria are relatively unexplored. Particularly, Pectobacterium spp., gram-negative soil-borne pathogens, notoriously cause soft rot damage across a spectrum of plant families, emphasizing the urgency for effective treatments. Our investigation established that the Minimum Inhibitory Concentrations (MICs) of cinnamaldehyde against strains P. odoriferum JK2, P. carotovorum BP201601, and P. versatile MYP201603 were 250 ㎍/ml, 125 ㎍/ml, and 125 ㎍/ml, respectively. Concurrently, their Minimum Bactericidal Concentrations (MBCs) were found to be 500 ㎍/ml, 250 ㎍/ml, and 500 ㎍/ml, respectively. Using RNA-sequencing analysis, we identified 1,907 differentially expressed genes in P. carotovorum BP201601 treated with 500 ㎍/ml cinnamaldehyde. Notably, our results indicate that cinnamaldehyde upregulated nitrate reductase pathways while downregulating the citrate cycle, suggesting a potential disruption in the aerobic respiration system of P. carotovorum during cinnamaldehyde exposure. This study serves as a pioneering exploration of the transcriptional response of P. carotovorum to cinnamaldehyde, providing insights into the bactericidal mechanisms employed by cinnamaldehyde against this bacterium.
A cDNA clone for a salicylic acid-induced gene in Chinese cabbage (Brassica rapa subsp. pekinensis) was isolated and characterized. The cabbage gene, designated Br-sil1 (for $\underline{B}$rassica $\underline{r}$apa $\underline{s}$alicylate-$\underline{i}$nduced $\underline{l}$lipase-like 1 gene), encodes a putative lipase that has the family II lipase motif GDSxxDxG around the active site serine. A database search showed that plant genomes have a large number of genes that contain the family II lipase motif. The lipase-like proteins include a myrosinase-associated protein, an anther-specific proline-rich protein APG, a pollen coat protein EXL, and an early nodule-specific protein. The Br-sil1 gene is strongly induced by salicylic acid and a non-host pathogen, Pseudomonas syringae pv. tomato, that elicits a hypersensitive response in Chinese cabbage. Treatment of the cabbage leaves with BTH, methyl jasmonate, or ethephon showed that the Br-sil1 gene expression is induced by BTH, but not by methyl jasmonate or ethylene. This indicates that the cabbage gene is activated via a salicylic acid-dependent signaling pathway. An examination of the tissue-specific expression revealed that the induction of the Br-sil1 gene expression by BTH occurs in leaves and stems, but not in roots and flowers. Without the BTH treatment, however, the Br-sil1 gene is not expressed in any of the tissues that were examined.
A cDNA clone for a salicylic acid-induced gene in Chinese cabbage (Brassica rapa subsp. pekinensis) was isolated and characterized. The cabbage gene encoding a protein of 392 amino acids contained a tandem array of two thiJ-like sequences. ThiJ is a thiamin biosynthesis enzyme that catalyzes the phosphorylation of hydroxymethylpyrimidine (HMP) to HMP monophosphate. Although the cabbage gene shows a similarity to bacterial thiJ genes, it also shares a similarity with the human DJ-1, a multifunctional protein that is involved in transcription regulation, male fertility, and parkinsonism. The cabbage thiJ-like gene is strongly induced by salicylic acid and a nonhost pathogen, Pseudomonas syringae pv. tomato, which elicits a hypersensitive response in Chinese cabbage. Treatment of the cabbage leaves with BTH, methyl jasmonate, or ethephon showed that the cabbage thiJ-like gene expression is also strongly induced by BTH, but not by methyl jasmonate or ethylene. This indicates that the cabbage gene is activated via a salicylic acid-dependent signaling pathway. Examination of the tissue-specific expression revealed that the induction of the cabbage gene expression by BTH occurs in the leaf, stem, and floral tissues but not in the root.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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