Kim, Ji-Young;Kim, Young-Chang;You, Lim-Jai;Lee, Ki-Sung;Ok, Ka-Jong;Hee, Min-Kyung;Kim, Chi-Kyung
Journal of Microbiology
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v.35
no.1
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pp.53-60
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1997
Pseudomonas sp. P20 and Pseudomonas sp. DJ-12 isolated from the polluted environment are capable of degrading biphenyl and 4-chlorobiphenyl (4CB) to produce benzoic acid and 4-chlorobenzoic acid (4CBA) respectively, by pcbABCD-encoded enzymes. 4CBA can be further degraded by Pseudomonas sp. DJ-12, but not by Pseudomonas sp P20. However, the meta-cleavage activities of 2, 3-dihydroxybiphenyl (2, 3-DHBP) and 4-chloro-2, 3-DHBP dioxygenases (2, 3-DHBD) encoded by pcbC in Pseudomonas sp. P20 were stronger than Pseudomonas sp. DJ-12. In this study, the pcbC gene encoding 2, 3-DHBD was cloned from the genomic DNA of Pseudomonas sp. P20 by using pKT230. A hybrid plasmid pKK1 was constructed and E. coli KK1 transformant was selected by transforming the pKK1 hybrid plasmid carrying pcbC into E. coli XL1-Blue. By transferring the pKK1 plasmide of E. coli KK1 into Pseudomonas sp. DJ-12 by conjugation, a recombinant strain Pseudomonas sp. P20, Pseudomonas sp. DJ-12, and the recombinant cell assay methods. Pseudomonas sp. DJ12-C readily degraded 4CB and 2, 3-DHBP to produce 2-hydroxy-6-oxo-6-phenylhexa-2, 4-dienoic acid (HOPDA), and the resulting 4CBA and benzoic acid were continuously catabolized. Pseudomonas sp. DJ12-C degraded 1 mM 4CB completely after incubation for 20 h, but Pseudomonas sp. P20 and Pseudomonas sp. DJ-12 showed only 90% and Pseudomonas sp. DJ-12 had, but its degradation activity to 2, 3-DHBP, 3-methylcatechol, and catechol was improved.
Kim, Ji-Young;Kim, Chi-Kyung;Ka, Jong-Ok;Min, Kyung-Hee;Park, Yong-Keun
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.24
no.6
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pp.657-663
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1996
Pseudomonas sp. P20 isolated from the polluted environment is capable of degrading biphenyl and 4-chlorobiphenyl. The pcbABCD genes responsible for degradation of biphenyl and 4-chlorobiphenyl were cloned using pBluescript SK(+) from the chromosomal DNA of Pseudomonas sp. P20 to construct pCK1 and pCK102, harbouring pcbABCD and pcbCD, respectively. The 2, 3-DHBP dioxygenase gene, pcbC, was cloned again from pCK102 by using pKT230 which is known as a shuttle vector and pKK1 hybrid plasmid was constructed. The E. coli KK1 transformant obtained by transforming the pKK1 into E. coli XL1-Blue showed 2, 3-DHBP dioxygenase activity. The specific 2, 3-DHBP dioxygenase activity of E. coli KK1 was similar to that of the E. coli CK102, but much higher than those of the natural isolates, Pseudomonas sp. DJ-12 and Pseudomonas sp. P20.
Pseudomonas sp. P20 was a bacterial isolate which has the ability to degrade 4-chlorobi- phenyl(4CB) to 4-chlorobenzoic acid via the process of meta-cleavage. The recombinant plasmid pCK1 was constructed by insetting the 14-kb EcoRI fragment of the chromosomal DNA containing the 4CB-degrading genes into the vector pBluescript SK(+). Subsequently, E. coli XL1-Blue was transformed with the hybrid plasmid producing the recombinant E. coli CK1. The recombinant cells degraded 4CB and 2,3-dihydroxybiphenyl(2,3-DHBP) by the pcbAB and pcbCD gene products, respectively. The pcbC gene was expressed most abundantly at the late exponential phase in E. coli CK1 as well as in Pseudomonas sp. P20, and the level of the pcbC gene product, 2,3-DHBP dioxygenase, expressed in E. coli CK1 was about two-times higher than in Pseudomonas sp. P20. The activities of 2,3-DHBP dioxygenase on catechol and 3-methylcatechol were about 26 to 31% of its activity on 2,3-DHBP, but the enzyme did not reveal any activities on 4-methylcatechol and 4-chlorocatechol.
2-Hydroxy-6-oxo-6phenylhexa-2,4-dienoate (HOPDA) hydrolase catalyzes the hydrolytic cleavage of HOPDA to bemzpate and 2-hydroxypenta-2, 4-dienoate (HPD) during microbial catabolism of biphenyl and polychlorinated biphenyls. A HOPDA hydrolase gene (pcbD) was isolated from the genomic library of Pseudomonas sp. P20 and designated as pCNUO1201; a 7.5-kb XbaI DNA fragment from Pseudomonas sp. P20 was inserted into the pBluescript SK(+) XbaI site. E. coli HB101 harboring pCNU1201 exhibited HOPDA hydrolase activity. The open reading frame (ORF) corresponding to the pcbD gene consisted of 855 base pairs with an ATG initiation codon and a TGA termination codon. The ORF was preceded by a rebosome-binding sequence of 5'-TGGAGC-3' and its G+C content was 55 mol%. The pcbD gene of Pseudomonas sp. P20 was located immedeately downstream of the pcbC gene encoding 2,3- dihydroxybiphenyl 1,2-dioxygenase, and approximately 4-kb upstream of the pcbE gene encoding HPD hydratase. The pcbK gene was able to encode a polypeptide with a molecular weight of 31,732 containing 284 amino acid residues. The deduced amino acid sequence of the HOPDA hydrolase of Pseudomonas sp. P20 exhibited high identity (62%) with those of the HOPDA hydrolases of P. putida KF715, P. pseudoalcaligenes KF707, and Burkholderia cepacia LB400, and also significant homology with those of other hydrolytic enzymes including esterase, transferase, and peptidase.
Three hundred thirty two bacterial colonies which were able to degrade crude oil were isolated from soil samples that were contaminated with oil in Daejon area. Among them, one bacterial strain was selected for this study based on its low surface tension ability, and this selected bacterial strain was identified as Pseudomonas sp. G314 through physiological-biochemical tests and analysis of its 16S rRNA sequence. Pseudomonas sp. G314 showed a high resistance to antibiotics such as ampicillin, chloramphenicol, spectinomycin, and streptomycin, and heavy metals such as Li, Cr, and Mn. It was found that the optimal pH and temperature for biosurfactant production of Pseudomonas sp. G314 were pH 7.0 and $30^{\circ}C$, respectively. After seven hours of inoculated, the biosurfactant activity reached the maximum, and surface tension of the culture broth was decreased from 72 to 25 dyne/cm. The crude biosurfactant was obtained from the culture broth by acid precipitation, followed by solvent extraction, evaporation and then freeze drying. The CMC (critical micelle concentration) value of the crude biosurfactant was 20 mg/L.
Pseudomonas sp. BCNU 106 isolated from industrial wastewater was able to produce indigo from indole by utilizing various organic solvents. BCNU 106 produced indigo effectively when grown in the presence of a large volume of p-xylene, propylbenzene, and mesitylene and a high level of indole. The present study demonstrated that the maximal yield was achieved with 20% (v/w) p-xylene and 4 g/l indole. Under these conditions, the indigo yield and the transformation efficiency of indole were 315.5 mg/l and 97%, respectively. The results suggest that Pseudomonas sp. BCNU 106 might be a potential candidate for industrially important indigo production.
In order to produce alkaline protease, psychrotrophic bacterium which have high enzyme activity at low temperature, was isolated by using enrichment culture from various samples and identified as genus alkalopsychrotropic Pseudomonas sp. RP-222. The optimal culture conditions for enzyme production were pH- 10.0, temperature-$20^{\circ}C$ and culture time-4 days. The optimum pH and temperature for the enzyme activity were pH 10.5 and $40^{\circ}C$, respectively and the enzyme was relatively stable at pH 7.0~13.0 and below $50^{\circ}C$. The enzyme was inhibited by ethylenediaminetetraacetate and phenylmethylsulfonylfluoride, indicating that the enzyme was a serine metalloenzyme, but considerably stable in the presence of surface active agents. Activity of the enzyme was increased by the addition of 0.05% Na-$\alpha$-olefin sulfonate.
Lim, Jong Chul;Chae, Jong Chan;Kim Youngsoo;Kim, Hyong Bai;Kim Chi Kyung
Journal of Microbiology
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v.34
no.4
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pp.349-354
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1996
Pseudomonas sp. P20 is a natural isolate which is capable of degrading biphenyl and 4-chlorobiphenyl. From a clone of pCK1022 harboring pcbCD genes of Pseudomonas sp P20, a pcbD gene encoding 2-hydroxy-6-oxo-6-phenylhexa-2, 4-dienoic acid (HOPDA) hydrolase was subcloned in Escherichia coli XL-1-Blue by using pBluescript SK(+) vector. The 2.8-kb HindII fragment harboring the pcbD gene cloned in pCK 1024 had a single site for each of XhoI, SalI, BstXI, and XbaI restriction enzymes. Escherichia coli CK1024 had a single site for each of XhoI, SalI, BstXI, and XbaI restriction enzymes. Escherichia coli CK1024 carrying pCK0124 degraded HOPDA to benzoate and 2-hydroxypenta-2, 4-dienoate by HOPDA hydrolase encoded by pcbD gene as effectively as E coli CK 1022 HARBORING pcbCD genes.
Three biphenyl-degrading microorganisms were isolated from polluted soil samples in Sasang-gu, Busan. Among them, isolate DS-94 showing the strong degrading activity was selected. The morphological, physiological, and biochemical characteristics of DS-94 were investigated by API 20NE and other tests. This bacterium was identified as the genus Pseudomonas by 16S rDNA sequencing and designated as Pseudomonas sp. DS-94. The optimum temperature and pH for the growth of Pseudomonas sp. DS-94 were $25^{\circ}C$ and pH 7.0, respectively. This isolate could utilize biphenyl as sole source of carbon and energy. Biphenyl-degrading efficiency of this isolate was measured by HPLC analysis. As a result of biological biphenyl-degradation at high biphenyl concentration (500 mg/L), biphenyl-removal efficiency by this isolate was 73.5% for 7 days.
Kim, Yang-Woo;Chun, Sung-Sik;Chung, Young-Chul;Roh, Jong-Soo;Sung, Nack-Kie
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.23
no.6
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pp.659-664
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1995
To improve stability of recombinant DNA pLC1 encoding endoglucanase gene and pGL1 encoding $\beta $-glucosidase gene, DNA fragments of genes coding endoglucanase and $\beta $-glucosidase were cloned within the recA gene on a pDR1453, and the pDRE10 and pDRG20 of recombinant plasmids were integrated into the recA gene on the E. coli 1100 chromosomal DNAs. The stability of inheritance was completely maintained in E. coli 1100; Transformants E. coli 1100/pDREIO and pDRG20 were expressed well by recA promoter and increased endoglucanase and $\beta $-glucosidase activities. This method can be used as a model to improve the stability of recombinant plasmid in large scale culture.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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