Rat renal proximal tubule suspension was prepared from adult male Sprague Dawley rat (250-300g) by mechanical (non-enzymatical) method and evaluated as a pontential model for mechanistic studies and early screening of nephrotoxicity, using anionic antibiotics (cephaloridine). Cephaloridine (CPL) produced an increase in LDH release into media. This release results from decrease a proximal tubule cell viability and subsequently increase the permeability of cell viability and subsequently increase the permeability of cell membrane. Since loss of intracellular potassium and ATP into media is the sign of disruption of cell membrane, especially basolateral membrane (BLM), CPL induced proximal tubule cell compromise also appear be associated with BLM, maybe $Na^+-K^+$ ATPase. Also seen was significant depression in brush border membrane (BBM) ALP activity and no significantly increase in BBM GGT activities. The inhibition of typical anion, PAH accumulation (especially, CPL 5 mM) and cation, TEA (especially, 4hours incubation) were seen dose dependently. This is because of CPL accumulation in renal proximal tubule and increase of cytotoxicity.
In this study, it was investigated whether immortalized proximal tubule cells transformed with pRSVT could survive through the numerous passages. Results were as follows: 1. The cells transfected with pRSVT formed rapidly growing, multilayered colonies within 2 weeks in a hormone defined medium. Domes were also observed in some of the cultures. 2. r-glutamyl transpeptidase activity was equivalent to that observed in primary renal proximal tubule cell cultures. 3. Transformed cells with pRSVT form tubules in matrigel following 20 passages. 4. Genomic DNA of transformants was digested with either the restriction enzyme Xba or BamH1. A band of approximately 7.5kb was detected with Xba. Three BamH1 bands were detected at approximately 15 kb, 6.5 kb, and 3 kb.
Renal proximal tubular hypertrophy and hyperfunction are known to be early manifestations of experimental and human diabetes. As the hypertrophy and hyperfunction have been suggested to be central components in the progression to renal failure, an understanding of their underlying causes is potentially important for the development of therapy. A primary rabbit kidney proximal tubule cell culture system was utilized to evaluate the possibility that the renal proximal tubular hypertrophy and hyperfunction observed in vivo in diabetes mellitus, can be attributed to effects of elevated glucose levels on membrane transport systems. Primary cultures of rabbit proximal tubules, which achieved confluence at 10 days, exhibited brush-border characteristics typical of proximal tubular cells. Northern analysis indicated $2.2{\sim}2.3$ and 2.0 kb Na/glucose cotransporter RNA species appeared in fresh and cultured proximal tubule cells after confluence, repectively. The cultured cells showed reduced Na/glucose cotransporter activity compared to fresh proximal tubules. Primary cultured proximal tubule cells incubated in medium containing 20 mM glucose have reduced ${\alpha}-MG$ transport compared to cells grown in 5 mM glucose. In the proximal tubule cultures incubated in medium containing 5 mM or 20 mM glucose, phlorizin at 0.5 mM inhibited 0.5 mM ${\alpha}-MG$ uptake by 84.35% or 91.85%, respectively. The uptake of 0.5 mM ${\alpha}-MG$ was similarly inhibited by 0.1 mM ouabain (41.97% or 48.03% inhibition was observed, respectively). In addition, ${\alpha}-MG$ uptake was inhibited to a greater extent when $Na^{+}$ was omitted from the uptake buffer (81.86% or 86.73% inhibition was observed, respectively). In cell homogenates derived from the primary cells grown in 5 mM glucose medium, the specific activity of the Na/K-ATPase $(6.17{\pm}1.27\;{\mu}mole\;Pi/mg\;protein/hr)$ was 1.56 fold lower than the values in cell homogenates treated with 360 mg/dl D-glucose, 20 mM $(9.67{\pm}1.22\;{\mu}mole\;Pi/mg\;protein/hr)$. Total $Rb^{+}$ uptake occurred at a significantly higher rate (1.60 fold increase) in primary cultured rabbit kidney proximal tubule cell monolayers incubated in 20 mM glucose medium $(10.48{\pm}2.45\;nM/mg\;protein/min)$ as compared with parallel cultures in 5 mM glucose medium. $Rb^{+}$ uptake rate in 5 mM glucose medium was reduced by 28% when the cultures were incubated with 1 mM ouabain. The increase of the $Rb^{+}$ uptake by rabbit kidney proximal tubule cells in 20 mM glucose could be attributed primarily to an increase in the rate of ouabain-sensitive $Rb^{+}$ uptake $(5\;mM\;to\;20\;mM;\;4.68{\pm}0.85\;to\;8.38{\pm}1.37\;nM/mg\;protein/min)$. In conclusion, the activity of the renal proximal tubular Na,K-ATPase is elevated in high glucose concentration. In contrast, the activity of the Nafglucose cotransport system is inhibited.
Testosterone이 serum-free medium에서 배양한 토끼의 신장 근위세뇨관 상피세포의 세포성장과 기능에 미치는 영향을 관찰한 바 다음과 같은 결과를 얻었다. 1. 토끼의 신장 근위세뇨관 상피세포는 testosterone 1 nM의 농도에서 유의한 세포 성장 촉진 효과를 나타내었고, testosterone 10 nM이상의 농도에서는 세포성장이 억제되었다. 2. Testosterone은 serum-free medium에서 성장촉진인자의 하나인 hydrocortisone을 growth supplement로 넣어준 serum-free medium에서 토끼 신장의 근위세뇨관 상피세포의 성장을 촉진시키었다. 3. Testosterone은 hydrocortisone을 growth supplement로 넣어준 serum-free medium에서 토끼 신장의 근위세뇨관 상피세포의 성장을 촉진시키었다. 4. Testosterone은 Northern blot analysis에 의하여 확인한 토끼 신장의 근위 세뇨관 상피세포의 ${\beta}-actin$ mRNA level은 증가되었다. 이상의 결과로 미루어 보아, serum-free 그리고 hormonally defined media에서 testosterone이 토끼의 신장 근위세뇨관 상피세포의 성장 및 기능에 대하여 촉진적으로 작용하는 것은 cellular mecrofilament의 중요한 구성단백의 하나로 밝혀진 ${\beta}-actin$의 합성 증가에 기인하는 것으로 생각된다.
Steroid hormone의 하나인 ${\beta}-estradiol$이 serum-free medium에서 배양한 토끼의 신장 근위세뇨관 상피세포의 세포성장과 기능에 미치는 영향을 관찰한 바 다음과 같은 결과를 얻었다 1. Serum-free medium에서 토끼의 신장 근위세뇨관 상피세포는 ${\beta}-estradiol$ 1 nM의 농도에서 유의한 세포 성장 촉진 효과를 나타내었고, ${\beta}-estradiol$ 10 nM이상의 농도에서는 세포성장이 억제되었다. 2. ${\beta}-Estradiol$은 serum-free medium에서 성장촉진인자의 하나인 hydrocortisone을 뺀 조건하에서 세포 성장을 증가시키었다. 3. ${\beta}-Estradiol$은 hydrocortisone을 growth supplement로 넣어준 serum-free medium에서 토끼 신장의 근위세뇨관 상피세포의 성장을 촉진시키었다. 4. ${\beta}-Estradiol$은 Northern blot analysis에 의하여 확인한 alpha I (IV) collagen mRNA level에는 별다른 변화를 보이지 않으나, ${\beta}-actin$mRNA level은 증가되었다. 이상의 결과로 미루어 보아, serum-free 그리고 hormonally defined media에서 ${\beta}-estradiol이$ 토끼의 신장 근위세뇨관 상피세포의 성장 및 기능에 대하여 촉진적으로 작용하는 것은 cellular microfilament의 중요한 구성단백의 하나로 밝혀진 ${\beta}-actin$의 합성 증가에 기인하는 것으로 생각된다.
The present study showed that receptor-mediated activation of rabbit kidney proximal tubule cells by angiotensin II, the $Ca^{2+}$ ionophore A23187, or the protein kinase C activator phorbol myristate acetate (PMA) all stimulated phospholipase D (PLD). This was demonstrated by the increased formation of phosphatidic acid, and in the presence of 0.5% ethanol, phosphatidylethanol (PEt) accumulation. Angiotensin II leads to a rapid increase in phosphatidic acid and diacylglycerol, and phosphatidic acid formation preceeded the formation of diacylglycerol. This result suggests that some phosphatidic acid seems to be formed directly from phosphatidylcholine hydrolyzed by Pill. On the other hand, EGTA substantially attenuated angiotensin II and A23187-induced PEt formation, and when the cells were pretreated with verapamil angiotensin II-induced Pill activation was completely abolished. These results provide the evidence that calcium ion influx is essential for the agonist-induced Pill activation. In addition, staurosporine, an inhibitor of protein kinase C, strongly inhibited PMA-induced PEt formation, but was ineffective on angiotensin II-induced PEt accumulation. $GTP{\gamma}S$ also stimulates PEt formation in digitonin-permeabilized cells, but pretreatment of the cells with pertussis toxin failed to suppress angiotensin II-induced PEt formation. From these results, we conclude that in the rabbit kidney proximal tubule cells the mechanisms of angiotensin II- and PMA-induced Pill activation are different from each other and mediated via a pertussis toxin-insensitive trimeric G protein.
The purpose of this study was to compare effects of insulin and IGFs on growth, apical membrane enzyme activities and membrane transport systems of primary cultured rabbit kidney proximal tubule cells. Results were as follows: 1. Insulin and IGF-I produced significant growth stimulatory effects at $5{\times}10^{-10}M.\;IGF-II(5×10^{-10}\;M)$ did not stimulate significant cell growth. 2. Insulin stimulated the phosphorylation of a 97 KD protein. It was difficult to determine whether this band represents insulin and/or the IGF-I receptor. 3. The activities of apical membrane enzymes (alkaline phosphatase, leucine aminopeptidase, and ${\gamma}-glutamyl \;transpeptidase)$ were observed to be diminished after the cells were placed in the culture environment. 4. The uptake of ${\alpha}-MG,$ Pi and Na was significantly increased in cells incubated with insulin or IGF-I, IGF-II had no effect on the uptake of these substrates. 5. Na-pump activity, as assayed by Rb uptake, was significantly increased in cells treated with insulin or IGFs. In conclusion, insulin and IGF-I exert stimulatory effects on growth and membrane transporter(glucose, Na, Pi, and Na-pump) activities in primary cultured rabbit kidney proximal tubule cells. IGF-II had no effect on cell growth and membrane transporter(glucose, Na and Pi) activities.
Using the methods of stopped-flow and epifluorescence microscopy with entrapped fluorophore, membrane permeability of $NH_3$ and weak acids in liposomes, renal brush border (BBMV) and basolateral membrane vesicles (BLMV), and primary culture cells from renal proximal tubule was measured. Permeability coefficient (cm/sec) of $NH_3$ was $(2.9{\times}10^{-2}$ in phosphatidylcholine liposome $25^{\circ}C)$, $5.9{\times}10^{-2}$ in renal proximal tubule cell $(37^{\circ}C)$, $4.0{\times}10^{-2}\;and\;2.4{\times}10^{-2}$ in BBMV and BLMV $(25^{\circ}C)$, respectively. Formic acid has the highest permeability coefficient among the weak acids tested, which was $4.9{\times}10^{-3}$ in liposome, $5.0{\times}10^{-3}$ in renal proximal tubule cell, $9.1{\times}10^{-3}$ in BBMV and $3.8{\times}10^{-3}$ in BLMV. There was a linear relationship between external concentration of nonionized formic acid and initial rate of flux of formic acid in liposome, and the slope coincided with the value of permeability coefficient of formic acid measured in pH 7.0. These results show that techniques of stopped-flow and epifluorescence microscopy with entrapped fluorophore provide the precise method of measurement of very rapid transport of nonelectrolytes through membranes with the advantages of instantaneous mixing effect, good resolution time and easy manipulation.
The mechanisms of $estradiol-17{\beta}$ regulating growth of both normal and neoplastic cells are not clear until now. In studies using various estrogen-dependent breast cell lines, it is recently known that estrogen controls the cell growth by regulating the expression of growth factors and/or their receptors. In the present study, we investigated the effects of $estradiol-17{\beta}$on cell growth and IGF-I binding sites using primary cultured renal proximal tubule cells. We have obtained results as follows : $Estradiol-17{\beta}(10^{-9})$ has stimulatory effects in cell growth. Cotreatment of $estradiol-17{\beta}(10^{-9}M)$ and $IGF-I(5{\times}10^{-8}M)$ significantly increased the growth of primary rabbit renal proximal tubule cells compared to that of $estradiol-17{\beta}$ or IGF-I alone treated cells. In binding studies, we found that the binding of $^{125}IGF-I$ on cell membranes was incubation time- and temperature-dependent. Incubation at $37^{\circ}C$ results in higher binding of $^{125}IGF-I$ than that of $23^{\circ}C$ or $4^{\circ}C$. Maximum binding was observed at $37^{\circ}C$ between 30 and 60 minutes. The binding of $^{125}IGF-I$ to both control and $estradiol-17{\beta}-treated$ cells was inhibited by unlabelled $IGF-I(10^{-8}{\sim}10^{-12}M)$ in a concentration-dependent manner. However, EGF did not compete for $^{125}IGF-I$ binding at $10^{-8}{\sim}10^{-12}M$. IGF-I binding to the membranes from both control and $estradiol-17{\beta}-treated$ cells was also analyzed. We found that $estradiol-17{\beta}-treated$ cells exhibited higher binding activity for IGF-I. When $estradiol-17{\beta}$ or tamoxifen alone, or $estradiol-17{\beta}$ and tamoxifen cotreated cells were compared, the binding ratio of $^{125}I-IGF-I$ of $estradiol-17{\beta}-treated$ cell was significantly increased but was similar to control in both $estradiol-17{\beta}$ and tamoxifen cotreated cell. These results suggest that $estradiol-17{\beta}$ in part controls cell proliferation by regulating the expression of IGF-I receptors in primary rabbit renal proximal tubule cells.
This study investigated the properties of primary cultured proximal tubule cells in hormonally defined(insulin, transferrin, and hydrocortisone), serum-free medium or 10% serum-supplemented medium. The growth rate of the primary cultured proximal tubule cells was lower in the hormonally defined, serum-free medium than in the 10% serum- supplemented medium(p < 0.05), while the activities of brush border marker enzymes, alkaline phosphatase(AP), leucine aminopeptidase(LAP), and y-glutamyl transpeptidase(${\gamma}$-GTP) were increased(p < 0.05). The activities of these enzymes, however, decreased with the lapse of incubation time to 50-70% after 6 days culture compared to those of the freshly-prepared proximal tubules. The enzymatic activities of the primary cultured proximal tubul cells on 6, 9, 12, and 15 days of culture were significantly increased in the hormonally defined, serum-free medium compared to the 10% serum-supplemented medium(p < 0.05). The functional differentiation of the primary culture was examined by observing multicellular domes of the confluent monolayer, which is indicative of transepithelial solute transport. The dome formation by the proximal tubule cultures occurred at a higher frequency in the hormonally defined, serum-free medium than in the 10% serum-supplemented medium(p < 0.05). Upon electron microscopic examination, an increased density of the brush border was observed in the hormonally defined, serum-free medium compared to the cells grown in 10% serum-supplemented medium. The activities of $Na^+$glucose cotransporter($^{14}C$-a-MG uptake), $Na^+$phosphate cotransportere($^{32}P$ uptake) and $Na^+$ transporter($^{22}Na^+$ uptake) in the brush border membrane, and of $Na^+/K^+$-ATPase($^{86}Rb$ uptake) in the basolateral membrane were significantly stimulated in the hormonally defined, serum-free medium than in 10% serum-supplemented medium(p < 0.05). In conclusion, the primary cultured proximal tubule cells grown in the hormonally defined, serum-free medium demonstrated a slower growth rate, but the functions of cell were enhanced.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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