In the process of tumorigenesis, normal cells are remodeled to cancer cells and protein expression patterns are changed to those of tumor cells. A newly formed tumor microenvironment elicits the immune system and, as a result, a humoral immune response takes place. Although the tumor antigens are undetectable in sera at the early stage of tumorigenesis, the nature of an antibody amplification response to antigens makes tumor-associated autoantibodies as promising early biomarkers in cancer diagnosis. Moreover, the recent development of proteomic techniques that make neo-epitopes of tumor-associated autoantigens discovered concomitantly has opened a new area of 'immuno-proteomics', which presents tumor-associated autoantibody signatures and confers information to redefine the process of tumorigenesis. In this article, the strategies recently used to identify and validate serum autoantibodies are outlined and tumor-associated antigens suggested until now as diagnostic/prognostic biomarkers in various tumor types are reviewed. Also, the meaning of autoantibody signatures and their clinical utility in personalized medicine are discussed.
Our previous proteomic study demonstrated that oxidative stress and antioxidant delphinidin regulated the cellular level of $p27^{kip1}$ (referred to as p27) as well as some heat shock proteins in human colon cancer HT 29 cells. Current study was conducted to validate and confirm the regulation of these proteins using both in vitro and in vivo systems. The level of p27 was decreased by hydrogen peroxide in a dose-dependent manner in human colon carcinoma HCT 116 (p53-positive) cells while it was increased upon exposure to hydrogen peroxide in HT 29 (p53-negative) cells. However, high concentration of hydrogen peroxide (100 ${\mu}M)$ downregulated p27 in both cell lines, but delphindin, one of antioxidative anthocyanins, enhanced the level of p27 suppressed by 100 ${\mu}M$ hydrogen peroxide. ICR mice were injected with varying concentrations of hydrogen peroxide, delphinidin and both. Western blot analysis for the mouse large intestinal tissue showed that the expression of p27 was upregulated by 25 mg/kg BW hydrogen peroxide. To investigate the association of p27 regulation with hypoxia-inducible factor 1-beta (HIF-$1{\beta}$), the level of p27 was analyzed in wild-type mouse hepatoma hepa1c1c7 and Aryl Hydrocarbon Nuclear Translocator (arnt, HIF-$1{\beta}$)-defective mutant BPRc1 cells in the absence and presence of hydrogen peroxide and delphinidin. While the level of p27 was responsive to hydrogen peroxide and delphinidin, it remained unchanged in BPRc1, suggesting that the regulation of p27 requires functional HIF-$1{\beta}$. We also found that hydrogen peroxide and delphinidin affected PI3K/Akt/mTOR signaling pathway which is one of upstream regulators of HIFs. In conclusion, hydrogen peroxide and antioxidant delphinidin seem to regulate intracellular level of p27 through regulating HIF-1 level which is, in turn, governed by its upstream regulators comprising of PI3K/Akt/mTOR signaling pathway. The results should also encourage further study for the potential of p27 as a biomarker for intracellular oxidative or antioxidant status.
Park, Ji-Sook;Cha, Dong-Hyun;Jung, Jin-Woo;Kim, Young-Hwan;Lee, Sook-Hwan;Kim, Young-Jun;Kim, Kwang-Pyo
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.20
no.6
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pp.959-967
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2010
Down syndrome (DS) is an abnormality of the 21st chromosome that commonly occurs in children born to older women. Thus, amniotic fluid (AF) is usually collected from such women for prenatal diagnosis. This study analyzed human AF supernatants (AFS) using a mass spectrometric (MS) approach to search for candidate biomarkers of a DS pregnancy. The AFS were collected from older pregnant women at weeks 16-18 of their gestation by amniocentesis for cytogenetic analysis. The AFS from the pregnancies carrying DS (n=4) or chromosomally normal (n=6) fetuses, as revealed by the cytogenetic analysis, were then subjected to global protein profiling based on liquid chromatography-electrospray ionization-tandem mass spectrometry (LC-ESI-MS/MS). Affinity chromatography was also applied prior to the LC-ESI-MS/MS to minimize the masking effect of highly abundant albumin and immunoglobulin and thereby increase the diversity of the identified proteins. As a result, at least 30 new AFS proteins were identified and 44 AFS proteins were found to be differentially expressed between the DS and normal cases, where 6 of the proteins were unique to the DS cases and 11 were unique to the chromosomally normal cases. In addition, in the DS cases, 19 AFS proteins were downregulated and 8 were upregulated to varying degrees. A Western blot analysis confirmed the LC-ESI-MS/MS data, indicating that the combined detection of apolipoprotein A-II (apoA-II) and alpha-fetoprotein (AFP) could be a potential tool for diagnosing DS cases.
Na, Chan Hyun;Hong, Ji Hye;Kim, Wan Sup;Shanta, Selina Rahman;Bang, Joo Yong;Park, Dongmin;Kim, Hark Kyun;Kim, Kwang Pyo
Molecules and Cells
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v.38
no.7
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pp.624-629
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2015
Since the emergence of proteomics methods, many proteins specific for renal cell carcinoma (RCC) have been identified. Despite their usefulness for the specific diagnosis of RCC, such proteins do not provide spatial information on the diseased tissue. Therefore, the identification of cancer-specific proteins that include information on their specific location is needed. Recently, matrix-assisted laser desorption ionization (MALDI) mass spectrometry (MS) based imaging mass spectrometry (IMS) has emerged as a new tool for the analysis of spatial distribution as well as identification of either proteins or small molecules in tissues. In this report, surgical tissue sections of papillary RCC were analyzed using MALDI-IMS. Statistical analysis revealed several discriminative cancer-specific m/z-species between normal and diseased tissues. Among these m/z-species, two particular proteins, S100A11 and ferritin light chain, which are specific for papillary RCC cancer regions, were successfully identified using LC-MS/MS following protein extraction from independent RCC samples. The expressions of S100A11 and ferritin light chain were further validated by immunohistochemistry of human tissues and tissue microarrays (TMAs) of RCC. In conclusion, MALDI-IMS followed by LC-MS/MS analysis in human tissue identified that S100A11 and ferritin light chain are differentially expressed proteins in papillary RCC cancer regions.
Park, Jong-Moon;Han, Na-Young;Kim, Hokeun;Hwang, Injae;Kim, Jae Bum;Hahm, Ki-Baik;Lee, Sang-Won;Lee, Hookeun
Mass Spectrometry Letters
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v.5
no.1
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pp.16-23
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2014
Liquid chromatography based mass spectrometry (LC-MS) is a key technology for analyzing highly complex and dynamic proteome samples. With highly accurate and sensitive LC-MS analysis of complex proteome samples, efficient data processing is another critical issue to obtain more information from LC-MS data. A typical proteomic data processing starts with protein database search engine which assigns peptide sequences to MS/MS spectra and finds proteins. Although several search engines, such as SEQUEST and MASCOT, have been widely used, there is no unique standard way to interpret MS/MS spectra of peptides. Each search engine has pros and cons depending on types of mass spectrometers and physicochemical properties of peptides. In this study, we describe a novel data process pipeline which identifies more peptides and proteins by correcting precursor ion mass numbers and unifying multi search engines results. The pipeline utilizes two open-source software, iPE-MMR for mass number correction, and iProphet to combine several search results. The integrated pipeline identified 25% more proteins in mouse epididymal adipose tissue compared with the conventional method. Also the pipeline was validated using control and colitis induced colon tissue. The results of the present study shows that the integrated pipeline can efficiently identify increased number of proteins compared to the conventional method which can be a breakthrough in identification of a potential biomarker candidate.
Oh, Donggeun;Lee, Sun Young;Kwon, Meehyang;Kim, Sook-Kyung;Moon, Myeong Hee;Kang, Dukjin
Mass Spectrometry Letters
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v.5
no.3
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pp.63-69
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2014
In this study, we present a new isotope-coded carbamidomethylation (iCCM)-based quantitative proteomics, as a complementary strategy for conventional isotope labeling strategies, with providing the simplicity, ease of use, and robustness. In iCCM-based quantification, two proteome samples can be separately isotope-labeled by means of covalently reaction of all cysteinyl residues in proteins with iodoacetamide (IAA) and its isotope (IAA-$^{13}C_2$, $D_2$), denoted as CM and iCCM, respectively, leading to a mass shift of all cysteinyl residues to be + 4 Da. To evaluate iCCM-based isotope labeling in proteomic quantification, 6 protein standards (i.e., bovine serum albumin, serotransferrin, lysozyme, beta-lactoglobulin, beta-galactosidase, and alpha-lactalbumin) isotopically labeled with IAA and its isotope, mixed equally, and followed by proteolytic digestion. The resulting CM-/iCCM-labeled peptide mixtures were analyzed using a nLC-ESI-FT orbitrap-MS/MS. From our experimental results, we found that the efficiency of iCCM-based quantification is more superior to that of mTRAQ, as a conventional nonisobaric labeling method, in which both of a number of identified peptides from 6 protein standards and the less quantitative variations in the relative abundance ratios of heavy-/light-labeled corresponding peptide pairs. Finally, we applied the developed iCCM-based quantitative method to lung cancer serum proteome in order to evaluate the potential in biomarker discovery study.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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