Characterization of a purified proteinase from T4chomoncs uoginalis was carried out using bacitracin-sepharose affinity chromatography. Trichomonos uqginolis KT-9 isolate was used as a source of eye study Proteinase activity was determined using Bz-Pro- Phe-Arg-Nan as the substrate. Optimum pH for the purified proteinase activity was 7.0 and 6.0, 9.0 with DTT. Optimum temperature was 37℃ and isoelectric point was 7.2 Activity of this proteinase was inhibited by E-64, antipain, leupeptin, Hg2+ and Zn2+ and activated by DTT and cysteine. Activity of the purified proteinase was visualized by gelatin SDS- PAGE. The gelatinolytic activity of the purified proteinase was inhibited by E-64, antipain, leupeptin, and IAA, but not by PMSF and EDTA. On SDS-PAGE, the molecular weight of the purified proteinase was 60,000 daltons. Sera of rabbits infected with T. vaginalis reacted specifically in immunoblots with this proteinase. These results indicate that 60 kDa of purified proteinase was cysteine proteinase with antigenicity.
A proteolytic enzyme was purified from the tissue extract of spargana (plerocercoids of Spirometra erinacei) by DEAE-Trisacryl M ion exchange chromatography and thiopropyl-sepharose affinity chromatography resulted in a 21-fold purification. The proteinase activity was assayed with a synthetic fluorescent substrate, carbobensoxy-phenylalanyl-7-amiso-4-trifluoromethyl-coumarin. SDS-polyacplamide gel electrophoresis of the purified materials revealed a single 28,000 dalton band. Inhibitor profiles of the band indicated that it belonged to cysteine endopeptidases. It exhibited identical pH curves with optimum at pH 5,5, and 50% activity from pH 4.7 to 8. It could completely degrade collagen chains to three identical products. It also showed some activity on hemoglobin. Furthermore, the band on immunoblots was reactive to the sera of sparganosis patients. These results suggest that the proteolytic enzyme belongs to cysteine proteinase which plays a role in the tissue penetration. Also it may be used as the antigen for diagnosis of active sparganosis.
The present study intended to verify activities of cysteine proteinase of Pneumocystis carinii from rats and to purify the enzyme. In order to exclude the contamination of host-derived enzymes, concentrates of P. carinii was primarily treated with a mixture of proteinase inhibitors before Iysis of P carinii. A 68-kDa cysteine proteinase was finally purified from the crude extract of P. carinii by 4 sequential chromatographic methods. The enzyme showed an optimal activity at pH 5.5 in 0.1 M sodium acetate, and its activity was specifically inhibited by L-trans-epoxy-succinylleucylamido (4-guanidino) butane (E-64) and iodoacetic acid, suggesting that the enzyme is a cysteine proteinase. The 68-kDa proteinase weakly digested rnacrornolecules such as collagen, hemoglobin and fibronectin. The present study demonstrated the activity of cysteine proteinase at the 68-kDa band of P. carinii, and purified and characterized the molecule.
Hyun PARK;Man Young KO;Moon Kee PAIK;Ching Thack SOH;Jang Hoon SEO;Kyung-il IM
Parasites, Hosts and Diseases
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v.33
no.3
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pp.211-218
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1995
To clarify the correlation of the proteinase activity with pathogenicity of Clonorrhis sinensis, the proteinase activity either in excretory-secretory products (ESP) or in crude extracts of adult C. sinensis was examined. Substrate gel electrophoresis of the ESP and crude extracts revealed four distinct enzyme bands, which were differently inhibited by the specific proteinase inhibitors. The proteinase of the ESP with molecular mass of 24 kDa, was purified 23-fold with 14.5% yield by spectra gel ACA 44 gel filtration. It exhibited optimal pH at 7.5 in sodium phosphate (0.1 M). Its activity was inhibited specifically by N-ethylmaleimide (NEMI and antipain whereas potentiated 1.9 folds in the presence of 5 mM dithiothreitol (DTT). Cytotoxicity of the proteinase increased in a dose- dependent manner up to 120 ㎍/ml while reduced by NEM and antipain, indicating that cysteine proteinase was responsible for the cytotoxicity. This result shows that the 24 kDa cysteine proteinase is deeply correlated with the pathogenicity of C. sinensis infection.
Aspergillus sp. MK-24 was cultured at 3$0^{\circ}C$ in the medium consisting of 2% glucose, 0.2% NaNO$_3$, 0.02% $K_2$HPO$_4$, 0.02% MgSO$_4$ 7$H_2O$, 0.02% KCl, and at initial pH of 5.0. The production of the inhibitor on venom proteinase reached to the maximum in 7 days. Sodium nitrate or potassium nitrate as a nitrogen source was favorable. The production of inhibitor was not affected by the addition of most of the inorganic salt used but depressed by lead, zinc, cobalt, mercuric or silver salts.
Although considerable effort has been devoted in the mass spectrometric analysis of phosphorylated peptides, successful identification of multi-phosphorylated peptides in enzymatically digested protein samples still remains challenging. The ionization behavior of multi-phosphorylated peptides appears to be somewhat different from that of mono- or di-phosphorylated peptides. In this study, we demonstrate increased sensitivity of detection of multi-phosphorylated peptides of beta casein without using phosphopeptide enrichment techniques. Proteinase K digestion alone increased the detection limit of beta casein multi-phosphorylated peptides in the LC-MS analysis almost 500 fold, compared to conventional trypsin digestion (~50 pmol). In order to understand this effect, various factors affecting the ionization of phosphopeptides were investigated. Unlike ionizations of phosphopeptides with minor modifications, those of multi-phosphorylated peptides appeared to be subject to effects such as selectively suppressed ionization by more ionizable peptides and decreased ionization efficiency by multi-phosphorylation. The enhanced detection limit of multi-phosphorylated peptides resulting from proteinase K digestion was validated using a complex protein sample, namely a lysate of HEK 293 cells. Compared to trypsin digestion, the numbers of phosphopeptides identified and modification sites per peptide were noticeably increased by proteinase K digestion. Non-specific proteases such as proteinase K and elastase have been used in the past to increase detection of phosphorylation sites but the effectiveness of proteinase K digestion for multi-phosphorylated peptides has not been reported.
This study has been carried out to investigate proteinase activity of digestive juice and sucrase activity of midgust tissue in the 5th day of the 5th instar influenced by the dietary composition (quantitative ratio between carbohydrate and protein) and tile rearing temperature during the 4th moulting period. The larvae grew on three kinds of semi-synthetic diet. The A-diet has more carbohydrate than the others, the B-diet has carbohydrate in 1 : 2 with protein, and the C-diet has more protein than the others. All the diets were kept at 16$^{\circ}C$, 25$^{\circ}C$ and 33$^{\circ}C$ during the 4th moulting period. Proteinase activity of digestive juice at the 5th day of the 5th instar was analyzed by Anson's hemoglobin method. Sucrase activity of midgut tissue at the 5th day of 5th instar was analyzed by Somogyi-Nelson's method. The results were as follows. 1. The dietary composition influencing contents of blood sugar was not related to the rearing temperature during the 4th moulting period. The contents of blood sugar appeared to increase in A-diet, B-diet and C-diet order, while proteinase and sucrase activity were stronger in C-diet, B-diet and A-diet order. 2. All kinds of diets showed almost the same fact that proteinase activity at 16$^{\circ}C$ was stronger than that at 32$^{\circ}C$. 3. It was found that sucrase activity became gradualy stronger at 32$^{\circ}C$, 25$^{\circ}C$ and 16$^{\circ}C$ in order in all kinds of diets. 4. There was an interaction in proteinase activity between the dietary composition and the rearing temperature in male larval digestive juice during the 4th mouiting period. On the other hand, there was an inter-acion in sucrase activity between the dietary composition and the rearing temperature in both female and male larval midgut tissue during the 4th moulting period.
Southern hybridization of genomic DNAs with radioactively labeled cDNA of tomato proteinase inhibitor II revealed that proteinase inhibitor II proteins in potato plants are encoded by a family of about 10 related sequences. Screening of potato EcoRI genomic library with the cDNA resulted in isolation of 13 recombinant phage clones which carry 3 different genomic regions. Of these clones, clones 8, 18, and 39 were subjected to restriction mapping and subcloning. Further characterization of the subclones of clones 8, 18 and 39 indicated that two inhibitor II genes are present on a 8.0 kb EcoRI fragment of clone 8, one on 3.3 and 0.8 kb EcoRI fragments of clone 18 and two genes on a 13.5 kb EcoRI fragment of clone 39.
The resistance of a non-transgenic poplar clone, 'Ogy' and three transgenic poplar lines to the cottonwood leaf beetle, Chrysomela scripta F., was evaluated by in vitro feeding. The lines were transformed with neomycin phosphotransferase II(NPT II) as a selectable marker, proteinase inhibitor II(pin2) as a resistance gene, and CaMV 35S as a promoter. An efficient method of sterilizing the beetle eggs and introducing them into plant tissue cultures was developed. The resistance of the transgenic lines was investigated in terms of effects tin leaf area consumed, insect weight, insect developmental stages, and plantlet root dry weight after feeding. Also, leaf area consumed was examined by leaf age as measured through leaf plastochron index(LPI). The leaf area consumed and insect weight were highly significant between transformants and control, and insect development in vitro was significant among the transgenic lines. Larval infestation was the most severe around LPI 4 to 5 which were young leaves. The system provided a quick, highly controlled method to screen developing transgenic plantlets directly.
This study was investigated on properties and thermostability of gelatin-degrading proteinases in the fruit of Actinidia chinensis (kiwifruit) for the industrial application. Three gelatin-degrading proteinases (PI, PII and PIII) were detected from the pulp of fruits. The molecular weights of these proteinases, PI, PII and PIII, were approximately 220 kD, 51 kD, and 26 kD respectively, on the basis of gelatin-containing SDS-PACE. The optimum pH of these proteinases ranged from 2.0 to 5.0 with a maximal activity at pH 4.0. These proteinases had a high sensitivity to E-64 and iodoacetate which are cysteine protease inhibitors, and required DTT, cysteine, and $\beta$-mercaptoethanol for their activities which are stimulators for cysteine proteases. These results indicate that these proteinases are cysteine proteinases and the proteinase PIII is actinidin (EC 3.4.22.14), based on the molecular weight and/or susceptibility against proteinase inhibitors. These proteinases were strongly activated by $Ca^{2+}$, $Mg^{2+}$ and $Mn^{2+}$, whereas strongly inhibited by Zn$^{2+}$ and Hg$^{2+}$. However, these proteinases have slightly different susceptibility against other cations ($Ca^{2+}$, $Cu^{2+}$, $Al^{3+}$, $Ca^{3+}$. The temperature stability of proteinase PIII was more stable than proteinases PI and PII. Moreover, proteinase PIII remained stable below $50^{\circ}C$ for 48hr, showing the residual activity above 75% of the enzyme activity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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