Phage P22 tailspike is a thermostable homotrimeric protein, and temperature-sensitive folding (tsf) and global suppressor mutations affect its folding yields at elevated temperatures. We earlier suggested that the folding of the tailspike protein in Escherichia coli requires an unidentified molecular chaperone. Accordingly, in the present study, the interactions of purified DnaK, DnaJ, and GrpE heat-shock proteins with the tailspike protein were investigated during the translation and folding of the protein. The cotranslational addition of DnaJ to the tailspike protein resulted in the arrest of folding, when Dnak and GrpE were missing. However, the presence of DnaK, DnaJ, and GrpE had no effect on the folding yield of the tails pike protein, thus, providing evidence for the binding of the nascent tailspike protein with DnaJ protein, a member of DnaK chaperoning cycle.
To explore protein folding mechanism, we simulated a folding pathway in a simplified 3×3×3 cubic lattice. In the lattice folding Monte Carlo simulations, each of the 28 possible native packing pairs that exist in the native conformation was used as a conformational restraint. The native packing restraints in the lattice model could be considered as a disulfide linkage restraint in a real protein. The results suggest that proteins denatured with a small disulfide loop can, but not always, fold faster than proteins without any disulfide linkage and than proteins with a larger disulfide loop. The results also suggest that there is a rough correlation between loop size of the native packing restraint and folding time. That is, the order of native residue-residue packing interaction in protein folding is likely dependent on the residue-residue distance in primary sequence. The strength of monomer-monomer pairwise interaction is not important in the determination of the packing order in lattice folding. From the folding simulations of five strong folding lattice sequences, it was also found that the context encoded in the primary sequence, which we do not yet clearly understand, plays more crucial role in the determination of detailed folding kinetics. Our restrained lattice model approach would provide a useful strategy to the future protein folding experiments by suggesting a protein engineering for the fast or slow folding research.
Jung, Chan-Hun;Lim, Jeong Hun;Lee, Kyunghee;Im, Hana
Bulletin of the Korean Chemical Society
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v.35
no.9
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pp.2781-2786
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2014
Human ${\alpha}_1$-antitrypsin (${\alpha}_1$-AT) is a natural inhibitor of neutrophil elastases and has several dozens of genetic variants. Most of the deficient genetic variants of human ${\alpha}_1$-AT are unstable and cause pulmonary emphysema. However, the most clinically significant variant, Z-type ${\alpha}_1$-AT, exhibits retarded protein folding that leads to accumulation of folding intermediates. These aggregate within the endoplasmic reticulum (ER) of hepatocytes, subsequently causing liver cirrhosis as well as emphysema. Here, we studied the role of an ER folding assistant protein Cpr5p on Z-type ${\alpha}_1$-AT folding. Cpr5p was induced > 2-fold in Z-type ${\alpha}_1$-AT-expressing yeast cells compared with the wild type. Knockout of CPR5 exacerbated cytotoxicity of Z-type ${\alpha}_1$-AT, and re-introduction of CPR5 rescued the knockout cells from aggravated cytotoxicity caused by the ${\alpha}_1$-AT variant. Furthermore, Cpr5p co-immunoprecipitated with Z-type ${\alpha}_1$-AT and facilitated its protein folding. Our results suggest that protein-folding diseases may be suppressed by folding assistant proteins at the site of causal protein biosynthesis.
For most of proteins to be active, they need well-defined three-dimensional structures alone or in complex. Folding is a process through which newly synthesized proteins get to the native state. Protein folding inside cells is assisted by various chaperones and folding factors, and misfolded proteins are eliminated by the ubiquitin-proteasome degradation system to ensure high fidelity of protein expression. Under certain circumstances, misfolded proteins escape the degradation process, yielding to deposit of protein aggregates such as loop-sheet polymer and amyloid fibril. Diseases characterized by insoluble deposits of proteins have been recognized for long time and are grouped as conformational diseases. Study of protein folding mechanism is required for better understanding of the molecular pathway of such conformational diseases.
The folding kinetics of $WT^*$ ubiquitin variant with valine to alanine mutation at sequence position 26 (HubWA) was studied by stopped-flow fluorescence spectroscopy. While unfolding kinetics showed a single exponential phase, refolding reaction showed three exponential phases. The semi-logarithmic plot of urea concentration vs. rate constant for the first phase showed v-shape pattern while the second phase showed v-shape with roll-over effect at low urea concentration. The rate constant and the amplitude of the third phase were constant throughout the urea concentrations, suggesting that this phase represents parallel process due to the configurational isomerization. Interestingly, the first and second phases appeared to be coupled since the amplitude of the second phase increased at the expense of the amplitude of the first phase in increasing urea concentrations. This observation together with the roll-over effect in the second folding phase indicates the presence of intermediate state during the folding reaction of HubWA. Quantitative analysis of Hub-WA folding kinetics indicated that this intermediate state is on the folding pathway. Folding kinetics measurement of a mutant HubWA with hydrophobic core residue mutation, Val to Ala at residue position 17, suggested that the intermediate state has significant amount of native interactions, supporting the interpretation that the intermediate is on the folding pathway. It is considered that HubWA is a useful model protein to study the contribution of residues to protein folding process using folding kinetics measurements in conjunction with protein engineering.
We calculate the free energy surfaces for two small proteins and a protein-RNA complex system by using a lattice model approach. In particular, we employ the Munoz-Eaton model, which is a native-structure based statistical mechanical model for studying protein folding problem. The model can provide very useful insights into the folding mechanisms by allowing one to calculate the free energy surfaces efficiently. We first calculate the free energy surfaces of ubiquitin and BBL, using both approximate and recently developed exact solutions of the model. Ubiquitin exhibits a typical two-state folding behavior, while BBL downhill folding in our study. We then extend the method to study of a protein-RNA complex. In particular, we focus on PAZ-siRNA complex. In order to elucidate the interplay between folding and binding kinetics for this system we perform comparative studies of PAZ only, PAZ-siRNA complex and two mutated complexes. We find that folding and binding are strongly coupled with each other and the bound PAZ is more stable than the unbound PAZ. Our results also suggest that the binding sites of the siRNA may serve act as a nucleus in the folding process.
Substantial progress has been made towards understanding the folding mechanisms of proteins in virto and in vivo even though the general rules governing such folding events remain unknown. This paper reviews current folding models along with experimental approaches used to elucidate the folding pathways. Protein misfolding is discussed in relation to disease states, such as amyloidosis, and the recent findings on the mechanism of converting normally soluble proteins into amyloid fibrils through the formation of intermediates provide an insight into understanding the pathogenesis of amyloid formation and possible cules for the development of therapeutic treatments. Finally, some commonly adopted refolding strategies developed over the part decade are summarized.
The role of hydrophobic residues on protein folding reaction was studied by folding kinetics measurements in conjunction with protein engineering. The HubWA, which was derived from human ubiquitin by mutating the residues at 45 (Phe to Trp) and 26 (Val to Ala), was used as a mutational background. Fourteen hydrophobic residues were mutated to alanine. Among fourteen variants generated, only four variant proteins (V5A, I13A, V17A, and I36A) were suitable for folding study. The folding kinetics of these variants was measured by stopped-flow fluorescence spectroscopy. The folding kinetics of HubWA and V17A was observed to follow a three-state on-pathway mechanism. On the other hand, folding kinetics of V5A, I13A, and I36A was observed to follow a two-state mechanism. Based on these observations, transition of protein folding reaction from collision-diffusion mechanism to nucleation-condensation mechanism was discussed.
Kim, Hee-Youn;Ryu, Soo-Young;Yun, Ji-Hye;Kim, Suhk-Mann;Chang, Ik-Soo;Lee, Weon-Tae
Bulletin of the Korean Chemical Society
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v.31
no.12
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pp.3521-3524
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2010
MTH1880 is a hypothetical protein derived from Methanobacterium thermoautotrophicum, thermophilic methanogen. The solution structure determined by NMR spectroscopy showed that it has a novel $\alpha+\beta$-fold with a highly acidic ligand binding pocket. Since MTH1880 maintains its ultra-stable structural characteristics at both high temperature and pressure, it has been considered as an excellent model for studying protein folding. To initiate the structural and folding study of MTH1880 in proving its unusual stability, we performed the site directed mutagenesis and biochemical analysis of MTH1880 mutants. Data from circular dichroism and NMR spectroscopy suggest that the point mutations perturbed the structural stability of protein even though the secondary structure is retained. This study will provide the useful information in understanding the role of participating residues during folding-unfolding process and our result will be used in designing further folding experiments for hyper-thermopile proteins like MTH1880.
The contribution of hydrophobic residues to the protein folding reaction was studied by using HubWA variant proteins with I and L to V mutation. Folding kinetics of all V variant proteins was observed to be satisfied by a three-state on-pathway mechanism, U ⇌ I ⇌ N, where U, I, and N represent unfolded, intermediate, and native state, respectively. Three-state folding reaction was quantitatively analyzed and the free energy of folding of each elementary reactions and overall folding reaction, ΔGoUI, ΔGoIN, and ΔGoUN, were obtained. From the ratio of free energy difference between the variant protein and HubWA, ΔΔGoUI/ΔΔGoUN (ΔΔGoUI = ΔGoUI (variant protein) - ΔGoUI (HubWA) and ΔΔGoUN = ΔGoUN (variant protein) - ΔGoUN(HubWA)), the contribution of hydrophobic residues to HubWA folding was analyzed. The residues which are located in the hydrophobic core between α-helix and β-sheet, I3, I13, L15, I30, L43, I61 and L67, showed ΔΔGoUI/ΔΔGoUN value of ~0.5 when each of these residues was mutated to V, indicating that these residues form relatively solid hydrophobic core in the intermediate state. Residues located at the end of secondary structures and loop, I23, L69 and I36 showed ΔΔGoUI/ΔΔGoUN value below 0.4 when each of these residues was mutated to V, indicating that the region containing these residues are loosely formed in the intermediate state. V17A, L50V and L56V showed fairly high ΔΔGoUI/ΔΔGoUN value of ~0.8. Since L50 and L56 are located in the region containing long loop (residue 46 to 62), it is suggested that the high ΔΔGoUI/ΔΔGoUN value of these residues prevents the formation of aggregate at the early stage of folding reaction.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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