The present studies were undertaken to examine the activitites of PKC isoforms in cultures of chick limb mesenchvme. Micromass cultures were prepared using wing buds of stage 23/24 (Hamburger and Hamilton, 19511 chick embryo. The cells were homogenized and DEAE-cellulose column chromatography was performed to get fraction containing protein kinase C (PKC) activity. PKC isoforms were resolved with hvdroxyapatitie column chromatography. Profile of PKC isoforms of cultures were compared with that of rat brain. Activity of $PKC-\beta$ isoform was appeared at the early stage of chondrogenesis. On 3 daw of culture, activities of both PKC a and $\beta$ were observed with remarkable increase but no activity of y isoform was appeared. Treatment of phorbol-12-mvristate-13-acetate (PMA) (10-7 M) to the culture inhibited chondrosenesis and down-regulated a and $\beta$ isoforms. Staurosporine promoted chondro!genesis without any effect on PKC isioforms profile. These data indicate that PKC a and $\beta,$ especiallv $\beta$ isoform is related to chondrosenesis and the promoting effect of staurosporine on chondrogenesis is not related to PKC isoforms activities.
Subcellular localization of protein kinase often plays an important role in determining its activity and specificity. Protein kinase C (PKC), a family of multi-gene protein kinases has long been known to be translocated to the particular cellular compartments in response to DAG or its analog phorbol esters. We used C-terminal green fluorescent protein (GFP) fusion proteins of PKC isoforms to visualize the subcellular distribution of individual PKC isoforms. Intracellular localization of PKC-GFP proteins was monitored by fluorescence microscopy after transient transfection of PKC-GFP expression vectors in the HeLa cells. In unstimulated HeLa cells, all PKC isoforms were found to be distributed throughout the cytoplasm with a few exceptions. PKC$\theta$ was mostly localized to the Golgi, and PKC$\gamma$, PKC$\delta$ and PKC$\eta$ showed cytoplasmic distribution with Golgi localization. DAG analog TPA induced translocation of PKC-GFP to the plasma membrane. PKC$\alpha$, PKC$\eta$ and PKC$\theta$ were also localized to the Golgi in response to TPA. Only PKC$\delta$ was found to be associated with the nuclear membrane after transient TPA treatment. These results suggest that specific PKC isoforms are translocated to different intracellular sites and exhibit distinct biological effects.
The expression of protein kinase C(PKC) isoforms and nitric oxide synthase (NOs) isoforms was studied in the equine vomeronasal organ(VNO), a pheromone receptor organ, using immunohistochemistry. All PKC isoforms including PKC $\alpha$, ${\beta}I$, $\delta$, and $\theta$ were detected in the supporting cells, sensory receptor cells, and basal sensory epithelial cells, while constitutive PKC $\alpha$ and ${\beta}I$ were stained more intensely than novel PKC $\delta$ and ${\theta}$. There was also a varying degree of immunostaining for PKCs in the glandular acini and VNO nerve. Constitutive neuronal and endothelial NOSs, and inducible NOS were detected in the VNO sensory epithelia. There was intense immunoreactivity for endothelial NOS in the VNO sensory epithelia but weak reactivity for neuronal NOS, while inducible NOS showed little immunoreactivity in the adjacent section. These findings suggest that both PKCs and NOSs may be involved in the process of pheromone reception in the horse. Constitutive isoforms of these enzymes may play a more important role in signal trasduction in the VNO of the horse.
Lysophosphatidylcholine (LPC) has been reported to be responsible for the sustained activation of protein kinase C (PKC). As chondroqenesis is known to be regulated by PKC, this study was performed to investigate the effects of LPC on chondrogenesis of chick limb bud mesenchymes in vitro. LPC treatment of mesenchymes during micromass culture significantly enhanced chondrogenic differentiation. The most effective time of LPC on the stimulation of chondrogenesis was the first day of micromass culture. Analysis of LPC effects on the expression of PKC isoforms revealed that LPC treatment increased expression of PKCa, among the multiple PKC isoforms, in the membrane fraction on day one of culture. The stimulatory effect of LPC on chondrogenesis was abolished if PKCa was down regulated by the prolonged treatment of cells with phorbol ester. The results suqqest that LPC promotes chondrogenesis through the activation of PKCa at the early stage of chondrogenic differentiation.
In order to investigate the role of protein kinase C (PKC) in chondrogenic differentiation, we examined the localization of PKC isoforms in a limb bud micromass culture system. PKC$\alpha$ is specifically localized in the regions which would become cartilage nodules, while PKC$\lambda/l$ and $\zeta$ display widespread distribution in the whole culture. Distribution of PKC$\alpha$ change along with promotion or inhibition of chondrogenesis by lysophosphatidylcholine or phorbol 12-myristate 13-acetate. On the other hand, localization of PKC$\lambda/l$ or $\zeta$ a was not changed by the modulation of chondrogenesis. Peanut agglutinin binding protein which is associated with cell aggregation during chondrogenesis was present in the cell condensation regions and its expression in those regions was influenced by PKC activity. Expression of fibronectin and N-cadherin in the cell condensing area were also affected by modulation of PKC activity. These results suggest involvement of PKC$\alpha$ in the cell condensation, possibly through regulating expression of fibronectin and N-cadherin.
The mitogen-activated protein(MAP) kinase signal transduction pathway represents an important mechanism by which mitogen, such as serum and PMA, regulate cell proliferation and differentiation. Target substrates of the MAP kinase are located within several compartments containing plasma membranes and nucleus. We now report that serum addition induces proliferation of the P388 murine leukemia cell, but PMA does not, while both serum and PMA treatment cause translocation of the MAP kinase, mainly p42$^{mapk}$ isoform, from cytosol into the nucleus, which was monitored by immunoblot analysis using polyclonal anti-ERK1 antibodies. We investigated whether the MAP kinase was capable of phosphorylating c-Jun protein and GST-fusion proteins, the P562$^{kk}$N-terminal peptides (1-77 or 1-123 domain) of the T cell tyrosine kinase, using the partially purified MAP kinase by SP-sephadex C-50, phenyl superose and Mono Q column chromatography. We found that the partially purified MAP kinase was able to phosphorylate c-Jun protein and the GST-fusion protein expressed using E.coli DH5$\alpha$ which is transformed with pGEX-3Xb plasmid vector carrying of p562$^{kk}$N-terminal peptide-encoding DNA. These results imply that tyrosine kinase receptor/Ras/Raf/MAP kinase pathway is a major mechanism for mitogen-induced cell proliferation in P388 murine leukemia cell and that the various MAP kinase isoforms may have their own target substrates located in distinct subcellular compartments.
The signaling components of high affinity IgE receptor (Fc RI) were searched by yeast-hybrid screening of the cDNA library constructed from RBL-2H3 cells. The cytoplasmic part of the Fc RI- chain was found to specifically interact with PLC 2, and further comparatives studies were conducted focusing on the differential regulation of two PLC- isoforms through Fc RI. The inhibitors of Src, Syk, and protein kinase C similarly affected the tyrosine phosporylations of PLC 1 and PLC 2 but the inhibitors of PI3-kinase and p42/44 ERK effectively inhibited the activation of PLC 1 but not PLC 2. (omitted)
Ginsenoside Rh, (G-Rh,) from Panax ginseng induced morphological features of apoptosis and DNA fragmentation as a biochemical marker of apoptosis confirmed by TUNEL reaction and agarose gel electrophoresis in human neuroblastoma SK-N-BE(2) and rat glioma C6Bu-1 cells During apoptosis by G-Rh2, protein kinase C (PKC) isoforms were analysed by immunoblotting. In SK-N-BE(2) cells, the levels of a, p and ${\gamma}$ subtypes were increased by undergoing apoptosis, while PKC e isoform increased early in treatment (3 h and 6 h). In addition, PKC s isoform gradually decreased during apoptosis by G-Rh2 and PKC $\theta$ isoform was detected in neither untreated- nor G-Rh1-treated SK-N-BE(2) cells (data not shown). However, no significant changes in the level of S and s isoforms were observed in C6Bu-1 cells undergoing apoptosis by G-Rh2. These results suggest that PKC subtypes may play differential roles in apoptotic signal pathways and their roles can be cell type-specific in apoptosis induced by G-Rh2.
Cigarette smoking is the leading cause of the lung cancer. However, mechanism of action underlying the carcinogenesis in the lung still remains to be elucidated. The present study attempted to look into the carcinogenic potential of tobacco-specific nitrosamine, NNK (4-(methylnitrosamino)-1-(3-pyridyl)-1-butanone) and the effects of protein kinase C (PKC) isoforms in an immortalized human epithelial cell model. Material and Method: Immortalized human epithelial cells were exposed with NNK and examined for its carcinogenic potential as measured by saturation density, soft-agar colony formation, and cell aggregation assay. The specific isoform of PKCs involved in the cellular transformation was analysed through western blot with monoclonal antibody and measured separately in cytosolic fraction and membrane fraction. Result: Human epithelial cells exposed with NNK showed prominent carcinogenic potential in saturation density, soft agar colony formation, and cell aggregation assay. PKC isoform analysis results are as follows: PKC- $\alpha$ showed significant translocation of protein levels from cytosolic fraction to membrane fraction, as analyzed by immunoblot. PKC- $\varepsilon$ showed a dose-dependent increase of translocation. PKC- λ was not affected by NNK treatment. Conclusion: The study demonstrated that there was a certain specificity in the patterns of isoform induction following chemical carcinogen exposure. Thus, it is suggested that identification of specific isoform be a clue to find target molecules in the carcinogenesis.
Protein kinase C (PKC) has been implicated in carcinogenesis and displays variable expression profiles during cancer progression. Studies of dietary phytochemicals on cancer signalling pathway regulation have been conducted to search for potent signalling regulatory agents. The present study was designed to evaluate any suppressive effect of maslinic acid on PKC expression in human B-lymphoblastoid cells (Raji cells), and to identify the PKC isoforms expressed. Effects of maslinic acid on PKC activity were determined using a PepTag$^{(R)}$ assay for non-radioactive detection of PKC. The highest expression in Raji cells was obtained at 20 nM PMA induced for 6 hours. Suppressive effects of maslinic acid were compared with those of four PKC inhibitors (H-7, rottlerin, sphingosine, staurosporine) and two triterpenes (oleanolic acid and ursolic acid). The $IC_{50}$ values achieved for maslinic acid, staurosporine, H-7, sphingosine, rottlerin, ursolic acid and oleanolic acid were 11.52, 0.011, 0.767, 2.45, 5.46, 27.93 and $39.29\;{\mu}M$, respectively. Four PKC isoforms, PKC ${\beta}I$, ${\beta}II$, ${\delta}$, and ${\zeta}$, were identified in Raji cells via western blotting. Maslinic acid suppressed the expression of PKC ${\beta}I$, ${\delta}$, and ${\zeta}$ in a concentration-dependent manner. These preliminary results suggest promising suppressive effects of maslinic acid on PKC activity in Raji cells. Maslinic acid could be a potent cancer chemopreventive agent that may be involved in regulating many downstream signalling pathways that are activated through PKC receptors.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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