Epigenetic modification including genome-wide DNA demethylation is essential for normal embryonic development. Insufficient demethylation of somatic cell genome may cause various anomalies and prenatal loss in the development of nuclear transfer embryos. Hence, the source of nuclear donor often affects later development of nuclear transfer (NT) embryos. In this study, appropriateness of porcine embryonic germ (EG) cells as karyoplasts for NT with respect to epigenetic modification was investigated. These cells follow methylation status of primordial germ cells from which they originated, so that they may contain less methylated genome than somatic cells. This may be advantageous to the development of NT embryos commonly known to be highly methylated. The rates of blastocyst development were similar among embryos from EG cell nuclear transfer (EGCNT), somatic cell nuclear transfer (SCNT), and intracytoplasmic sperm injection (ICSI) (16/62, 25.8% vs. 56/274, 20.4% vs. 16/74, 21.6%). Genomic DNA samples from EG cells (n=3), fetal fibroblasts (n=4) and blastocysts from EGCNT (n=8), SCNT (n=14) and ICSI (n=6) were isolated and treated with sodium bisulfite. The satellite region (GenBank Z75640) that involves nine selected CpG sites was amplified by PCR, and the rates of DNA methylation in each site were measured by pyrosequencing technique. The average methylation degrees of CpG sites in EG cells, fetal fibroblasts and blastocysts from EGCNT, SCNT and ICSI were 17.9, 37.7, 4.1, 9.8 and 8.9%, respectively. The genome of porcine EG cells were less methylated than that of somatic cells (p<0.05), and DNA demethylation occurred in embryos from both EGCNT (p<0.05) and SCNT (p<0.01). Interestingly, the degree of DNA methylation in EGCNT embryos was approximately one half of SCNT (p<0.01) and ICSI (p<0.05) embryos, while SCNT and ICSI embryos contained demethylated genome with similar degrees. The present study demonstrates that porcine EG cell nuclear transfer resulted in hypomethylation of DNA in cloned embryos yet leading normal preimplantation development. Further studies are needed to investigate whether such modification affects long-term survival of cloned embryos.
Insulin-like growth factor II (IGF2) and H19 genes are mutually imprinted genes which may be responsible for abnormalities in the cloned fetuses and offspring. This study was performed to identify putative differentially methylated regions (DMRs) of porcine H19 locus and to explore its genomic imprinting in in vitro fertilized (IVF) and somatic cell nuclear transferred (SCNT) embryos. Based on mice genomic data, we identified DMRs on H19 and found porcine H19 DMRs that included three CTCF binding sites. Methylation patterns in IVF and SCNT embryos at the 2-, 4-, $8{\sim}16$-cells and blastocyst stages were analyzed by BS (Bisulfite Sequencing)-PCR. The CpGs in CTCF1 was significantly unmethylated in the 2-cell stage IVF embryos. However, the 4- (29.1%) and $8{\sim}16$-cell (68.2%) and blastocyst (48.2%) stages showed higher methylation levels (p<0.01). On the other hand, SCNT embryos were unmethylayted ($0{\sim}2%$) at all stages of development. The CpGs in CTCF2 showed almost unmethylation levels at the 2-,4- and $8{\sim}16$-cell and blastocyst stages of development in both IVF ($0{\sim}14.1%$) and SCNT ($0{\sim}6.4%$) embryos. At all stages of development, CTCF3 was unmethylated in IVF ($0{\sim}17.3%$) and SCNT ($0{\sim}1.2%$) embryos except at the blastocyst stage (54.5%) of IVF embryos. In conclusion, porcine SCNT embryos showed an aberrant methylation pattern comprised to IVF embryos. Therefore, we suggest that the aberrant methylation pattern of H19 loci may be a reason for increased abnormal fetus after embryo transfer of porcine SCNT embryos.
Liu, Jiaen;Sills, E. Scott;Yang, Zhihong;Salem, Shala A.;Rahil, Tayyab;Collins, Gary S.;Liu, Xiaohong;Salem, Rifaat D.
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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제39권2호
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pp.52-57
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2012
Objective: During IVF, non-transferred embryos are usually selected for cryopreservation on the basis of morphological criteria. This investigation evaluated an application for array comparative genomic hybridization (aCGH) in assessment of surplus embryos prior to cryopreservation. Methods: First-time IVF patients undergoing elective single embryo transfer and having at least one extra non-transferred embryo suitable for cryopreservation were offered enrollment in the study. Patients were randomized into two groups: Patients in group A (n=55) had embryos assessed first by morphology and then by aCGH, performed on cells obtained from trophectoderm biopsy on post-fertilization d5. Only euploid embryos were designated for cryopreservation. Patients in group B (n=48) had embryos assessed by morphology alone, with only good morphology embryos considered suitable for cryopreservation. Results: Among biopsied embryos in group A (n=425), euploidy was confirmed in 226 (53.1%). After fresh single embryo transfer, 64 (28.3%) surplus euploid embryos were cryopreserved for 51 patients (92.7%). In group B, 389 good morphology blastocysts were identified and a single top quality blastocyst was selected for fresh transfer. All group B patients (48/48) had at least one blastocyst remaining for cryopreservation. A total of 157 (40.4%) blastocysts were frozen in this group, a significantly larger proportion than was cryopreserved in group A (p=0.017, by chi-squared analysis). Conclusion: While aCGH and subsequent frozen embryo transfer are currently used to screen embryos, this is the first investigation to quantify the impact of aCGH specifically on embryo cryopreservation. Incorporation of aCGH screening significantly reduced the total number of cryopreserved blastocysts compared to when suitability for freezing was determined by morphology only. IVF patients should be counseled that the benefits of aCGH screening will likely come at the cost of sharply limiting the number of surplus embryos available for cryopreservation.
Sa, Soo Jin;Jeong, Jiyeon;Cho, Jaesung;Lee, Seung-Hwan;Choi, Inchul
농업과학연구
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제45권3호
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pp.493-498
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2018
There has been widespread warming and a general increase in summer temperatures over the Korean peninsula ($0.5^{\circ}C$/10 years from 2001 to 2010). South Korea is transforming into a subtropical region, and the productivity of livestock is affected by the climatic changes. In this study, we investigated whether the summer heat waves affect the developmental competency of Korean native cattle (Hanwoo), a taurine type of cattle with a small portion of indicine varieties. We collected oocytes during the summer (heat stress, HS) and autumn (non-HS condition) and examined the developmental competencies including in vitro maturation and preimplantation embryo development. No significant differences were observed between the HS and non-HS oocytes in nuclear maturation (extrusion of the polar body); however, the cleavage and blastocyst rates were significantly lower in the HS group than those in the non-HS group. The lower developmental competence of the HS oocytes compared to the non-HS is, in part, due to insufficient cytoplasmic maturation because of a higher production of Reactive oxygen species (ROS) levels as well as peri/cortical distributed mitochondria in the HS oocytes after in vitro maturation. Next, we examined the ROS and mitochondria distribution and found a significant increase in the levels of ROS in the HS oocytes and a polarized distribution (pericortical cytoplasm) of mitochondria in the HS oocytes. In summary, impaired cytoplasmic maturation of oocytes from exposure to HS affects the preimplantation embryo development by dysfunction of mitochondria. To improve reproductive performance, embryo transfer using cryopreserved embryos/oocytes is recommended in the hot summer season of South Korea.
Park, Jin-Mo;Min, Sung-Hun;Hong, Joo-Hee;Lee, E-Nok;Son, Hyeong-Hoon;Park, Hum-Dai;Koo, Deog-Bon
Reproductive and Developmental Biology
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제35권3호
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pp.287-294
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2011
Autophagy is a process of intracellular bulk protein degradation, in which the accumulated proteins and cytoplasmic organelles are degraded. It plays important roles in cellular homeostasis, apoptosis, and development, but its role during early embryo development remains contentious. Therefore, in the present study, we investigated the effects of 3-methyladenine (3-MA) on early embryonic development in pigs, we also investigated several indicators of developmental potential, including mitochondrial distribution, genes expressions (autophagy-, apoptosis- related genes), apoptosis and ER-stress, which are affected by 3-MA. After in vitro maturation and fertilization, presumptive pig embryos were cultured in PZM-3 medium supplemented with 3-MA for 2 days at $39^{\circ}C$ 5% $CO_2$ in air. Developmental competence to the blastocyst stage in the presence of 3-MA was gradually decreased according to increasing concentration. Thus, all further experiments were performed using 2 mM 3-MA. Blastocysts that developed in the 3-MA treated group decreased LC3-II intensity and expressions of autophagy related genes than those of the untreated control, resulting in down-regulates the autophagy. Terminal deoxynucleotidyl transferase-mediated dUTP nick-end labeling (TUNEL) showed that the number of containing fragmented DNA at the blastocyst stage increased in the 3-MA treated group compared with control ($6.0{\pm}1.0$ vs $3.3{\pm}0.6$, p<0.05). Also, the expression of the pro-apoptotic gene Bax increased in 3-MA treated group, whereas expression of the anti-apoptotic gene Bcl-XL decreased. Mito Tracker Green FM staining showed that blastocysts derived from the 3-MA treated group had lower mitochondrial integrity than that of the untreated control, resulting in decrease the embryonic qualities of preimplantation porcine blastocysts. Then, the expression of the spliced form of pXBP-1 product (pXBP-1s) increased in 3-MA treated group, resulting increase of ER-stress. Taken together, these results indicate that inhibition of autophagy by 3-MA is closely associated with apoptosis and ER-stress during preimplantation periods of porcine embryos.
Park, Kyung Eui;Kim, Sung Ah;Kang, Moon Joo;Kim, Hee Sun;Cho, Sung Im;Yoo, Kyoung Won;Kim, So Yeon;Lee, Hye Jun;Oh, Sun Kyung;Seong, Moon-Woo;Ku, Seung-Yup;Jun, Jong Kwan;Park, Sung Sup;Choi, Young Min;Moon, Shin Yong
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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제40권1호
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pp.42-46
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2013
Hypochondroplasia (HCH) is an autosomal dominant inherited skeletal dysplasia, usually caused by a heterozygous mutation in the fibroblast growth factor receptor 3 gene (FGFR3). A 27-year-old HCH woman with a history of two consecutive abortions of HCH-affected fetuses visited our clinic for preimplantation genetic diagnosis (PGD). We confirmed the mutation in the proband (FGFR3:c.1620C>A, p.N540K), and established a nested allele-specific PCR and sequence analysis for PGD using single lymphocyte cells. We performed this molecular genetic analysis to detect the presence of mutation among 20 blastomeres from 18 different embryos, and selected 9 embryos with the wild-type sequence (FGFR3:c.1620C). A successful pregnancy was achieved through a frozen-thawed cycle and resulted in the full-term birth of a normal neonate. To the best of our knowledge, this is the first report of a successful pregnancy and birth using single-cell allele-specific PCR and sequencing for PGD in an HCH patient.
The effect of melatonin on in vitro embryo development and the expression of antioxidant enzyme gene in preimplantation porcine embryos was determined by modified semi-quantitative single cell RT-PCR. Porcine embryos derived from in vitro maturation /in vitro fertilization were cultured in 5% $CO_2$ and 20% $O_2$ at $37^{\circ}C$ in NCSU23 medium. Melatonin was added to medium at concentration of 1nM, 5 nM, and 10 nM. When treated with 1nM (39.0%) of melatonin, the developmental rate of embryos beyond the morula stage were higher than that of control group (31.0%) (p<0.05). Number of inner cell mass and tropectoderm cell in control (23.0${\pm}$0.5 and 17.3${\pm}$0.8), 1 nM (23.6${\pm}$0.6 and 19.0${\pm}$0.5), and 5 nM (23.3${\pm}$1.1 and 16.3${\pm}$0.8) treated with melatonin were higher than in 10 nM (20.0${\pm}$0.5 and 13.3${\pm}$0.8) treated with melatonin (p<0.05). To develop an mRNA phenotypic map for the expression of catalase, bax and caspase-3, single cell RT-PCR analysis were carried out in porcine IVM/IVF embryo. Catalase was detected in 0, 1 and 5 nM supplemented with melatonin, but bax and caspase-3 were detected in 10 nM treated with melatonin.
The objective of this study was to examine the effect of in vitro culture media on embryonic development of in vitro-matured (IVM) oocytes after parthenogenetic activation (PA) in pigs. Immature pig oocytes were matured in TCM-199 supplemented with porcine follicular fluid, cysteine, pyruvate, EGF, insulin, and hormones for the first 22 h and then further cultured in hormone-free medium for an additional 22~26 h. IVM oocytes were activated by electric pulses and cultured in porcine zygote medium-3 (PZM-3) and North Carolina State University-23 supplemented with essential and non-essential amino acids (NCSU-23aa). These media were further modified by supplementing 2.77 mM myo-inositol, 0.34 mM trisodium citrate, and $10{\mu}M$${\beta}$-mercaptoethanol (designated as mPZM-3 and mNCSU-23aa, respectively). Culture of PA embryos in mPZM-3 significantly increased development to the blastocyst stage than culture in NCSU-23aa (36.2% vs. 24.8%, p<0.05). Modified PZM-3 showed a significantly higher blastocyst formation than NCSU-23aa in both groups of embryos that were activated at 44 h and 48 h of IVM (51.0% vs. 35.5% and 49.0% vs. 34.2% in oocytes activated at 44 h and 48 h of IVM, respectively). Irrespective of the follicle diameter where oocytes were collected, embryonic development to the blastocyst stage was increased (p<0.05) by the culture in mPZM-3 compared to culture in NCSU-23aa (25.9% vs. 34.2% and 32.9% vs. 44.8% in embryos derived from small and medium size follicles, respectively). Our results demonstrated that culture media had significant effect on preimplantation development PA embryos and that mPZM-3 was superior to mNCSU-23 in supporting development to the blastocyst stage in pigs. This beneficial effect of mPZM-3 on embryonic development was not impaired by other factors such as time of oocyte activation and origin of immature oocytes (small and medium size follicles).
Environmental conditions during early mammalian embryo development are critical and some adaptational phenomena are observed. However, the mechanisms underlying them remain largely masked. Previously, we reported that AQP5 expression is modified by the environmental condition without losing the developmental potency. In this study, AQP11 was examined instead. To compare expression pattern between in vivo and in vitro, we conducted quantitative RT-PCR and analyzed localization of the AQP11 by whole mount immunofluorescence. When the fertilized embryos were developed in the maternal tracts, the level of Aqp11 transcripts was decreased dramatically until 2-cell stage. Its level increased after 2-cell stage and peaked at 4-cell stage, but decreased again dramatically until morula stage. Its transcript level increased again at blastocyst stage. In contrast, the levels of Aqp11 transcript in embryos cultured in vitro were as follows. The patterns of expression were similar but the overall levels were low compared with those of embryos grown in the maternal tracts. AQP11 proteins were localized in submembrane cytoplasm of embryos collected from maternal reproductive tracts. The immune-reactive signals were detected in both trophectoderm and inner cell mass. However, its localization was altered in in vitro culture condition. It was localized mainly in the plasma membrane of the blastocysts contacting with external environment. The present study suggests that early stage embryo can develop successfully by themselves adapting to their environmental condition through modulation of the expression level and localization of specific genes like AQP11.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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