Background: In vitro culture of preantral follicles is a promising technology for fertility preservation. Objectives: This study aims to investigate an optimized three-dimensional (3D) fetal bovine serum (FBS)-free preantral follicle culture system having a simple and easy operation. Methods: The isolated follicles from mouse ovaries were randomly divided in an ultra-low attachment 96-well plates supplement with FBS or bovine serum albumin (BSA) culture or encapsulated with an alginate supplement with FBS or BSA culture. Meanwhile, estradiol (E2) concentration was assessed through enzyme-linked immunosorbent assay of culture supernatants. The diameter of follicular growth was measured, and the lumen of the follicle was photographed. Spindle microtubules of oocytes were detected via immunofluorescence. The ability of oocytes to fertilize was assessed using in vitro fertilization. Results: The diameters were larger for the growing secondary follicles cultured in ultra-low attachment 96-well plates than in the alginate gel on days 6, 8, and 10 (p < 0.05). Meanwhile, the E2 concentration in the BSA-supplemented medium was significantly higher in the alginate gel than in the other three groups on days 6 and 8 (p < 0.05), and the oocytes in the FBS-free system could complete meiosis and fertilization in vitro. Conclusions: The present study furnishes insights into the mature oocytes obtained from the 3D culture of the preantral follicle by using ultra-low attachment 96-well plate with an FBS-free system in vitro and supports the clinical practices to achieve competent, mature oocytes for in vitro fertilization.
Kim, D. J.;H. J. Chung;S. J. Uhm;Lee, H. T.;K. S. Chung
한국동물번식학회:학술대회논문집
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한국동물번식학회 2001년도 춘계학술발표대회
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pp.30-30
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2001
The culture of preantral follicles has important biotechnological implications through its potential to produce the large quantity of oocytes for embryo production, transgenesis research, conservation of rare breed, and a potential source of ovarian genetic material. The present study was conducted to establish the optimal conditions of in vitro culture for intact bovine preantral follicles; and to examine the developmental ability of oocytes derived from the in vitro-grown preantral follicles; and to investigate the effects of various concentrations of FSH and LH on these processes. Bovine preantral follicles (150 $\pm$ 1.2${\mu}{\textrm}{m}$), surrounded by theca cell, were isolated enzymetically and mechanically from ovarian cortical slides in Leibovitz L-15 medium containing 1 mg/$m\ell$ collagens and 0.2 mg/$m\ell$ DNase I and cultured for 25 days in the presence of different concentrations of bovine FSH and LH in $\alpha$MEM medium with insulin, transferrin, and selenite. The survival was tested by frypan Blue and Hematoxylin. The survival and growth rates of follicles were higher in FSH treatment groups than these in control (P<0.001), but there were no significant differences between the LH treatment groups and the control. In 25 days, the survival and growth rates of follicles in FSH and LH treatment group (50%, 300$\pm$1.0${\mu}{\textrm}{m}$) were higher than in FSH treatment group (40%, 244$\pm$0.5${\mu}{\textrm}{m}$) and the control group (25%, 160$\pm$ 1.0${\mu}{\textrm}{m}$). Fifty-five percent of healthy antral follicles were obtained, and 60% of the oocytes complete meiotic maturation to the metaphase II stage. Twenty-two percent of the mature oocytes underwent cleavage, and 9% developed to the blastocyst stage. In this study, in vitro-grown oocytes (111 $\pm$$1.5mutextrm{m}$), under our culture conditions, were not equivalent in size to the in vivo-grown oocytes (130$\pm$1.3${\mu}{\textrm}{m}$). Therefore, these results suggest that bovine preantral follicles with intact theca cell can grow to the antral stage in 25days, and that oocytes from those follicles can acquire the meiotic competence and normally undergo fertilization and development to the blastocyst stage. However, the developmental capacity of in vitro-grown oocytes is presumably not comparable to those of the in vivo counterparts.
Although assisted reproductive technology is very useful to develop novel and therapeutic biomaterials for reproduction, research on molecular mechanism of folliculogenesis in pig is not clear. Therefore, the alteration of gene expression during follicular development in pigs was examined in this study. The expression of folliculogenesis-related genes was quantified in preantral ($250{\sim}300{\mu}m$) and antral (> $300{\mu}m$ in diameter) follicles, and overall gene expression was evaluated by a genome-wide microarray. The microarray results showed that 219 genes were differentially expressed, and of those, 10 and 22 known genes showed higher and less expression at the preantral stage than at antral stages, respectively. Among them, the expression of NR0B1, PPARG, GATA4, and ANXA2 genes related to folliculogenesis was validated by quantitative real-time PCR analysis. The expression of PPARG and GATA4 genes were increased at antral stages, but a significantly stage-specific increase (p<0.05) was only detected in annexin A2 (ANXA2) in antral-stage follicles. The expression of NR0B1 genes was increased at preantral stage and these patterns of gene expression were comparable to the results obtained by microarray analysis. We propose that the systematical regulation of genes supporting specific follicle stage should be employed for improved in-vitro folliculognesis.
This study was undertaken to investigate the morphological changes between normal and atretic follicle after gamma irradiation and treatment of follicle stimulating hormone (FSH). The ovaries of each group of treated immature mice were prepared the paraffin sections after 0, 6, 12, and 24 hours (hrs) of those treatment. Hematoxylin-eosin (HE) stain, reticulin stain, and terminal deoxynucleotidyl transferase (TdT)-mediated dUTP nick end labeling (TUNEL) immunohistochemical stain were performed on the each paraffin sections. As the results of HE staining, the condensed nuclei of oocytes were observed in the atretic primordial follicles, on the other hand the condensations of granulosa cell nuclei were prominent in the atretic primary, preantral, and antral follicles. Only the granulosa cells of atretic follicle were stained specifically with TUNEL staining but not stained in the theca cells, which suggested granulosa cells degenerated through apoptosis. In the reticulin staining, the basement membranes of atretic follicle which was stained weakly showed irregular structure and detachment from the follicles. The ratio of normal to atretic follicle in control and FSH treated group was about 33% but this ratio increased rapidly over 90% in the 6, 12, and 24 hrs group after the irradiation. It could be suggested that the gamma irradiation is the useful tool far the induction of follicle atresia and immunohistochemical staining methods are essential in the study of follicle atresia.
Asghari, Reza;Shokri-Asl, Vahid;Rezaei, Hanieh;Tavallaie, Mahmood;Khafaei, Mostafa;Abdolmaleki, Amir;Seghinsara, Abbas Majdi
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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제48권3호
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pp.245-254
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2021
Objective: In humans, polycystic ovary syndrome (PCOS) is an androgen-dependent ovarian disorder. Aberrant gene expression in folliculogenesis can arrest the transition of preantral to antral follicles, leading to PCOS. We explored the possible role of altered gene expression in preantral follicles of estradiol valerate (EV) induced polycystic ovaries (PCO) in a mouse model. Methods: Twenty female balb/c mice (8 weeks, 20.0±1.5 g) were grouped into control and PCO groups. PCO was induced by intramuscular EV injection. After 8 weeks, the animals were killed by cervical dislocation. Blood serum (for hormonal assessments using the enzyme-linked immunosorbent assay technique) was aspirated, and ovaries (the right ovary for histological examinations and the left for quantitative real-time polymerase) were dissected. Results: Compared to the control group, the PCO group showed significantly lower values for the mean body weight, number of preantral and antral follicles, serum levels of estradiol, luteinizing hormone, testosterone, and follicle-stimulating hormone, and gene expression of TGFB1, GDF9 and BMPR2 (p<0.05). Serum progesterone levels were significantly higher in the PCO animals than in the control group (p<0.05). No significant between-group differences (p>0.05) were found in BMP6 or BMP15 expression. Conclusion: In animals with EV-induced PCO, the preantral follicles did not develop into antral follicles. In this mouse model, the gene expression of TGFB1, GDF9, and BMPR2 was lower in preantral follicles, which is probably related to the pathologic conditions of PCO. Hypoandrogenism was also detected in this EV-induced murine PCO model.
FSH는 미성숙 설치류의 난포성장을 촉진하며, 강소형성 난포의 퇴화비율을 감소시킨다. 본 연구는 미성숙 생쥐에 난포성숙호르몬을 투여한 후 유발되는 난포의 조직학적인 변화를 규명하기 위해 시행되었다. 3주령의 ICR생쥐에 10 i.u.의 재조합 난포자극호르몬을 복강주사한 후 1일, 2일, 3일에 좌측 난소의 조직학적 변화를 관찰하였다. 강소형성전 난포의경우 FSH처리 후 시간에 따라 퇴화난포의 비율이 증가하였으나 강소형성 난포의 경우에는 유의한 변화를 보이지 않았다. 퇴화되는 양상은 난포 내 세포자연사하는 과립세포의 증가, 대식세포 및 다형다핵백혈구의 증가 등이 관찰되었다. 이상의 결과로 보아, 과량의 FSH처리 후에 유발되는 난포의 퇴화는 과립세포의 세포자연사뿐 아니라 급성 염증반응을 수반하는 것으로 생각된다.
본 실험은 원시난포의 체외배양 체계를 확립할 수 있는 가능성을 검토하기 위해 10일과 20일령 마우스의 난소에서 분리한 난포를 체외배양하여 난포의 형태변화, 난자의 성장를 및 난자의 핵성숙단계를 조사하여 비교하였다. 그 결과를 요약하면 다음과 같다. 1. 10일령과 20일령의 마우스에서 분리한 난포는 배양 6일째부터 난포강이 형성되었다. 2. 10일령과 20일령 마우스의 난소에서 분리한 난포의 수는 평균 21.5와 33.3개였고, 배양하기 전에 투명대를 제외한 난자의 직경은 51.85 $mu extrm{m}$와 57.50 $\mu\textrm{m}$였으나, 10 일간 배양한 후 측정한 난자의 직경은 55.95 $\mu\textrm{m}$와 63.11 $\mu\textrm{m}$로 증가하였다. 3. 10일령과 20일령에서 M II까지 핵이 성숙된 난자는 각각 4.3%와 22.1%였고. GVBD기 이상은 각각 14.5%와 61.1%였다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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