Since the demonstration that the transgenic plants expressing tobacco mosaic virus(TMV) coat protein(CP) gene showed resistance to TMV infection, there have been numerous attempts to produce virus-resistant plant by introducing of a part of or modified viral genome. This study was conducted to investigate the characterization and variability of disease outbreak of transgenic potato(T-potato) with the CP gene of potato leaf roll virus(PLRV) in an isolated field from 2000 to 2002. In the field inspection, incidence of PLRV on T-potato showed only 3.5%, while non-transgenic potato(N-potato) revealed 13.4%. Infection rate of PLRV was considerably low on T-potato with 4.2% compared to 15.4% of N-potato in ELISA tests. Those of potato virus M, potato virus Y and potato virus X on both potatoes were not statistically different. Infection of potato virus A was not observed on both potatoes. Incidence of potato late blight caused by Phytopkhora infestans on T-potato and N-potato did not differ each other with 52.7%, and 50.8%, respectively, Mating type of the causal fungus isolated from both potatoes was all Al types. Results indicates that the CP gene of PLRV affects specifically to the virus in the transgenic potato.
The occurrence of potato(Sotanum tuberosum) viral diseases caused by Potato virus X(PVX), Potato virus Y (PVY), Potato leafroll virus(PLRV), Potato vims S(PVS), Potato virus M(PVM), Potato virus A(PVA), Potato virus T(PVT), Alfalfa mosic virus(AIMV), Tobacco mosic virus(TMV), Potato mop top virus(PMTV) Tobacco rattle virus(TRV) and Potato spindle tuber viroid(PSTVd), potato witches' broom phytoplasma, have been identified so far in Korea. Major viral diseases such as PVX, PVY and PLRV had been studied more deeply, however, the others are just identified and only partially characterized since the first study on the relation between PVX nucleic acid and virus protein by Kim in 1961. The most studies on potato viral diseases are mainly focused on the problems of seed potato production. The National Alpine Agricultural Experiment Station(NAAES), since it began its activities in 1961, has given special attention to this problem by doing studies to identify, characterize and control potato virus diseases. This effort resulted in the development of new potato virus detection methods as a basis for elaborating new method of control, such as the production of seed potato free of virus and the selection of new virus-resistant transgenic potatoes. The further studies of potato viral diseases required would be fallowings: the continuous monitoring for the occurrence of identified or not identified potato viruses in Korea, the isolation of resistant viral genes, the development of control method for the non-persistently transmitted viruses like PVY, special vectors such as nematode and fungus transmitted viruses, TRV and PMTV and the development of control methods against potato viral diseases by viral cross protection, therapy, transgenic plant, and the use of the agents or molecules, such as virus inhibitors and antiviral proteins, etc., blocking viral replication.
Young Ho Kim;Eun Kyung Park;Soon Yong Chae;Sang Seock Kim;Kyung-Hee Paek;Hye Sun Cho
한국연초학회지
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제20권1호
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pp.50-56
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1998
The complementary DNA (cDNA) of potato virus Y- vein necrosis strain (PVY-VN) replicase gene (Nlb) was transformed into tobacco (Nicotiana tabacum cv. Burley 21) plants. Out of 25 putative transformants regenerated, 3 were resistant to PVY-VN, one highly resistant plant with no symptom until seed harvest time and the other two with mild chlorotic spot symptoms at late stages after infection. No symptom was observed in the highly resistant plant, while mild vein necrotic symptoms were developed on suckers of the moderately resistant plants after seed harvest time, In the first generation (T1) via self fertilization, resistance to susceptibility frequency in transgenic plants from the highly resistant transformant was about 3 : 1, while it was lowered much (about 1:2 and 1:19) in T1 of the moderately resistant transformants. In the second generation (T2) of the highly resistant plant, resistance frequencies were similar to T1, but resistance levels varied greatly and appeared to be decreased. Key words : potato virus Y, viral replicate gene, transgenic tobacco plants, resistance.
Phuong T. Ho;Hee-Seong Byun;Thuy T. B. Vo;Aamir Lal;Sukchan Lee;Eui-Joon Kil
The Plant Pathology Journal
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제39권3호
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pp.255-264
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2023
Sweet potato symptomless virus 1 (SPSMV-1) is a single-stranded circular DNA virus, belonging to the genus Mastrevirus (family Geminiviridae) that was first identified on sweet potato plants in South Korea in 2012. Although SPSMV-1 does not induce distinct symptoms in sweet potato plants, its co-infection with different sweet potato viruses is highly prevalent, and thus threatens sweet potato production in South Korea. In this study, the complete genome sequence of a Korean isolate of SPSMV-1 was obtained by Sanger sequencing of polymerase chain reaction (PCR) amplicons from sweet potato plants collected in the field (Suwon). An infectious clone of SPSMV-1 (1.1-mer) was constructed, cloned into the plant expression vector pCAMBIA1303, and agro-inoculated into Nicotiana benthamiana using three Agrobacterium tumefaciens strains (GV3101, LBA4404, and EHA105). Although no visual differences were observed between the mock and infected groups, SPSMV-1 accumulation was detected in the roots, stems, and newly produced leaves through PCR. The A. tumefaciens strain LBA4404 was the most effective at transferring the SPSMV-1 genome to N. benthamiana. We confirmed the viral replication in N. benthamiana samples through strand-specific amplification using virion-sense- and complementary-sense-specific primer sets.
Complementary DNAs (cDNAs) to the coat protein gene of an ordinary Korean strain of potato virus Y (PVY-OK) isolated from potato (cv. Superior) were synthesized and cloned into a plasmid pUC119 and sequenced. The RNA of the virus propagated in tobacco (Nicotinaa sylvestris) was extracted by the method of phenol extraction. The first strand of cDNAs to the coat protein penomic RNA of the virus was made by Moloney murine leukemia virus reverse transcriptase. The cDNA were synthesized and amplified by the method of polymerase chain reaction (PCR) using a pair of oligonucleotide primers. PVYCP3P and PVYCP3M. The size of cDNAs inserted in pUC119 plasmid was estimated as about 840 bp upon agarose gel electrophoresis. Double stranded cDNAs were transformed into the competent cell of E. coli JM109. Sequence analysis of cDNAs was conducted by the dideoxynucleotide chain termination method. Homology of cDNAs of the PVY-OK coat protein genomic RNA with those of PVY-O (Japan), PVY-T (Japan), PVY-TH (Japan), PVYN (The Netherlands),and PVYY (France) was represented as 97.3%, 88.9%, 89.3%, 89.6% and 98.5%, respectively. Homology at the amino acid level turned out to the be 97.4%, 92.5%, 92.9%, 92.9% and 98.5%, respectively.
Potato virus T (PVT) is a plant pathogen in the family Betaflexiviridae, group IV single-stranded positive sense RNA viruses. The major host of PVT is potato, and it has been reported in Ullucus tuberosus, Oxalis tuberosa and Tropaeolum tuberosum. This study aimed at developing reverse transcription (RT)-polymerase chain reaction (PCR) and nested PCR techniques for specific detection of PVT. Finally, Two RT-PCR primer sets were developed and verified. The RT-PCR products were amplified to 734 (PVT RT-PCR primer set 6) and 828 bp (PVT RT-PCR primer set 29) long to detect PVT. The nested PCR primer sets [PVT-N70/C20 ($734{\rightarrow}315bp$) and PVT-N75/C30 ($828{\rightarrow}529bp$)] were developed which are high sensitivity and verification for detection of PVT. Furthermore, a modified-positive control plasmid is use to verify contamination of laboratory in PVT detection. This study supported the diagnose PVT in potato or PVT related hosts.
Potato virus Y (PVY) is one of the most important viruses in many field crops in Korea. In this study, 31 PVY isolates were isolated from infected potato (Solanum tuberosum), tobacco (Nicotiana tabacum), pea (Pisum sativum), and weeds (Veronica persica, Lamium amplexicause and Capsella bursa-pastoris) showing different mosaic symptoms in Jeonbuk, Chungnam, Gangwon, and Gyeongbuk areas in Korea. The 640 nucleotide region containing the C-terminal portion of coat protein (CP) gene and 3'non-translated region (NTR) was amplified by reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) using PVY-specific oligonucleotide primers. Sequence analyses of the amplified DNA fragments showed that the C-terminal portion of CP gene was not significantly different from that of previously reported PVY strains from potato (PVY-OK and -T) and tobacco (PVY-VN) in Korea. Homologies of the deduced CP amino acid sequences were 93.3-99.0% to corresponding regions of the other PVY strains including PV $Y^{N}$, PV $Y^{o}$ , PV $Y^{OK}$ , PV $Y^{T}$ , and PV $Y^{VN}$ . In contrast the sequences located at the 3'-NTR showed more diverse sequence homologies (76.4-99.7%). These results indicate that the C-terminal portion of the CP gene was relatively conserved while sequences at the 3'NTR were more diverse and variable over the host species and the regions where they were isolated.e isolated.
A flue-cured tobacco variety (Nicotiana tabacum cv. Wisconsin) was used for Plant transformation with the complementary DNA (cDNA) of potato virus Y-necrosis strain (PVY-VN) replicase gone (Nb) which was synthesized through reverse-transcription Primed with oligo(dT) and Polymerization using RNase H-digested template. The cDNA was cloned into Plant expression vector Plasmid (PMBP2), and introduced into tobacco plants by co-culturing tobacco leaf disks with Agrobacterium tumefaciens LBA4404 containing the plasmid before Plant regeneration. Eight Plants, in which the inserted cDNA fragment was detected by Polymerase chain reaction (PCR), out of 70 putative transformants inserted with sense-oriented Mb cDNA showed no symptom at 3 weeks after inoculation, while the other 62 plants, and all plants with vector gone only and antisense-oriented NIb cDNA had susceptible vein-necrosis symptoms. However, only 2 of the 8 resistant plants were highly resistant, which remained symptomless up to 10 weeks after inoculation. Among the first progenies (T1) from self-fertilized seeds of the two resistant transgenic plants, less than 10 % of 71 plants appeared highly resistant (with no symptom), 70% moderately resistant (with mild symptoms on 1 - 2 leaves), and about 20% susceptible (with susceptible symptoms on 3 or more leaves) at 3 weeks after inoculation. These results suggest that the PVY resistance was inherited in the 71 generation. Key words : potato virus Y. viral replicase gene, transgenic tobacco Plants, resistance.
The cDNAs derived from the coat protein (CP) genes of six plant RNA viruses, tobacco mosaic virus-pepper strains (TMV-P) and -ordinary strain (TMV-OM), potato virus Y (PVY), turnip mosaic virus (TuMV), cucumber mosaic virus (CMV) and potato leafroll virus (PLRV), were subcloned into the transcription vector, pSPT18, containing SP6 and T7 promoters. The digoxigenin (DIG)-labeled RNA polymerase after linearlization of the cloned pSPTs with XbaI or SacI, and were tested for their sensitivities for the detection of the six viruses. In slot-blot hybridization, dilution end points for the detection of TMV-P and TMV-OM were 10-4, while those of PVY, TuMV and CMV were 10-3. PLRV was detected at the dilution of 10-2. When each RNA probe was applied for the detection of the viruses in the preparations from the leaf disks (8 mm in diameter, and 12 to 15 mg in weight) of infected natural host plants, TMV-P, TMV-OM and TuMV could be detected from one disk, while PVY from 1 or 2 disks. CMV was detected in the preparation from two disks, and PLRV from three disks. With DIG-labeled RNA probe, PVY was detected at 5 days after inoculation, but with ELISA the virus was detected at 8 days after inoculation to tobacco (Nicotiana tabacum cv. Xanthi nc) plants on which symptoms appeared at 9 days after inoculation. No difference was observed in cross reaction between the RNA probes for the detection of TMV-P and TMV-OM.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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