Postantibiotic effects (PAE) refer to suppression of the bacterial growth following limited periods of exposure to an antibiotic and subsequent to the removal of the antibiotic agent. Fusobacterium nucleatum and Porphyromonas gingivalis are Gram-negative anaerobic bacteria associated with several periodontal diseases. In this study, postantibiotic effects (PAE), postantibiotic sub-MIC effect (PA SME) and sub-MIC effect (SME) of antibiotics on F. nucleatum ATCC 25586 and P. gingivalis W50 were investigated. The PAE was induced by 10X the MIC of antibiotic and antibiotic was eliminated by washing. The PA SMEs were studied by addition of 0.1, 0.2 and 0.3X MICs during the postantibiotic phase of the bacteria, and the SMEs were studied by exposition of the bacteria to antibiotic at the sub-MICs only. Amoxicillin, doxycycline and tetracycline induced PAE for F. nucleatum ATCC 25586 and P. gingivalis W50. But metronidazole and penicillin induced PAE for only F. nucleatum ATCC 25586. Metronidazole and doxycycline induced PA SME and SME for both species of anaerobic bacteria used in this study. The PA SME values for both strains were substantially longer than the SME values. The present study showed the existence of PAE, PA SME and SME for various antibiotics against F. nucleatum ATCC 25586 and P. gingivalis W50.
헤민과 메나디온 제한에 의한 Porphyromonas gingivalis(P. gingivalis) W50의 병독력의 변화를 검색하고자, 실험관내 병독력을 NIH 3T3 세포의 세포활성 변화로 관찰하였고, 생체내 병독력은 배양상청액을 ICR mouse 피하조직에 주사한 후의 염증반응을 관찰하였다. 헤민 존재 하에 배양한 P. gingivalis W50 배양상청액에 의한 mouse 3T3 세포의 세포활성은 헤민과 메나디온 없이 배양한 세포의 활성보다 낮았다. 헤민과 메나디온을 첨가하지 않고 배양한 세균의 생체내 병독력은 중등도의 염증세포 침윤과 울혈에 의한 출혈, 미약한 세포간질의 부종과 근육 파괴를 보였다. 메나디온 존재 하에서 배양한 세균은 미약한 염증세포의 침윤, 울혈에 의한 출혈 및 근육의 파괴가 관찰되었다. 헤민 존재하에서 중등도의 울혈에 의한 출혈, 미약한 세포간질의 부종, 염증세포의 침윤 및 근육파괴가 관찰되었다. 헤민과 메나디온 존재 하에서 배양한 세균은 심한 염증세포의 침윤과 중등도의 세포간질의 부종 및 울혈에 의한 출혈을 보였다. 이상의 연구 결과 P. gingivalis W50 배양 상층액의 병독력은 헤민에 의하여 영향을 받는 것으로 생각된다.
치주질환은 만성염증성 질환으로 치조골소실을 일으켜 성인치아상실을 유발하는 요인 중 하나이다. 그람 음성세균인 Aggregatibacter actinomycetemcomitans와 Porphyromonas gingivalis는 치주질환환자의 병소에서 쉽게 동정된다. 지질다당체(Lipopolysaccharide; LPS)는 그람 음성세균의 핵심 독력인자로 알려져 있다. 이러한 세균과 LPS는 파골세포에 의한 골소실을 조절하는 요인 중 하나이다. 그러므로 본 연구에서는 동물모델을 활용하여 A. actinomycetemcomitans와 P. gingivalis의 의한 골소실 여부를 확인하고, 기전규명을 위하여 A. actinomycetemcomitans, P. gingivalis, A. actinomycetemcomitans와 P. gingivalis에서 분리한 LPS에 의한 파골세포분화 영향을 연구하였다. 열사멸한 A. actinomycetemcomitans (HKAa)와 열사멸한 P. gingivalis (HKPg)가 복강으로 투여된 쥐의 대퇴골은 대조군에 비해 감소된 골량을 보여주었다. 이러한 골소실의 증가가 파골세포분화 때문인지 확인하기 위해 파골세포분화를 연구한 결과, bone marrow-derived macrophage (BMM)의 RANKL-매개 파골세포분화를 감소시켰으나, committed osteoclast precursor의 파골세포분화를 유도함을 확인하였다. 세균에 의한 파골세포분화 결과와 동일하게 A. actinomycetemcomitans와 P. gingivalis에서 분리한 LPS 역시 RANKL-매개 파골세포분화는 감소시키고, committed osteoclast precursor의 파골세포분화를 유도하였다. 결과적으로 치주원인균인 A. actinomycetemcomitans와 P. gingivalis는 committed osteoclast precursor의 파골세포분화를 증가시키는데, 이 세균들의 LPS가 핵심 역할을 수행하는 것으로 판단되며 이를 통해 골 흡수를 유발함을 알 수 있었다.
Porphyromonas gingivalis is a gram-negative bacteria of rod shape, and grown in an anerobic condition. It colonizes in subgingival crevice and is known as a major pathogen causing chronic periodontitis. It possesses an invasive property and replicative potential within various cell types, presumably playing an important role in modulating biological behaviors of oral cancer. However, the pathophysiology of P. gingivalis in the malignant transformation of oral cancer has not been fully understood. In this study, we aimed to investigate molecular changes of oral squamous cell carcinoma cells induced by repetitive P. gingivalis infection that clinically resembles chronic periodontitis.
재조합 P. gingivalis 열충격단백에 대한 치주질환자의 항체반응과 세포성 면역반을을 검사한 결과, 항체역가는 건강군의 역가에 비해 통계적으로 유의성 있게 상승되어 있었고, 항원특이성 T 세포면역반응을 관찰할 수 있었다. 이러한 결과로 미루어보아 P. gingivalis 열충격단백은 치주질환의 면역병리기전에 관여한다는 것을 관찰할 수 있었다.
Park, Kyung-Min;Choo, Jeong-Han;Sohn, Jong-Hee;Lee, Sun-Hee;Hwang, Jae-Kwan
Food Science and Biotechnology
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제14권2호
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pp.286-289
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2005
Active antibacterial compound against periodontitis-causing bacterium Porphyromonas gingivalis was isolated from Kaempferia pandurata and identified as panduratin A. Minimum inhibitory concentration (MIC) value of panduratin A was $4\;{\mu}g/mL$, much lower than those of other natural antibacterial agents. Panduratin A also showed antibacterial activity against Prevotella intermedia ($2\;{\mu}g/mL$), P. loescheii ($4\;{\mu}g/mL$), and cariogenic Streptococcus mutans ($4\;{\mu}g/mL$). Damage on cell wall and perturbation of cytoplasmic membrane of panduratin A-treated P. gingivalis were visualized through transmission electron microscopy. These results suggest panduratin A, exhibiting strong and preferential antiperiodontal and anticariogenic activities, may be utilized in functional foods for prevention of oral diseases.
Porphyromonas gingivalis has been implicated in periodontal diseases. Accumulating evidence suggests that cardiovascular disease is the most prevalent medical problem in patients with periodontal diseases. In order to check the possibility that P. gingivalis is involved in coronary heart disease, the present study was performed to observe P. gingivalis adherence and invasion of human coronary artery endothelial cells (HCAEC) and production of cytokines and growth factors by HCAEC upon P. gingivalis infection. $^3H$-labeled P. gingivalis 381 was incubated with HCAEC for 90 min. The radioactivity of the washed HCAEC was a measure of the absorbed (adhering and invading) P. gingivalis. The absorption radioactivity of the HCAEC infected by P. gingivalis was determined to be 59.58% of the input bacterial cells. In contrast, the absorption radioactivity of the cells infected by S. gordonii Challis which was employed as a control was negligible (0.59%). DPG3, a P. gingivalis mutant defective of fimbriae, appeared to be impaired to some extent in capability of adherence/invasion as compared to that of the parental strain 381, showing 43.04% of the absorption radioactivity. The absorption radioactivity of the HCAEC infected by P. gingivalis 381 in the presence of excessive fimbriae at the concentrations of $50\;{\mu}g$ and $100\;{\mu}g/ml$ was 57.27 and 45.44%, respectively. Invasion of HCAEC by P. gingivalis 381 was observed by an antibiotic (metronidazole) protection assay and transmission electron microscopy (TEM). In the antibiotic protection assay, invasion by the bacterium was measured to be 0.73, 1.09, and 1.51% of the input bacterial cells after incubation for 30, 60, and 90 min, respectively. Invasion by DPG3 was shown to be 0.16% after 90-min incubation. In comparison of invasion efficiency at 90 min of the incubation, the invasion efficiency of DPG3 was 0.37% while that of its parental strain 381 was 2.54%. The immunoblot analysis revealed fimbriae of P. gingivalis did not interact with the surface of HCAEC. These results suggest that fimbriae are not the major contribution to the adherence of P. gingivalis to HCAEC but may be important in the invasion of HCAEC by the bacterium. The presence of cytochalasin D ($1\;{\mu}g/ml$) and staurosporine ($1\;{\mu}M$) reduced the invasion of HCAEC by P. gingivalis 381 by 78.86 and 53.76%, respectively, indicating that cytoskeletal rearrangement and protein kinase of HCAEC are essential for the invasion. Infection of P. gingivalis induced HCAEC to increase the production of TNF-${\alpha}$. by 60.6%. At 90 min of the incubation, the HCAEC infected with P. gingivalis cells was apparently atypical in the shape, showing loss of the nuclear membrane and subcellular organelles. The overall results suggest that P. gingivalis may cause coronary heart disease by adhering to and invading endothelial cells, and subsequently damaging the cells.
Porphyromonas gingivalis is a major etiologic agent of chronic periodontitis and cytokines produced by macrophages play important roles in the pathogenesis of periodontal diseases. In this study we investigated the cytokine response of phorbol myristate acetatedifferentiated THP-1 cells exposed to P. gingivalis. Compared with the prominent cell wall components of P. gingivalis (lipopolysaccharide and the major fimbrial protein FimA), live P. gingivalis stimulated much higher levels of cytokine production. In addition, whereas low multiplicity of infection challenges (MOI=10) of P. gingivalis 381 stimulated high levels of monocyte chemoattractant protein-1 (MCP-1), tumor necrosis factor-${\alpha}$ (TNF-${\alpha}$), interleukin-6 (IL-6), and IL-1${\beta}$, high dose challenges with this bacterium (MOI = 100) resulted in a substantially diminished production of MCP-1 and IL-6. Moreover, high MOI P. gingivalis challenges achieved only low levels of induction of MCP-1 and IL-6 mRNA. The decreased production of MCP-1 and IL-6 appeared to be mediated by P. gingivalis proteases, because high MOI challenges with congenic protease mutant strains of this microorganism (MT10 and MT10W) did not result in a diminished production of MCP-1 and IL-6. Similar to its protease mutant strains, leupeptin (a protease inhibitor)- treated P. gingivalis at high doses induced high levels of MCP-1 production. To examine the mechanisms underlying the diminished production of MCP-1 by P. gingivalis proteases, the activation of mitogen-activated protein (MAP) kinases and NF-${\kappa}$B was compared between the 381 and MT10W strains. Whilst high doses of both 381 and MT10W similarly activated the three members of the MAP kinase family, the DNA binding activity of NF-${\kappa}$B, as revealed by gel shift assays, was greatly increased only by MT10W. Taken together, our data indicate that P. gingivalis stimulates the production of high levels of TNF-${\alpha}$, IL-1${\beta}$, IL-6, and MCP-1 but that high dose challenges with this bacterium result in a diminished production of MCP-1 and IL-6 via the protease-mediated suppression of NF-${\kappa}$B activation in THP-1 macrophagic cells.
Porphyromonas gingivalis has been implicated as an important periodontophathic bacterium in the etiology and progression of periodontal diseases. It has been reported that P.gingivalis may mediate periodontal destruction not only directly through its virulence factors, but also indirectly by including complex host mediated inflammatory reponses. The purpose of this study was t o evaluate the effects of P.gingivalis on the bone formation and resorption by osteoblasts. For this purpose, after determining the concentration below which sonicated P.gingivalis extracts (SPEs) have no cytotoxicity on mouse calvarial primary osteoblastic (POB) cells, we investigated the effects of SPEs on the alkaline phosphatase (ALP) activity, matrix metalloproteinase (MMP) expression (MMP-2, -9, 13), and prostaglandin $E_2$ ($PGE_2$) release in POB cells by treatment with SPEs below that concentration. The results were as follows; 1. SPEs showed no cytotoxic effect on POB cells up to a concentration of 1 ${\mu}m$/ml. 2. The treatment with SPEs reduced ALP activity in a dose-dependent manner in POB cells, In addition, when we investigated the effect of SPEs (1 ${\mu}m$/ml) on ALP activity for different exposure periods, statistically significant inhibition of ALP activity was shown at 2 days of exposure, and further significant inhibition occurred by extending the periods of exposure. 3. The treatment with SPEs stimulated the gene expression of MMP-9 in POB cells. 4. The pre-treatment with SPEs increased the amount of $PGE_2$ released in POB cells. In summary, the present study shows that P.gingivalis could inhibit osteogenesis and stimulate bone resorption not only by reducing ALP activity but also by increasing MMP-9 mRNA expression in osteoblasts, possibly through an endogenous $PGE_2$ pathway. In addition, our results suggest that if P.gingivalis affects osteoblasts in early differentiation stage, such effects by P. gingivalis could be irreversible.
Jinuk Jeong;Yunseok Oh;Junhyeon Jeon;Dong-Heon Baek;Dong Hee Kim;Kornsorn Srikulnath;Kyudong Han
Genomics & Informatics
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제21권1호
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pp.13.1-13.8
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2023
Importance of accurate molecular diagnosis and quantification of particular disease-related pathogenic microorganisms is highlighted as an introductory step to prevent and care for diseases. In this study, we designed a primer/probe set for quantitative real-time polymerase chain reaction (qRT-PCR) targeting rgpA gene, known as the specific virulence factor of periodontitis-related pathogenic bacteria 'Porphyromonas gingivalis', and evaluated its diagnostic efficiency by detecting and quantifying relative bacterial load of P. gingivalis within saliva samples collected from clinical subjects. As a result of qRT-PCR, we confirmed that relative bacterial load of P. gingivalis was detected and quantified within all samples of positive control and periodontitis groups. On the contrary, negative results were confirmed in both negative control and healthy groups. Additionally, as a result of comparison with next-generation sequencing (NGS)-based 16S metagenome profiling data, we confirmed relative bacterial load of P. gingivalis, which was not identified on bacterial classification table created through 16S microbiome analysis, in qRT-PCR results. It showed that an approach to quantifying specific microorganisms by applying qRT-PCR method could solve microbial misclassification issues at species level of an NGS-based 16S microbiome study. In this respect, we suggest that P. gingivalis-specific primer/probe set introduced in present study has efficient applicability in various oral healthcare industries, including periodontitis-related microbial molecular diagnosis field.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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