Improvement and possible commercialization of a home-made electroporation apparatus(home-made) were further tried to establish a simple and effective introduction of foreign gene into sperm followed by in vitro fertilization. Expressions of introduced pJJ9 and pNT plasmids were shown in all fertilized eggs with electroporated spermatozoa. In particular, with this gene transfer system all the fry showed a consistently transient expression in the syncytium of the yolk sac. This fact is important since some required, minute quantity of human proteins can be produced from the established transient expression on the yolk sac of all fry derived from in vitro fertilization with electroporated spermatozoa. To explore tissue-specific expression in fish, which we will use a similar system later, we targeted the nerve tissue to see whether tissue-specific promoter is working in fish properly. pNT plasmid containing a nerve cell-specific tubulin promoter gene demonstrated consistently exact targeted expressions among the developing nerve cells in later stages of embryos and hatched fry. Finally, liver-specific genes are now being cloned by using already selected primers for useful human protein gene fusion.
A gene coding for a xylanase of thermophilic alkalophilic Bacillus sp. K-17 was cloned in Escherichia coli C600 with pBR322. Plasmid pAXl13 was isolated from a transformant producing xylanase, and the xylanase gene was located in a 4.3 Kb HindIII fragment. Biotinylated pAXl13 hybridized to a 4.3 Kb HindIII fragment from chromosomal DNA of thermophilic alkalophilic Bacillus sp. K-17. The xylanase activity was observed in the extracellular curture fluid of E. coli carrying pAXl13. The pAXl13-encoded xylanase had the same enzymatic properties as those of xylanase I produced by thermophilic alkalophilic Bacillus sp. K-17.
Gamgung-tang (GGT) that is included in Gamdu-tang (consists of Glycyrrhizae Radix, black beans) and Gunggui-tang(consists of Angelicae Radix and Cnidii Rhizoma) showed therapeutic effect of autoimmume thyroiditis in the previous reports. GGT was tested for the safety using Ames and umu gene expression mutagenicity tests. In Ames test, Salmonella typhimurium TA98 and TA100 were used to identify mutagenic property, and the number of histidine revertants was measured. In SOS umu test, Salmonella typhimurium TA1535 containing plasmid pSK1002 was used as a test strain, and we monitored the levels of umu operon expression by measuring the $\beta-galactosidase$ activity. Mutagenic activity in any assays we tested was not found. After treating S-9 mixture with GGT, mutagenic activity was also not found. The results of this study suggested that there was no DNA damage and mutagenicity of GGT.
The transposon TnphoA was used to generate avirulent mutants from a type A Pasteurella multocida. A suicide vector plasmid pRT733 carrying TnphoA, having the kanamycin resistant gene and harbored in Escherichia coli K-12 strain SM10(${\lambda}pir$), was mated with streptomycin resistant P. multocida P-1059 strain as recipient. This resulted in the generation of two TnphoA insertion mutants (transconjugants, tc95-a and tc95-b) which were resistant both to kanamycin ($Km^{R}$) and streptomycin ($Sm^{R}$), secreted alkaline phosphatase, and were avirulent to turkeys. Southern blot hybridization using two probes derived from internal fragments of TnphoA, confirmed the insertion of TnphoA into 12.9kb or 13.7kb DNA fragment from the EcoRV digested genomic fragments of transconjugants. The two transconjugants, tc95-a and tc95-b, were distinguishable from their parent strains by differences in ribotypes, and outer membrane protein profiles. TnphoA insertion in both transconjugants also resulted in constitutive expression of a 33Kd iron regulated outer membrane protein (IROMP). The gene encoding $Sm^{R}$ was also located within the same 12.9kb EcoRV genomic fragment from both transconjugants. Furthermore, our finding that the recipient P. multocida P-1059 $Sm^{R}$ strain and both transconjugants were avirulent to turkeys suggest that the either 12.9kb or 13.7kb genomic DNA contains the virulence gene and speculate that the presence of $Sm^{R}$ gene or TnphoA insertion may be responsible for regulating and inactivating the gene(s) encoding virulence in P. multocida.
Kim, Young-Ho;Kim, Youn-Sook;Lee, Jae-Ran;Lee, Eun-Kyung
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.3
no.1
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pp.31-38
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1993
A bacterial strain KY-l isolated from sewage was able to produce an extracellular agarase(agarose 4-glycanohydrolase. EC 3.2.1.81). The strain KY-1 was identified as Cytophaga fermentans subsp. agarovorans based on its morphological and physiological characteristics. The agarase was purified by ammonium sulfate precipitation followed by DEAE-Sephadex A-50. Bio-Gel P-100. and CM-Cellulose column chromatography. The molecular weight of the purified enzyme was 24 kDa by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The optimum temperature and pH for the enzyme activity were 30^{circ}C and 7.5, respectively. The enzyme activity was significantly inhibited in the presence of 0.1 mM $HgCl_2$. whereas it was elevated 3 times by $MnSO_4$ at 1 mM concentration. The Km value and Vmax were 16.67 mg/ml and 3.77 unit/ml.min. The agarase gene was cloned into Escherichia coli MC1061 using the plasmid vector pBR322. A 1.4 Kb DNA fragment of PstI-digested chromosomal DNA of C. fermentans KY-l was inserted into the PstI site of pBR322. expressed in the E. coli. and up to 60% of the total enzyme was extracellularly secreted. Enzymatic properties of the extracellular agarases produced by both the transformant and the donor were very similar in terms of optimal pH and temperature.
Probing Streptomyces albus ATCC 21838 chromosomal DNA with a proline tRNA sequence resulted in an isolation of a putative integrating element in the 6.4-kb EcoRI fragment. It was found that Streptomyces lividans TK-24 transformed with a cloned DNA fragment on a multicopy plasmid, produced a higher level of spore pigment and mycelial red pigment on a regeneration agar. Furthermore, the transformant S. lividans TK-24 produced a markedly increased level of undecylprodigiosin in a broth culture. A nucleotide sequence analysis of the cloned region revealed several open reading frames homologous to the integrases of integrating plasmids or temperate bacteriophages, signal-transducing regulatory proteins with a conserved ATP-binding domain, oxidoreductases ($\beta$-ketoacyl reductase), and an AraC-like transcriptional regulator. To examine the effect on antibiotic production, each coding region was overexpressed separately from the other genes in the region in S. lividans TK-24 with; pJHS3044 for the expression of the signal-transducing regulatory protein homologue, pJHS3045 for the homologue of oxidoreductase, and pJHS3051 for the homologue of the AraC-like transcriptional regulator. Phenotypic studies of S. lividans TK-24 strains harboring plasmids for the overexpression of individual genes suggested the following effects of the genes on antibiotic production: The oxidoreductase homologue stimulated the production of actinorhodin and undecylprodigiosin, which was influenced by the culture conditions; the homologue of the AraC-like transcriptional regulator was the most effective factor in antibiotic production within all the culture conditions tested; the signal-transducing regulatory protein homologue repressed the effect due to the homologue of the AraC-like transcriptional regulator, however, the antibiotic production was derepressed upon entering the stationary phase.
Kim, Do Kyun;Kim, Kyoung Hoon;Cho, Eun Ji;Joo, Seoung-Je;Chung, Jung-Min;Son, Byoung Yil;Yum, Jong Hwa;Kim, Young-Man;Kwon, Hyun-Ju;Kim, Byung-Woo;Kim, Tae Hoon;Lee, Eun-Woo
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.23
no.3
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pp.430-435
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2013
Multidrug resistance, especially multidrug efflux mechanisms that extrude structurally unrelated cytotoxic compounds from the cell by multidrug transporters, is a serious problem and one of the main reasons for the failure of therapeutic treatment of infections by pathogenic microorganisms as well as of cancer cells. Streptococcus mutans is considered one of the primary causative agents of dental caries and periodontal disease, which comprise the most common oral diseases. A fragment of chromosomal DNA from S. mutans KCTC3065 was cloned using Escherichia coli KAM32 as host cells lacking major multidrug efflux pumps. Although E. coli KAM32 cells were very sensitive to many antimicrobial agents, the transformed cells harboring a recombinant plasmid became resistant to several structurally unrelated antimicrobial agents such as tetracycline, kanamycin, rhodamin 6G, ampicillin, acriflavine, ethidium bromide, and tetraphenylphosphonium chloride. This suggested that the cloned DNA fragment carries a gene encoding a multidrug efflux pump. Among 49 of the multidrug-resistant transformants, we report the functional gene cloning and characterization of the function of one multidrug efflux pump, namely MdeA from S. mutans, which was expressed in E. coli KAM32. Judging from the structural and biochemical properties, we concluded that MdeA is the first cloned and characterized multidrug efflux pump using the proton motive force as the energy for efflux drugs.
Candida Antarctica lipase A (CalA) has been used because of its suitability in industrial applications. CalA has unique features capable to accept tertiary and sterically hindered alcohols among many hydrolases. CalA gene was cloned and constructed in expression vector such as pColdIII/CalA and $pPICZ{\alpha}A$/CalA. The gene encoding pColdIII/CalA was functionally expressed in the cytoplasm of Escherichia coli $Origami^{TM}$ B (DE3) cells. The plasmid $pPICZ{\alpha}A$/CalA linearized by BstX I was integrated into 5'AOX1 region of the chromosomal DNA and was functionally expressed in the methyl atrophic yeast Pichia pastoris. Expressed CalA in P. pastoris (0.7 Unit/mL) showed 35 times higher activity than that in E. coli expression system (0.02 Unit/mL).
Thirteen isolates of Bacillus thunngiensls producing parasporal mclusions, obtained from 45 samples of dust and soil of sericultural tarms in Kyeong-ki province, were exammed for their toxicity against larvae of Lepidoptera, Dipwra and Coleoptera. Of these isolates, Bacillus f thuringiensis NT0423 was toxic to bath Lepidoptera, and Dipteran larvae. NT0423 showed that the $LC_{50}$ values against the Lepldaptora, Plutella macuhpennis and the Diptera, Culex pipiens were $1.30\times10^6$ CFU/ml, $2.88\times10^5$ CFU/ml, respectively. The tYPlcal bipyramldal crystals produced by NT0423 composed of protoxms of 130-140kDa encoded by one or more plasm mid-horne genes. Also, plasmid DNA analysis indicated Lhat this isolate has 9 plasmids which d differ with reported several B. thuringiensis strains.
Brain dopamine systems play a central role in the control of movement, hormone release, and many complex behavior. The action of dopamine at its synapse is terminated predominately by high affinity reuptake into presynaptic terminals by dopamine transporter (DAT). The dopamine transporter(DAT) is membrane protein localized to dopamine-containing nerve terminals and closely related with cocaine abuse, Parkinsonism, and schizophrenia. In present study, the recombinant plasmid pRc/CMV-DAT, constructed by subcloning of a cDNA encoding a bovine DAT into eukaryotic expression vector pRc/CMV, was stably transfected into CV-1 cells(monkey kidney cell line). The DAT activities in the cell lines selected by Geneticin$^{R}$ were determined by measuring the uptake of $[^3H]$-dopamine. The transfected cell lines showed 30-50 fold higher activities than untransfected CV-1 cell line, and this result implies that DAT is well expressed and localized in transfected cells. The transfected cells accumulated $[^3H]$-dopamine in a dose-dependent manner with a $K_{m}$ of 991.6nM. Even though high doses of norepinephrine, epinephrine, serotonin, and choline neurotransmitters inhibited the uptake of $[^3H]$-dopamine, DAT in transfected cell line was proven to be much more specific to dopamine. The psychotropic drugs such as GBR12909, CFT, normifensine, clomipramine, desipramine, and imipramine inhibited significantly the dopamine uptake in tissue culture cells stably transfected with DAT cDNA. Radioactive in situ hybridization was done to map the cellular localization of DAT mRNA-containing cells in the adult rat central nervous system. The strong hybridization signals were detected only in the substantia nigra pars compacta and ventral tegmental area. The restricted anatomical localization of DAT mRNA-containing cells confirms the DAT as a presynaptic marker of dopamine-containing cells in the rat brain.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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