벼의 엽록체 small HSP의 고온 스트레스 하에서의 기능을 밝히기 위하여 Oshsp21 cDNA를 pET 발현 vector에 도입하였다. 형질전환된 대장균 배양액에 IPTG를 첨가하여 단백질 발현을 유도시킨 다음 고온 stress 하에서의 생존율을 대조구와 비교하였다. 그 결과 대조균주의 경우 $50^{\circ}C$에서의 생존율이 크게 감소하였으나 Oshsp21이 발현된 대장균의 경우 70% 이상의 생존율을 나타내었다. 또한 대장균 단백질을 $55^{\circ}C$에서 30분간 열처리한 후, 대장균 단백질을 가용성과 비가용성 단백질로 분획한 다음, 각각의 비율을 조사한 결과, 대조균주의 경우 총 단백질의 약 60%가 비가용성 단백질로 변성되었으나, Oshsp21을 발현시킨 대장균의 경우 총 단백질의 약 35%만이 비가용성 단백질로 나타났다. 이러한 결과는 벼의 엽록체 small HSP는 세포내에서 분자 chaperone으로 기능하여 고온내성을 부여할 수 있음을 나타낸다.
Nematode infection in the epithelial tissue of cultured rockfish Sebastes schlegeli was first reported in 2012. Since then, nematode infections have caused serious economic losses in rockfish aquaculture on the west coast of Korea. Taxonomic and life cycle information for this parasite are currently unknown. In this study, 18S rRNA and cytochrome c oxidase subunit I (COI) genes were used for molecular identification and polymerase chain reaction (PCR) to detect the invisible stages of this parasite. Nucleotide sequences of the 18S rRNA of the rockfish nematode showed 98% identity with that of Philometra morii. Therefore, this rockfish nematode was classified to the Philometridae family. However, we could not identify it to genus level using 18S rRNA. Its COI nucleotide sequences shared 85% and 82% identities with those of Bursaphelenchus sinensis and Philometra overstreeti, respectively. In addition, two gene-specific primer sets were designed based on the 18S rRNA gene to detect the intermediate host and nematode larvae. These primers were specific to this rockfish nematode without cross-reacting to other pathogens. The detection limit of the PCR assay using these primers was 1,000 copies of nematoda plasmid DNA. Therefore, the PCR assay described here is suitable for the detection of nematode DNA within rockfish. In addition, this PCR assay could be used to detect nematode larvae and the intermediate host.
Although the genus Leuconostoc, generally found in various fermented foods, has often been suggested to be a novel probiotic for food fermentation and health promotion, the strains in this genus showed low acid tolerance and low osmotic stress resistance activities, which are required for survival during food fermentation events. Recently, a novel species of Weissella, W. jogaejeotgali $FOL01^T$ (= KCCM 43128 = JCM 30580), was isolated from Korean fermented clams. To determine the genomic features of this new species, its genome was completely sequenced and analyzed. The genome consists of a circular chromosome of 2,114,163 bp of DNA with a G+C content of 38.8%, and the plasmid pFOL01 consists of 35,382 bp of DNA with a G+C content of 39.1%. The genome analysis showed its potential for use in food fermentation and osmotic stress resistance abilities for processing in food industries. In addition, this strain was predicted to have acid tolerance and adhesion to the mucosal layer for survival and colonization in the gut. Subsequent experiments substantiated these abilities, suggesting that W. jogaejeotgali may have probiotic potential and a high survival rate during food fermentation. Therefore, it may be suitable as a novel probiotic strain for various applications in food industries.
Park, Ji-Young;Kang, Hee-Kyoung;Jin, Xing-Ji;Ahn, Joon-Seob;Kim, Seung-Heuk;Kim, Do-Won;Kim, Do-Man
한국생물공학회:학술대회논문집
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한국생물공학회 2005년도 생물공학의 동향(XVII)
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pp.644-648
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2005
Dextranase (${\alpha}$-1,6-D-glucan-6-glucanogydrolase:E.C. 3.2.1.11) catalyzes the hydrolysis of ${\alpha}$-(1.6) linkages of dextran. A lsd1 gene encoding an extracellular dextranase was isolated from the genomic DNA of L. starkeyi. The lsd11 gene is a synthetic dextranase (lsd1) after codon optimization for gene expression with Pichia pastoris system. A open reading frame of lsd11 gene was 1827 bp and it was inserted into the pPIC3.5K expression vector. The plasmid linearized by Sac I was integrated into the 5'AOX region of the chromosomal DNA of P. pastoris. The lsd11 gene fragment encoding a mature protein of 608 amino acids with a predicted molecular weight of 70 kDa, was expressed in the methylotrophic yeast P. pastoris by controling the alcohol oxidase-1 (AOX1) promoter. The recombinant lds11 was optimized by using the shake-flask expression and upscaled using fermentation technology. More than 9.8 mg/L of active dextranase was obtained after induction by methanol. The optimum pH of LSD11 was found to be 5.5 and the optimum temperature $28^{\circ}C$.
Kim, Dong-Myung;Choi, Cha-Yong;Ahn, Jin-Ho;Kim, Tae-Wan;Kim, Nam-Young;Oh, In-Suk;Park, Chang-Gil
Biotechnology and Bioprocess Engineering:BBE
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제11권3호
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pp.235-239
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2006
Due to recent advances in genome sequencing, there has been a dramatic increase in the quantity of genetic information, which has lead to an even greater demand for a faster, more parallel expression system. Therefore, interest in cell-free protein synthesis, as an alternative method for high-throughput gene expression, has been revived. In contrast to in vivo gene expression methods, cell-free protein synthesis provides a completely open system for direct access to the reaction conditions. We have developed an efficient cell-free protein synthesis system by optimizing the energy source and S30 extract. Under the optimized conditions, approximately $650{\mu}g/mL$ of protein was produced after 2h of incubation, with the developed system further modified for the efficient expression of PCR-amplified DNA. When the concentrations of DNA, magnesium, and amino acids were optimized for the production of PCR-based cell-free protein synthesis, the protein yield was comparable to that from the plasmid template.
Kim, Jung-Ae;Kim, Jung-Mi;Kim, Hwan-Gyu;Kim, Beom-Tae;Hwang, Ki-Jun;Park, Seung-Moon;Yang, Moon-Sik;Kim, Dae-Hyuk
The Plant Pathology Journal
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제25권2호
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pp.179-183
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2009
To facilitate the genetic manipulation of Cladosporium phlei, a causal agent of leaf spot disease in timothy (Phleum pretense), protoplast-mediated transformation of C. phlei has been developed and the resulting transformants were characterized in this study. Hygromycin B resistance was applied as a dominant selection marker due to the sensitivity of C. phlei to this antibiotic. The transformation efficiency ranged from approximately 20-100 transformants per experiment. Southern blot analysis of stable transformants revealed that transformation occurred by way of stable integration of the vector DNA into the fungal chromosome. PCR analysis and plasmid rescuing of randomly selected transformants suggested that integration of tandem repeat copies of vector DNA was common. In addition, multiple integrations of the transforming vector at different chromosomal sites were also observed. The establishment of a transformation method for C. phlei facilitates strain improvement of this fungus and can be applied as an initial step in the molecular analysis of pigment production in this fungus.
Objective: An water extract of the Hwang-Ryun-Chung-Sim-Um (HRC) was assessed to determine the mechanisms of its antioxidant activity. In addition, the HRC was examined in vitro for the inhibitory effect on the acetylcholinesterse (AChE). Methods: The HRC exhibited a concentration-treatment; scavenging ${\alpha},{\alpha}-diphenyl-{\beta}-picrylhydrazyl$ (DPPH) radical, linoleic acid oxidation in a thiocyanate assay system, hydroxyl radical-induced DNA nicking. We investigated mRNA levels such as catalase activity, superoxide-dismutase and glutathione peroxidase. The water extract of HRC showed inhibitory effect on AChE activity. Result: The HRC extract showed dose-dependent free radical scavenging activity, including DPPH radicals and hydroxyl radicals, using different system. The HRC was also found to be effective in protecting plasmid DNA against the strand breakage induced by Hydroxyl radicals in Fenton's reaction mixture. Futhermore, catalase mRNA expression levels increased, but SOD1 and MnSOD was not expressed. HRC in a various concentration-dependent decreased AChE mRNA levels and inhibitory effect showed AChE. Conclusion: According to the above results, it is supposed that HRC is applicable to the Dementia-type of Alzheimer clinically.
Hoxc8 is one of the homeotic developmental control genes regulating the expression of many downstream target genes, through which animal body pattern is established during embryonic development. In previous proteomics analysis, proliferating cell nuclear antigen (PCNA) which is also known as cyclin, has been implied to be regulated by Hoxc8 in F9 murine embryonic teratocarcinoma cell. When the 5' upstream region of PCNA was analyzed, it turned out to contain 20 Hox core binding sites (ATTA) in about 1.17 kbp (kilo base pairs) region ($-520{\sim}-1690$). In order to test whether this region is responsible for Hoxc8 regulation, the upstream 2.3 kbp fragment of PCNA was amplified through PCR and then cloned into the pGL3 basic vector containing a luciferase gene as a reporter. When the luciferase activity was measured in the presence of effector plasmid (pcDNA : c8) expressing murine Hoxc8, the PCNA promoter driven reporter activity was reduced. To confirm whether this reduction is due to the Hoxc8 protein, the siRNA against Hoxc8 (5'-GUA UCA GAC CUU GGA ACU A-3' and 5'-UAG UUC CAA GGU CUG AUA C-3') was prepared. Interestingly enough, siRNA treatment up regulated the luciferase activity which was down regulated by Hoxc8, indicating that Hoxc8 indeed regulates the expression of PCNA, in particular, down regulation in NIN3T3 cells. These results altogether indicate that Hoxc8 might orchestrate the pattern formation by regulating PCNA which is one of the important proteins involved in several processes such as DNA replication and methylation, chromatin remodeling, cell cycle regulation, differentiation, as well as programmed cell death.
The P38 promoter of minute virus of mice (MVM) is a very weak promoter which is strongly transactivated by viral nonstructural proteins. To analyze the upstream sequence of the P38 promoter which is responsible for the transactivation by nonstructural proteins in MVM, chloramphenicol acetyltransferase (CAT) reporter plasm ids containing a series of 5' deletion and internal deletion mutants of the P38 promoter were constructed. The wild type and mutant CAT constructs of P38 promoter were cotransfected into murine A92L fibroblast cells with a plasmid expressing viral nonstructural proteins by DEAE-dextran method. Each promoter activity was analyzed by CAT assay. As previously reported (Ahn et al., 1992), the proximal DNA cis-elements required for transactivation of the MVM P38 promoter are GC box and TATA box. However, the analysis of 5' deletion mutants showed that H-l tar like sequence (MVM TAR) which is located between -143 and -122 relative to the transcription initiation site is also required for transactivation of the P38 promoter by nonstructural proteins. Interestingly, even if the MVM TAR was removed by internal deletion, the level of the transactivation is still 70% of wild type level of transactivation. We also found that, in addition to the MVM TAR motif, there are two other motifs which are similar to the MVM TAR sequence. When these TAR like motifs were further deleted, the levels of transactivation were decreased further. Taken together, the MVM TAR sequence and TAR like motifs located upstream of P38 promoter are playing an important role for the transactivation of P38 promoter by nonstructural proteins in minute virus of mice.
Park, S.M.;Song, S.J.;Uhm, S.J.;Cho, S.G.;Park, S.P.;Lim, J.H.;Lee, H.T.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제17권12호
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pp.1641-1646
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2004
The objective of this study was to generate transgenic mice expressing human resistin gene by using the tetraploidembryonic stem (ES) cell complementation method. Human resistin gene was amplified from human fetal liver cDNA library by PCR, cloned into $pCR^{(R)}$ 2.1 $TOPO^{(R)}$ vector and constructed in pCMV-Tag4C vector. Mammalian expression plasmid containing human resistin was transfected into D3-GL ES cells by Lipofectamine 2,000, and then after 10-12 days of transfection, the human resistin-expressing cells were selected with G418. In order to produce tetraploid embryos, blastomeres of diploid embryos at the two-cell stage were fused with two times of electric pulse using 60 V 30 $\mu$sec (fusion rate: 2,114/2,256, 93.5%) and cultured up to the blastocyst stage (development rate: 1,862/2,114, 94.6%). The selected 15-20 ES cells were injected into tetraploid blastocysts, and then transferred into the uteri of E 2.5 d pseudopregnant recipient mice. To investigate the gestation progress, two E 19.5 mused fetuses were recovered by Cesarean section of which one fetus was confirmed to contain human resistin gene by genomic DNA-PCR. Therefore, our findings demonstrate that tetraploid-ES mouse technology can be considered as a useful tool to produce transgenic mice for the rapid analysis of gene function in vivo.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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