A callus-mediated regeneration protocol for sea-milkwort, an endangered coastal plant species in South Korea, is reported here. The explants of in vitro-plantlets generated from a node culture revealed distinguishable responses in callus induction depending on genotype, explant source, light condition, and 2,4-D concentration. Especially, continuous darkness exclusively facilitated callus induction from explants prior to other treatments. The calli initiated on the media with 2,4-D ranging from 0.1 mg/L to 3.0 mg/L in the dark vigorously proliferated when subcultured on the same media in continuous darkness. Given 1.0 mg/L zeatin in addition to darkness to the calli of the 'Pistachio' genotype, normal adventitious shoots were only regenerated from nodular structures that formed earlier from the calli at the frequency of 24.4 percent. Regenerated shoots easily grew into plantlets with roots and green color on a phytohormone-free MS medium under lighted condition, that were used for node culture as plant materials. Node culture effectively multiplied plantlets in accordance with protocol by Bae et al. (2016). Acclimatized plantlet clusters developed mature plant clusters under inland environment, followed by flowering the following April. Results were merged with node culture protocol suggested by Bae et al. (2016), which, as an in vitro propagation system for sea-milkwort, may contribute to natural habitat restoration.
Cho Kwang-Soo;Hur Eun-Joo;Hong Su-Young;Moon Ji-Young
Journal of Plant Biotechnology
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v.32
no.1
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pp.31-35
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2005
To obtain regeneration system of onion, we analyzed the effects of 2,4-D and BA concentration on the embryogenic callus induction from mature embryos. The highest embryogenic callus induction ratio was shown on MS medium (Murashie and Skoog 1962) containing $2.5\;\cal{mg/L}\;or\;5\;\cal{mg/L}$ picloram after mature embryos were placed on medium. When induced callus were cultured on half strength of MS medium containing $1\;\cal{mg/L}$ Kinetin, the highest shoot formation ratio was observed on MS medium containing $1\;{mg/L}$ 2,4-D and $1\;{mg/L}$ BA. Embryogenic callus were cultured in MS liquid medium containing $1\;\ccal{mg/L}$ of 2,4-D and $1\;\cal{mg/L}$ BA. The suspension cultured cell clumps could be mass propagated. Embryogenic callus were friable, but non-embryogenic callus included a lot of moisture, hence the identification between embryogenic and non-embryogenic callus as easily achieved. When embryogenic callus as cultured on half strength of MS medium containing $1\;\cal{mg/L}$ Kinetin, shoots were induced. The whole plantlet was obtained on rooting medium containing $0.5\;\cal{mg/}$ of NAA.
Kim Myung Jun;Kim Young Sook;Kim Hyun Soon;Ko Jeong Ae
Korean Journal of Plant Resources
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v.18
no.3
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pp.382-389
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2005
This study was conducted to establish the system of effective in vitro propagation by various explant sources culture of Bippeastrum hybridum Hort, 'Dazzler'. We tested the effects of optimal explant source, plant growth regulators on bulblet formation and plant regeneration. Callus was readily produced on the different tissues excised from floral buds whereas, bulbs and shoots were formed only on pedicel explants as compared with anthers, styles and ovaries. Pedicel is the best optimal explant for in vitro propagation. Two distinct pathways, organogenesis through callus and direct bulblet formation, could be recognized in pedicel culture. Up to the $80-100\%$ of bulblet formation and shoot organogenesis from the pedicel in fifteen days before anthesis were effectively induced by MS medium supplemented with 0.5 mg/L NAA and 1.0 mg/L BA. Plantlet regeneration was successfully achieved from pedicel-derived callus, via shoot bud induction or direct bulblet formation. The bulblets with blooming flower were produced within 2 years.
The embryos of Pinus taeda, P. rigida, and P. taeda ${\times}$ rigida were cultured for adventitious shoot regeneration in vitro. Culture media were modified from Gresshoff and Doy (MGD), Murashige and Skoog (MMS), Lloyd and McCown (MLM), and Schenk and Hildebrandt (MSH). NAA was added to initiation media at a concentration of 0.1 or 0.01 mg/l. BAP was used at the concentrations of 0.1. 0.5, 1, 2, or 5mg/l. Each explant was induced for 3-4 weeks on solid medium. All explants were cultured up to 16 weeks. Illumination was about $1506{\pm}540lux$ at the level of the tissues in the growth room with a temperature of $25{\pm}2^{\circ}C$. A 16-hour photoperiod per 24 hours was used. Half-strength medium was used for all the subcultures. For shoot production by loblolly pine, MMS, MLM, or MSH is preferred with 5 mg/l BAP with either 0.1 or 0.01 mg/l NAA. For shoot production by pitch pine, MMS, MLM, or MSH is recommended with 2 or 5 mg/l BAP with 0.1 mg/l NAA. For shoot production by the hybrid pine, MMS or MLM is more effective with 1, 2 or 5 mg/l BAP with 0.1 mg/l NAA. There were no differences recognized among the species tried in the patterns of bud formation and shoot development. Different composition of media, in major and minor salts or possibly in vitamins, should be tested for the two developmental stages of adventitious shoots ; the induction of shoot buds and the elongation of them into shoots.
Calli were induced from diploid and haploid tobacco after 4 weeks and maintained on MS medium with combination of 2.0 mg/L 2,4-D,0.1 mg/L BAP and 2.0 mg/L kinetin. Suspension cells were screened through 65 $\mu$m-nylon mesh and 100 $\mu$m-mesh, then they were smeared on selection medium combined with cadmium and PFP by using the low melting agarose of 0.8%. After 30days smeared cultures of the medium the cell was treated with 500 $\mu$M and 1000 $\mu$M to select the resistant cell line were selected. Plant regeneration was induced from the selected cell lines on medium with 0.5, 1.5, 2.0 mg/L BAP and on media with combination of auxin and BAP under 500 $\mu$M and 1000 $\mu$M cadmium. At this time, plant regeneration was achived on cadmium free medium. In case of haploid, occurred from the cell line which is selected in medium with cadmium and PFP. In case of diploid regeneration occurred is in the medium with cadmium alone. The plantlet regenerated from cadmium resistant calli grew well in cadmium 500 $\mu$M. Protein pattern of leaf, root, stem of regenerated plants was analyzed. The quantum was 6.5188 ug/mg.fr.wt in the leaf of plant, 5.3611 ug/mg.fr.wt in the stem, 3.0213 ug/mg.fr.wt in the root. On the other hand, 5.9652 ug/mg.fr.wt. in the leaf of control, 3.5974 ug/mg.fr.wt in the stem of the control, 4.3766 ug/mg.fr.wt. in the root of the control. The one dimension bends regenerated from cadmium resistant calli resistant to cadmium in leaf were 49 involving 198.7KD etc. Disappeared were 4 involving 160.5KD etc, The protein bends were combinized were 3 involving 83.4KD etc. The bends resistant to cadmium stress in stem were 41 involving 4.3KD etc. Disappeared were 5 involving 114.8KD etc. The protein bends combinized were 6 involving 128.7KD etc. The bends which had the resistance to cadmium stress in root is 27 in volving 166,9KD etc. The bends which disappeared were 198.7KD etc. There were 5 involving 83.4KD etc.
The objective of this study is to establish an efficient celll culture system for somatic embryogenesis in Ostericum koreanum and Angelica purpuraefolia. The highest frequency of embryogenic callus on immature seeds of O. konanum and A, purpuraefolia. was obtained when seeds were cultured on MS medium containing 0.1 mg/L 2,4-D and 0.1 mg/L BA. However somatic embryos were formed directly from the edge of cotyledon and hypocotyl of plant which regenerated on medium supplemented with 0.1-3.0 mg/L NAA. Immature seed explane cultured at 25$\pm$2$^{\circ}C$ after 10 days treatment at 5$^{\circ}C$ produced embryogenic callus and somatic embryos, and these differentiated into whole plane. Addition of glutamine and coconut milk to media did not enhance the frequency of somatic embryogenesis in immature seed cultures of A. purpuraefolia. However in immature seed culture of O. koreanum, the frequency of somatic embryogenesis were increased on media supplemented with glutamine and 10% coconut milk. Especially addition of glutamine to the medium substituted effect of NH$_4$N0$_3$ in constast to coconut milk. The highest frequency of conversion somatic embryos into plantlet was 89.1% on MS basal medium Embryogenic calli were grown vigorously when maintained on medium with 0.01 mg/L 2,4-D and 0.01 mg/L BA.
In, Dong-Su;Song, Min-Jung;Jang, In-Chang;Min, Byung-Whan;Nahm, Seok-Hyeon;Shin, Jong-Sub;Lee, See-Woo;Harn, Chee-Hark
Journal of Plant Biotechnology
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v.35
no.2
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pp.121-126
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2008
Protoplasts from cabbage and radish were isolated and fused symmetrically by PEG treatment. The PEG treated mixture of high concentrated protoplasts produced lots of micro-calli after $2{\sim}3$ weeks. The microcalli developed to normal calli and shoots were regenerated from the calli. A total of 218 shoots were regenerated, but none of them contained the NWB-CMS specific DNA marker, indicating that the transfer of the radish NWB-CMS character into cabbage did not occur. However, ISSR analysis revealed that the cell fusion between protoplasts from radish and cabbage was occurred (3 out of 208 plantlet). The fused regenerants possessed the characteristics of source plants used for protoplast fusion. After vernalization, three regenerants were flowered with white petal color as seen in radish. Only three seeds were able to obtain from one regenerant by backcrossing with the cabbage pollen.
This study was carried out to find the effects of plant growth regulators on callus formation, rooting and shooting from cotyledon explant in oriental me]on. Various combinations of 0.1 mg/L auxins (IAA, NAA) and 0.5, 1.0. 1.5, 2.0 mg/L cytokinins (BA, kinetin, zeatin) were treated to the MS basal medium, respectively. Callus was induced mort effectively as 2,437.0 mg (FW)/explant in MS medium supplemented with 0.1 mg/L NAA and 2.0 mg/L BA, but that was non-embryogenic callus as colored yellow white and broke easily. Root was induced most effectively at a frequency of 98.0% in MS medium supplemented with 0.1 mg/L NAA and 0-5 mg/L kinetin. Shoots formed on cut part of vein at a frequency of 98.0% in MS medium supplemented with 0.1 mg/L IAA and 2.0 mg/L BA, that were multiple shoots. in case of its concentration, BA and lower concentration of IAA and NAA (0.01 and 0.05 mg/L). respectively. shooting ratio was not increased. The result of treatment with BA 0-5 mg/L and IAA 0.1 mg/L, callus induced at a week, and shoot start to form multiple shoots about 3 weeks after inoculation. After 2 times subculture as 2 weeks intervals, divided shoots rooted and developed into intact plantlets at 10 weeks and then that grown normally on pots after acclimatization.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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