In Korea, isolated cultivation has been implemented for 102 genera, including about 250 species, each of which has underwent microscopic inspection, cultivation of bacteria in selective medium, analysis of physiology and biochemistry, enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) and polymerase chain reaction (PCR). The number of isolated microorganisms was 8,307 in the period of 2005-2012, and bulbs and tubers had the greatest diversity of microorganisms, of 5,165 (62.2%), followed by 2,119 (25.0%) sapling, 796 (9.6%) seed, 150 (1.8%) cutting slip, 70 (0.8%) branch graft and 7 (0.1%). The number of cases which were disqualified were 413 (4.97%), after the detection of 47 disease causing species of microorganism. Viruses predominated, with 27 species, followed by 16 fungi, a viroid, a Chromalveolata and 2 further species. Top on the list of detection was Arabis mosaic virus (77 cases), followed by Tobacco rattle virus (70 cases), Lily symptomless virus (46 cases) and Penicillium expansum (46 cases).
Sweet potato is grown extensively from tropical to temperate regions and is an important food crop worldwide. In this study, we established detection methods for 17 major sweet potato viruses using single and multiplex RT-PCR assays. To investigate the current incidence of viral diseases, we collected 154 samples of various sweet potato cultivars showing virus-like symptoms from 40 fields in 10 Korean regions, and analyzed them by RT-PCR using specific primers for each of the 17 viruses. Of the 17 possible viruses, we detected eight in our samples. Sweet potato feathery mottle virus (SPFMV) and sweet potato virus C (SPVC) were most commonly detected, infecting approximately 87% and 85% of samples, respectively. Furthermore, Sweet potato symptomless virus 1 (SPSMV-1), Sweet potato virus G (SPVG), Sweet potato leaf curl virus (SPLCV), Sweet potato virus 2 ( SPV2), Sweet potato chlorotic fleck virus (SPCFV), and Sweet potato latent virus (SPLV) were detected in 67%, 58%, 47%, 41%, 31%, and 20% of samples, respectively. This study presents the first documented occurrence of four viruses (SPVC, SPV2, SPCFV, and SPSMV-1) in Korea. Based on the results of our survey, we developed multiplex RT-PCR assays for simple and simultaneous detection of the eight sweet potato viruses we recorded.
Xanthomonas axonopodis pv. glycines is the causal agent of bacterial pustule of soybean(Glycine max. (L.) Merr), which is one of the most prevalent bacterial diseases in Korea. In this study, Polymerase Chain Reaction (PCR) assay was applied to detect Xanthomonas axonopodis pv. glycines and to survey on seed contamination in 36 soybean cultivars of Korea. And we have to compare PCR assay with dilution-plating assay of detection and identification. We confirmed detection of pathogen from artificial infected seeds and natural Infected seeds using PCR assay. This assay gave results similar to a seed-wash dilution plating assay and proved more effective than classical methods. Results of survey on seed contamination by X. axonopodis pv. glycines from 36 cultivar seeds showed that the pathogen was detected from Pungsan-namulkong, Mallikong, Taekwangkong, Daemangkong, Ajukkarikong using PCR assay. Therefore, The PCR assay provides a sensitive, rapid tool for the specific detection of X. axonopodis pv. glycines in soybean seeds.
A DNA fragment which is involved in tolassin production was cloned to obtain a molecular marker of Pseudomonas tolaasii, a casual agent of bacterial brown blotch disease of oyster mushroom (Pleurotus ostreatus). Tolaasin is a lipodepsipeptide toxin and known as a primary disease determinant of the P. tolaasii. It is responsible for formation of white line in agar when P. tolaasii were cultured against white line reacting organisms (WLROs). White line negative mutants (WL-) were generated by conjugation between rifampicin resistant strain of P. tolaasii and E. coli carrying suicidal plasmid pSUP2021 : : Tn5. The ability of tolaasin production of the WL- mutants was examined by hemolysis test, pathogenicity test, and high pressure liquid chromatography (HPLC) analysis of culture filtrate. All of the WL- mutants were lost the ability of tolaasin production (Tol-). Genomic library of the Tol- mutant was constructed in pLAFR3 and the cosmid clone containing Tn5 was selected. DNA fragment fro franking region of Tn5 was cloned from the plasmid and used as a probe in Southern blot. DNA-DNA hybridization with the probe to total DNA from group of bacteria ecologically similar to P. tolaasii including WLORs, fluorescent Pseudomonads isolated from oyster mushroom, P. agarici, P. gingeri, and some of other species of Psedomonas showed that some of the tested bacteria do not have any hybridized band and others have bands sowing RFLP. The cloned DNA fragment or its nucleotide sequence will be useful in detection and identification of the P. tolaasii.
Symptoms of fig mosaic disease have been noticed on leaves of fig (Ficus carica) for several decades, in Montenegro. In 2014, leaf samples were collected from trees of six fig cultivars in a plantation located in the main fig-producing area of Montenegro, to study the disease. After RNA isolation, samples were tested by RT-PCR for detection of nine fig viruses and three viroids. Four viruses were detected: fig leaf mottle-associated virus 1 (FLMaV-1), fig mosaic virus (FMV), fig mild mottle-associated-virus (FMMaV) and fig badnavirus 1 (FBV-1). Most of the viruses were present in mixed infections. The amplicons of the viruses were directly sequenced from both directions. A BLAST search of these sequences revealed sequence identities with their closest counterparts at GenBank of 92, 97, 92 and 100%, for FLMaV-1, FMV, FMMaV and FBV-1, respectively. Different responses in symptom expression due to the various virus combinations detected have been demonstrated. Variety $Su{\check{s}}ilica$ had the least symptom expression, with only one virus (FBV-1) found. Considering that the production of figs in Montenegro is increasing and has a substantial relevance in this geographic location, the results indicate that more attention should be given to improving the phytosanitary condition of fig trees in the country.
Fuji, a major apple cultivar in Korea, is susceptible to white rot. Apple white rot disease appears on the stem and fruit; the development of which deteriorates fruit quality, resulting in decreases in farmers' income. Thus, it is necessary to characterize molecular markers related to apple white rot resistance. In this study, we screened for differentially expressed genes between uninfected apple fruits and those infected with Botryosphaeria dothidea, the fungal pathogen that causes white rot. Antimicrobial tests suggest that a gene expression involved in the synthesis of the substance inhibiting the growth of B. dothidea in apples was induced by pathogen infection. We identified seven transcripts induced by the infection. The seven transcripts were homologous to genes encoding a flavonoid glucosyltransferase, a metallothionein-like protein, a senescence-induced protein, a chitinase, a wound-induced protein, and proteins of unknown function. These genes have functions related to responses to environmental stresses, including pathogen infections. Our results can be useful for the development of molecular markers for early detection of the disease or for use in breeding white rotresistant cultivars.
Lim, Yeoun-Su;Kim, Young Jun;Kim, Jongho;Kong, JooYeon;Song, Kunho
Korean Journal of Veterinary Service
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v.42
no.2
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pp.113-116
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2019
Bovine theileriosis caused by Theileria sergenti is a tick-borne hematoprotozoan disease that is characterized by chronic anemia and fever in cattle. In this study, results of microscopic examination and PCR detection confirmed 17 Korean native cattle with emaciation and fever as acute bovine theileriosis caused by T. sergenti. Buparvaquone was injected as treatment, but was proved to be an inappropriate measure according to our study. After 6 months of injection, clinical signs and hematological values were recovered, but T. sergenti was still identified in blood sample as a result of microscopic exam and PCR. These results suggest that continuous management is necessary to control bovine theileriosis. Therefore, findings of this study may provide significant guideline on the control of bovine theileriosis.
Kang, In Jeong;Shim, Hyeong Kwon;Roh, Jae Hwan;Heu, Sunggi;Shin, Dong Bum
The Plant Pathology Journal
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v.34
no.4
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pp.327-334
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2018
Northern corn leaf spot and southern corn leaf blight caused by Cochliobolus carbonum (anamorph, Bipolaris zeicola) and Cochliobolus heterostrophus (anamorph, Bipolaris maydis), respectively, are common maize diseases in Korea. Accurate detection of plant pathogens is necessary for effective disease management. Based on the polyketide synthase gene (PKS) of Cochliobolus carbonum and the nonribosomal peptide synthetase gene (NRPS) of Cochliobolus heterostrophus, primer pairs were designed for PCR to simultaneously detect the two fungal pathogens and were specific and sensitive enough to be used for duplex PCR analysis. This duplex PCR-based method was found to be effective for diagnosing simultaneous infections from the two Cochliobolus species that display similar morphological and mycological characteristics. With this method, it is possible to prevent infections in maize by detecting infected seeds or maize and discarding them. Besides saving time and effort, early diagnosis can help to prevent infections, establish comprehensive management systems, and secure healthy seeds.
Real time PCR was used to discriminate Colletotrichum acutatum and C. gloeosporioides for analysis of population density. Two primers, caInt2 and cgint, used for conventional PCR to discriminate two species were modified with fluorescent dye to make probe for real time PCR. Fluorescence signals were successfully detected by fCaInt2 and vCgint probe coupled with primer pair Unicon and Unicor1 resulting in discrimination of C. acutatum and C. gloeosporioides by comparison of delta Rn value.
Cylindrocarpon destructans is a soil-borne plant pathogenic fungus causing root rot on ginseng and trees. Rapid and exact detection of this pathogen was practiced on ginseng seedlings by nested PCR using speciesspecific primer set. The second round of PCR amplification by Dest 1 and Dest 4 primer set formed 400 bp of species-specific fragment of C. destructans from the product of first round of amplification by ITS 1 and ITS 4 primer set. In the PCR sensitivity test based on DNA density, nested PCR detected to the limit of one fg and it meant the nested PCR could detect up to a few spores of C. destructans. Also, nested PCR made it possible to detect the pathogen from ginseng seedlings infected by replantation on artificial infested soil. Our nested PCR results using species-specific primer set could be utilized for diagnosis of root rot disease in ginseng cultivation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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