The physiological characteristics of the neurons receiving the ventral root afferent inputs were investigated in the cat. A total of 70 cells were identified in the lumbosacral spinal cord. All these cells responded only to the C-strength stimulation of the distal stump of cut ventral root and the estimated conduction velocities of the VRA fibers were not faster than 4 m/sec. The majority of them were silent in resting state. For 49 cells, their peripheral receptive fields were characterized. Among them, 25 cells were exclusively excited by VRA inputs, 8 were inhibited and the remaining cells recevied both excitatory and inhibitory VRA inputs. According to the response pattern to the mechanical stimuli applied to their receptive fields, only a fourth of them were typical high threshold cell, a sixth, wide dynamic range cells, while remainings were a rather complex cells. Most of the cells receiving VRA inputs, received only the A ${\delta}-peripheral$ nerve inputs. Intravenous injection of morphine decreased the response of spinal cells to the VRA activation. The responses were abolished completely by counter irritation to the common peroneal nerve with C-strength-low frequency stimuli. These physiological properties of the spinal neurons receiving the VRA inputs are differ in some aspect from the spinal neurons receiving nociceptive inputs from the periphery, but still were consistent with the contention that VRA system might carry nociceptive informations arising from the spinal cord and/or neraby surrounding tissues.
Following peripheral nerve injury, excessive nociceptive inputs result in diverse physiological alterations in the spinal cord substantia gelatinosa (SG), lamina II of the dorsal horn. Here, I report the alterations of excitatory or inhibitory transmission in the SG of a rat model for neuropathic pain ('spared nerve injury'). Results from whole-cell recordings of SG neurons show that the number of distinct primary afferent fibers, identified by graded intensity of stimulation, is increased at 2 weeks after spared nerve injury. In addition, short-term depression, recognized by paired-pulse ratio of excitatory postsynaptic currents, is significantly increased, indicating the increase of glutamate release probability at primary afferent terminals. The peripheral nerve injury also increases the amplitude, but not the frequency, of spontaneous inhibitory postsynaptic currents. These data support the hypothesis that peripheral nerve injury modifies spinal pain conduction and modulation systems to develop neuropathic pain.
Kim, Sang-Jeong;Lim, Won-Il;Park, Myoung-Kyu;Lee, Jin;Kim, Jun
The Korean Journal of Physiology
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v.28
no.2
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pp.133-141
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1994
The discharge patterns and peripheral nerve inputs to cardiovascular neurons were investigated in rostral ventrolateral medulla (RVLM) and raphe nucleus of cats. The data from the two were compared to determine their roles in cardiovascular regulation and the endogenous analgesic system. Animals were anesthetized with ${\alpha}-chloralose$ and single cell activities were recorded by carbon-filament microelectrode and their relationships with cardiovascular activity were analyzed. In RVLM area, a total of thirty-three cells were identified as cardiovascular neurons. During one cardiac cycle, the mean discharge rate of the neurons was $1.96{\pm}0.29$ and the peak activity was observed 45 ms after the systolic peak of arterial blood pressure. Thirteen cells could be activated antidromically by stimulation of the the $T_2$ intermediolateral nucleus. Forty-three raphe neurons were identified as cardiovascular neurons whose mean discharge rate during one cardiac cycle was $1.02{\pm}0.12$. None of these cells could be activated antidromically. Study of the interval time histogram of RVLM neurons revealed that the time to the first peak was $128{\pm}20.0\;ms$, being shorter than the period of a cardiac cycle. The same parameter found from the raphe neurons was $481{\pm}67.2\;ms$, which was much longer than the cardiac cycle length. Of seventeen RVLM neurons examined ten received only the peripheral $A{\delta}-afferent$ inputs, whereas six RVLM neurons received both $A{\delta}-$ and C-inputs; the remaining one cell received an inhibitory peripheral C-input. In contrast, nine of eleven raphe neurons were found to receive $A{\delta}-inputs$ only. We conclude that the main output of cardiovascular regulatory influences are mediated through the RVLM neurons. The cardiovascular neurons in the raphe nucleus appear to serve as interneurons transferring cardiovascular afferent information to the raphespinal neurons mediating the endogenous analgesic mechanisms.
Kim Hee-Jin;Kim Woo-Kyung;Paik Kwang-Se;Kang Bok-Soon
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.1
no.3
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pp.251-262
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1997
Peripheral nerve injury sometimes leads to neuropathic pain and depletion of calcitonin gene related-peptide (CGRP) and substance P (SP) in the spinal cord. However, the pathophysiological mechanisms for depletion of CGRP and SP following the neurorathic injury are still unknown. This study was performed to see whether the distribution of immunoreactivity for CGRP and SP in the superficial dorsal horn and dorsal root ganglia(DRG) was related to the distance between the DRG and injury site. To this aim, we compared two groups of rats; one group was subjected to unilateral inferior and superior caudal trunk transections at the level between the S3 and S4 spinal nerves (S34 group) and the other group at the levels between the S1 and S2, between S2 and S3 and between S3 and S4 spinal nerve (S123 group). The transections in both groups equally eliminated the inputs from the tail to the S1-3 DRG, but the distance from the S1/S2 DRG to the injury site was different between the two groups. Immunostaining with SP and CGRP antibody was done in the S1-S3 spinal cord and DRG of the two groups 1 and 12 weeks after the injury. The results obtained are as follows: 1. The immunoreactivity for CGRP and SP in the ipsilateral superficial dorsal horn and DRG decreased 1 and 12 weeks after neuropathic nerve injury. 2. The immunoreactive area of SP and CGRP in the S1 dorsal horn was smaller in the S123 group than in the S34 group, whereas that in the S3 dorsal horn was not significantly different between the two groups. The number of SP-immunoreactive DRG cells decreased on the neuropathic side as compared to the sham group's in all DRGs of experimental groups except the S1 DRG of the S34 group. These results suggest that the amounts of SP and CGRP in the dorsal horn and DRG following neuropathic injury inversely decrease according to the distance between the DRG and injury site.
The superficial dorsal horn, particularly substantia gelatinosa (SG) in the spinal cord, receives inputs from small-diameter primary afferents that predominantly convey noxious sensation. Reactive oxygen species (ROS) are toxic agents that may be involved in various neurodegenerative diseases. Recent studies indicate that ROS are also involved in persistent pain through a spinal mechanism. In the present study, whole cell patch clamp recordings were carried out on SG neurons in spinal cord slice of young rats to investigate the effects of hydrogen peroxide on neuronal excitability and excitatory synaptic transmission. In current clamp condition, tert-buthyl hydroperoxide (t-BuOOH), an ROS donor, depolarized membrane potential of SG neurons and increased the neuronal firing frequencies evoked by depolarizing current pulses. When slices were pretreated with phenyl-N-tert-buthylnitrone (PBN) or ascorbate, ROS scavengers, t-BuOOH did not induce hyperexcitability. In voltage clamp condition, t-BuOOH increased the frequency and amplitude of spontaneous excitatory postsynaptic currents (sEPSCs), and monosynaptically evoked excitatory postsynaptic currents (eEPSCs) by electrical stimulation of the ipsilateral dorsal root. These data suggest that ROS generated by peripheral nerve injury can modulate the excitability of the SG neurons via pre- and postsynaptic actions.
The present study was undertaken to confirm whether melittin, a major constituent of whole bee venom (WBV), had the ability to produce the same nociceptive responses as those induced by WBV. In the behavioral experiment, changes in mechanical threshold, flinching behaviors and paw thickness (edema) were measured after intraplantar (i.pl.) injection of WBV (0.1 mg & 0.3 mg/paw) and melittin (0.05 mg & 0.15 mg/paw), and intrathecal (i.t.) injection of melittin $(6{\mu}g)$. Also studied were the effects of i.p. (2 mg & 4 mg/kg), i.t. $(0.2{\mu}g\;&\;0.4{\mu}g)$ or i.pl. (0.3 mg) administration of morphine on melittin-induced pain responses. I.pl. injection of melittin at half the dosage of WBV strongly reduced mechanical threshold, and increased flinchings and paw thickness to a similar extent as those induced by WBV. Melittin- and WBV-induced flinchings and changes in mechanical threshold were dose- dependent and had a rapid onset. Paw thickness increased maximally about 1 hr after melittin and WBV treatment. Time-courses of nociceptive responses induced by melittin and WBV were very similar. Melittin-induced decreases in mechanical threshold and flinchings were suppressed by i.p., i.t. or i.pl. injection of morphine. I.t. administration of melittin $(6{\mu}g)$ reduced mechanical threshold of peripheral receptive field and induced flinching behaviors, but did not cause any increase in paw thickness. In the electrophysiological study, i.pl. injection of melittin increased discharge rates of dorsal horn neurons only with C fiber inputs from the peripheral receptive field, which were almost completely blocked by topical application of lidocaine to the sciatic nerve. These findings suggest that pain behaviors induced by WBV are mediated by melittin-induced activation of C afferent fiber, that the melittin-induced pain model is a very useful model for the study of pain, and that melittin-induced nociceptive responses are sensitive to the widely used analgesics, morphine.
Antidromically activated spinoreticular tract (SRT) cell units in the lumbosacral enlargement of ${\alpha}-chloralose$ anesthetized cats were classified as medial and lateral SRT units according to the location of their axonal termination. Identified SRT units were tested fer antidromic conduction velocity, laterality of their axonal projection, the location in spinal gray, peripheral receptive field, the response pattern to graded mechanichal stimulation and the responsiveness to $A{\delta}$ and C volley of the peripheral nerve. 1) The 59% of 34 medial SRT units were recorded in ipsilateral side to the antidromic stimulation site, but 60% of the 47 lateral SRT units projected to contralateral side. 2) Most of the medial SRT cells and rostral ventrolateral medulla (RVLM)-projecting lateral SRT cells were recorded in lamina VII & VIII. The LRN (lateral reticular nucleus)-projecting SRT cells, however, distributed through all the laminae except superficial ones (I & II). 3) The identified SRT units were classified as low theshold (LT), deep, high threshold (HT), wide dynamic range (WDR) cells, based on the response patterns to graded mechanical stimuli. The proportion of SRT units which receive noxious input was 37.5%, 25% and 75% in the medial, LRN-projecting and RVLM SRT group, respectively. 4) There was no significant difference in the mean conduction velocities between the 3 groups. But the deep cells had significantly higher velocity than that of the HT cells. The above results show that the peripheral inputs to the SRT units are different in the 3 groups: medial, LRN & RVLM SRT group. Especially in case of the SRT cells projecting to RVLM which is a probable candidate fur the integration center of various pressor reflexes such as somatosympathetic reflex, the noxious informations occupy higher proportion of input to them than in other groups. Therefore the noxious information transmitted through the lateral SRT destined for RVLM is expected to play a role in somatosymapthetic reflex.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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