The second-order rate constants have been measured spectrophotometrically for the reactions of paraoxon 1 and parathion 2 with a series of alicyclic secondary amines, $OH^-$ and $HOO^-$ ions in $H_2O$ at $25.0{\pm}0.1^{\circ}C$. A linear Br${\o}$nsted-type plot with ${\beta}_{nuc}$ = 0.40 was obtained for the reactions of 1 with amines and $OH^-$. The reaction has been concluded to proceed through a concerted mechanism. $HOO^-$ deviates positively from the linear Br${\o}$nsted-type plot, implying that the ${\alpha}$-effect is operative. The magnitude of the ${\alpha}$-effect ($k_{HOO^-}/k_{OH^-}$) was found to be ca. 55 for the reaction of 1 and 290 for that of parathion 2, indicating that $HOO^-$ is highly effective in decomposition of the toxic phosphorus compounds although it is over 4 $pK_a$ units less basic than $OH^-$. Among the theories suggested as origins of the ${\alpha}$-effect (e.g., TS stabilization through an intramolecular Hbonding interaction, solvent effect, and polarizability effect), polarizability effect appears to be the most important factor for the ${\alpha}$-effect in this study, since the polarizable $HOO^-$ exhibits a larger ${\alpha}$-effect for the reaction of the more polarizable substrate 2.
The effects of physostigmine and neostigmine on the parathin induced toxicity were examined in adult female rats. Physostigmine $(100\;{\mu}g/kg,\;ip)$ or neostigmine $(200\;{\mu}g/kg,\;ip)$ inhibited acetylcholinesterase (AChE) and cholinesterase (ChE) activities in blood, brain and lung when the enzyme activity was measured 30 min after the treatment. At the doses of two carbamates equipotent on brain AChE, neostigmine showed greater inhibition on peripheral AChE/ChE. The enzyme activity returned to normal in 120 min following the carbamates except in the lung of rats treated with neostigmine. Carbamates administered 30 min prior to parathion (2 mg/kg) antagonized the inhibition of AChE/ChE by parathion when the enzyme activity was measured 2 hr following parathion. Neostigmine showed greater protective effect on peripheral AChE/ChE. The effect of either carbamate on AChE/ChE was not significant 2 hr beyond the parathion treatment. Carbamates decreased the mortality of rats challenged with a lethal dose of parathion (4 mg/kg, ip) either when treated alone or in combination with atropine (10 mg/kg, ip). Lethal action of paraoxon (1.5 mg/ks ip), the active metabolite of parathion was also decreased by the carbamate treatment indicating that the protection was not mediated by competitive inhibition of metabolic conversion of parathion to paraoxon. The results suggest that carbamylation of the active sites may not be the sole underlying mechanism of protection provided by the carbamates.
Organophosphorus nerve agents (OPNAs), including both G- and V-type nerve agents such as sarin, soman, tabun and VX, are extremely neurotoxic organophosphorus compounds. Catalytic bioscavengers capable of hydrolyzing OPNAs are under development because of the low protective effects and adverse side effects of chemical antidotes to OPNA poisoning. However, these bioscavengers have certain limitations for practical application, including low catalytic activity and narrow specificity. In this study, we generated a fusion-hybrid form of engineered recombinant human paraoxonase 1 (rePON1) and bacterial organophosphorus hydrolase (OPH), referred to as GV-hybrids, using a flexible linker to develop more promising catalytic bioscavengers against a broad range of OPNAs. These GV-hybrids were able to synergistically hydrolyze both G-type OPNA analogs (paraoxon: 1.7 ~ 193.7-fold, p-nitrophenyl diphenyl phosphate (PNPDPP): 2.3 ~ 33.0-fold and diisopropyl fluorophosphates (DFP): 1.4 ~ 22.8-fold) and V-type OPNA analogs (demeton-S-methyl (DSM): 1.9 ~ 34.6-fold and malathion: 1.1 ~ 4.2-fold above) better than their individual enzyme forms. Among the GV-hybrid clones, the GV7 clone showed remarkable improvements in the catalytic activity toward both G-type OPNA analogs (kcat/Km (106 M-1 min-1): 59.8 ± 0.06 (paraoxon), 5.2 ± 0.02 (PNPDPP) and 47.0 ± 6.0 (DFP)) and V-type OPNA analogs (kcat/Km (M-1 min-1): 504.3 ± 48.5 (DSM) and 1324.0 ± 47.5 (malathion)). In conclusion, we developed GV-hybrid forms of rePON1 and bacterial OPH mutants as effective and suitable catalytic bioscavengers to hydrolyze a broad range of OPNA analogs.
Experiments were conducted to establish an in vitro AChE inhibition test system to evaluate the potency of AChE inhibition of new chemical compounds. For a fixed time inhibition test, optimal inhibition (incubation) time to evaluate their AChE inhibition potency was 10 min. for AChE inhibitors such as DFP, DDVP, and paraoxon. The concentration of new chemical compounds with an ester group for evaluation of their inhibition potency was 10 $\mu$M under 10 min. preincubation conditions. However, the stepwise inhibition test with higher concentrations seemed to be needed for other chemical compounds. For a progressive inhibition test to calculate inhibition constants such as $K_d$, $K_3$ and $K_i$, extremely low $K_d(1.3\times10-^85.6\times10^{-7})$ and $K_3$(0. 21-0.27 $min^{-1}$) were observed under lagged preincubation time (0.8-13.3 min) and low in¬hibitor concentrations $(1\times10-^92\times10-^6M)$. However, this method seemed to be useful for comparison of AChE inhibition potency among inhibitors. Differences in inhibition potency among DFP, paraoxon, and KH501 were due to the differences in $K_d$, in other words, differences in affinities between inhibitors and AChEs. Therefore, AntiChE screening should consist of two steps. The first step is to evaluate the potency of AChE inhibition based on $I_50$ valuse obtained from fixed time inhibition tests. The second step is to study inhibition patterns and characteristics of chemical compounds selected in the first step.
A potentiometric flow injection biosensor for the analysis of anti-cholinesterases (anti-ChEs), based on inhibition of enzyme activity, was developed. The sensor system consists of a reactor with acetylcholinesterase (AChE) immobilized on controlled pore glass and a detector with an $H^{+}-selective$ PVC-based membrane electrode. The principle of the analysis is based on the fact that the degree of inhibition of AChE by an anti-ChE is dependent on the concentration of the anti-ChE in contact with AChE. The sensor system was optimized by changing systematically the operating parameters of the sensor to evaluate the effect of the changes on sensor response to ACh. The optimized biosensor was applied to the analysis of paraoxon, an organophosphorus pesticide. Treatment of the inhibited enzyme with pyridine-2-aldoxime fully restored the enzyme activity allowing repeated use of the sensor.
Classification of esterase isozymes of the apterous green peach aphids (Myzus persicae Sulzer) collected in tobacco fields were investigated by the native polyacrylamide gel electrophoresis (PAGE). A total of twelve esterase bands were identified in adult apterous aphid, and the difference of enzyme band activity in the clones was observed at the first and second bands group. Esterases of green peach aphids reacted with specific substrate were more stained $\alpha$-naphthyl acetate than $\alpha$-naphthyl propionate, and $\alpha$-naphthyl acetate more than $\beta$-naphthyl acetate. Twelve esterases on the basis of inhibition by the three types of inhibitors (organophosphates: 2.5$\times$10$^{-3}$ M paraoxon, 4$\times$10$^{-3}$ M DFP; eserine sulfate : 2$\times$10$^{-3}$ M eserin; sulfhydryl reagents: 2$\times$10$^{-3}$ M p-HMB) were classified into three class, namely, cholinesterase (ChE) I, II, carboxylesterase (CE) and arylesterase (ArE), and these classes contained 3, 4, 3 and 2 isozymes, respectively.
The biochemical factors responsible for parathion resistance in a ethyl fenitrothion-selected Yumenoshima I11 (EF-30) strain of the housefly were examined. Great difference (167-fold) in the Iso was observed between the resistant EF-30 (R) and susceptible SRS (S) strains in vitro, suggesting that altered acetylcholinesterase (AChE) in the housefly strain was an important factor in the resistance. The in vitro degradative activity of parathion and paraoxon in both strains was associated with the microsomal and soluble fractions and required NADPH and reduced glutahione (GSH), respectively. The R strain possessed higher activity for GSH S-transferase than the S strain, and this enzyme appears to be important in the resistance mechanism. The R strain was highly resistant to parathion (101,487-fold), but substitution of the methoxy group for ethoxy group decreased the resistance level (25,914-fold) and parathion could be a substrate of GSH S-transferase. It is concluded that the combination of some factors (altered AChE, and enhanced activity of cytochrome P450 dependent monooxygenase and GSH S-transferase) could be sufficient to account for the extremely high level of resistance to parathion and parathion-methyl, although a possible involvement of other factor(s) can not be excluded.
Kim, Tak-Soo;Kim, Jung-Kon;Choi, Kyung-Ho;Zoh, Kyung-Duk
Journal of Korean Society of Environmental Engineers
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v.27
no.8
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pp.822-828
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2005
The photocatalytic degradation of methyl parathion was carried out using a circulating $TiO_2$/solar system. Under the photocatalytic condition, parathion was more effectively degraded than by the photolysis or $TiO_2$ only condition. The parathion degradation followed pseudo first-order kinetics. With photocatalysis, 10 mg/L parathion was completely degraded within 90 min with a TOC decrease exceeding 63% after 150 min. The nitrogen from parathion was recovered mainly as ${NO_2}^-$, ${NO_3}^-$, and ${NH_4}^+$, 80% of sulfur as ${SO_4}^{2-}$, and less than 5% of phosphorus as ${PO_4}^{3-}$ during photocatalysis. The organic intermediates 4-nitrophenol and paraoxon were also identified, and these were further degraded. Two different bioassays using V. fischeri and D. magna were employed to measure the toxicity reduction in the solutions treated by both photocatalysis and photolysis. Relative toxicity was reduced almost completely after 150 min in both organisms under the photocatalysis, whereas in photolysis, 76 and 57% reduction was achieved for V. fischeri and D. magna, respectively. The acute toxicity reduction pattern corresponded with the decrease in parathion and TOC concentrations.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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