Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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제33권5호
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pp.445-454
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2007
Background: Phosphatidic acid(PA), an important second messenger, is involved in inflammation. Notably, cell-cell interactions via adhesion molecules playa central role in inflammation. This thesis show that PA induces expression of intercellular adhesion molecule-1(ICAM-1) on macrophages and describe the signaling pathways. Materials and methods: Macrophages were cultured in the presence of 10% FBS and assayed cell to cell adhesion using HUVEC. For the gene and protein analysis, RT-PCR, Western blot and flow cytometry were performed. In addition, overexpressed cell lines for dominant negative PKC-${\delta}$ mutant established and tested their effect on the promoter activity and expression of ICAM-1 protein by PA. Results: PA-activated macrophages significantly increased adhering to human umbilical vein endothelial cell and this adhesion was mediated by ICAM-1. Pretreatment with rottlerin(PKC-${\delta}$ inhibitor) or expression of a dominant negative PKC-${\delta}$ mutant, but not Go6976(classical PKC-${\alpha}$ inhibitor) and myristoylated PKC-${\xi}$ inhibitor, attenuated PA-induced ICAM-1 expression. The p38 mitogen-activated protein kinase(MAPK) inhibitor blocked PA-induced ICAM-1 expression in contrast, ERK upstream inhibitor didn't block ICAM-1. Conclusion: These data suggest that PA-induced ICAM-1 expression and cell-cell adhesion in macrophages requires PKC-${\delta}$ activation and that PKC-${\delta}$ activation is triggers to sequential activation of p38 MAPK.
$[Ca^{2+}]_i$ transients by reverse mode of cardiac $Na^+/Ca^{2+}$ exchanger (NCX1) were recorded in fura-2 loaded BHK cells with stable expression of NCX1. Repeated stimulation of reverse NCX1 produced a long-lasting decrease of $Ca^{2+}$ transients ('rundown'). Rundown of NCX1 was independent of membrane $PIP_2$ depletion. Although the activation of protein kinase C (PKC) was observed during the $Ca^{2+}$ transients, neither a selective PKC inhibitor (calphostin C) nor a PKC activator (PMA) changed the degrees of rundown. By comparison, a non-specific PKC inhibitor, staurosporine (STS), reversed rundown in a dose-dependent and reversible manner. The action of STS was unaffected by pretreatment of the cells with calphostin C, PMA, or forskolin. Taken together, the results suggest that the stimulation of reverse NCX1 by STS is independent of PKC and/or PKA inhibition.
Kim, Yong-Kee;Cho, Eun-Jung;Lee, Hoi-Young;Han, Jeung-Whan;Lee, Hyang-Woo
대한약학회:학술대회논문집
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대한약학회 2003년도 Proceedings of the Convention of the Pharmaceutical Society of Korea Vol.2-2
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pp.144.1-144.1
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2003
We previously reported that the activation of p$21^{WAFl/Cip1}$ transcription by histone deacetylase inhibitor apicidin was mediated through Spl sites and pointed to the possible participation of protein kinase C (PKC). In this study, we investigated the role and identity of the specific isoforms of PKC involved and identified phosphatidylinositol 3-kinase (PI 3-kinase) as an upstream effector in HeLa cells. Using an isoform-specific pharmacological inhibitor of PKC, a PKC$\varepsilon$ dominant-negative mutant, and antisense oligonucleotide to inhibit PKC$\varepsilon$ specifically, (omitted)
Background: It is known that cigarette smoke (CS) causes cell death. Apoptotic cell death is involved in the pathogenesis of CS-related lung diseases. Some members of the protein kinase C (PKC) family have roles in cigarette smoke extract (CSE)-induced apoptosis. This study was conducted to investigate the role of PKC epsilon in CSE-induced apoptosis in human lung fibroblast cell line, MRC-5. Methods: Lactate dehydrogenase release was measured using a cytotoxicity detection kit. The MTT assay was used to measure cell viability. Western immunoblot, Hoechst 33342 staining and flow cytometry were used to demonstrate the effect of $PKC{\varepsilon}$. Caspase-3 and caspase-8 activities were determined using a colorimetric assay. To examine $PKC{\varepsilon}$ activation, Western blotting was performed using both fractions of membrane and cytosol. Results: We showed that CSE activated $PKC{\varepsilon}$ by demonstrating increased expression of $PKC{\varepsilon}$ in the plasma membrane fraction. Pre-treatment of $PKC{\varepsilon}$ peptide inhibitor attenuated CSE-induced apoptotic cell death, as demonstrated by the MTT assay (13.03% of control, 85.66% of CSE-treatment, and 53.73% of $PKC{\varepsilon}$ peptide inhibitor-pre-treatment, respectively), Hoechst 33342 staining, and flow cytometry (85.64% of CSE-treatment, 53.73% of $PKC{\varepsilon}$ peptide inhibitor-pre-treatment). Pre-treatment of $PKC{\varepsilon}$ peptide inhibitor reduced caspase-3 expression and attenuated caspase-3, caspase-8 activity compared with CSE treatment alone. Conclusion: $PKC{\varepsilon}$ seem to have pro-apoptotic function and exerts its function through the extrinsic apoptotic pathway in CSE-exposed MRC-5 cells. This study suggests that $PKC{\varepsilon}$ inhibition may be a therapeutic strategy in CS-related lung disease such as chronic obstructive pulmonary disease.
Kim, Eung Chang;Lee, Myeong Jong;Shin, Sang Yep;Seol, Geun Hee;Han, Seung Ho;Yee, Jaeyong;Kim, Chan;Min, Sun Seek
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제17권1호
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pp.51-56
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2013
Many intracellular proteins and signaling cascades contribute to the sensitivity of N-methyl-D-aspartate receptors (NMDARs). One such putative contributor is the serine/threonine kinase, protein kinase C (PKC). Activation of PKC by phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA) causes activation of extracellular signal-regulated kinase (ERK) and promotes the formation of new spines in cultured hippocampal neurons. The purpose of this study was to examine which PKC isoforms are responsible for the PMA-induced augmentation of long-term potentiation (LTP) in the CA1 stratum radiatum of the hippocampus in vitro and verify that this facilitation requires NMDAR activation. We found that PMA enhanced the induction of LTP by a single episode of theta-burst stimulation in a concentration-dependent manner without affecting to magnitude of baseline field excitatory postsynaptic potentials. Facilitation of LTP by PMA (200 nM) was blocked by the nonspecific PKC inhibitor, Ro 31-8220 ($10{\mu}M$); the selective $PKC{\delta}$ inhibitor, rottlerin ($1{\mu}M$); and the $PKC{\varepsilon}$ inhibitor, TAT-${\varepsilon}V1$-2 peptide (500 nM). Moreover, the NMDAR blocker DL-APV ($50{\mu}M$) prevented enhancement of LTP by PMA. Our results suggest that PMA contributes to synaptic plasticity in the nervous system via activation of $PKC{\delta}$ and/or $PKC{\varepsilon}$, and confirm that NMDAR activity is required for this effect.
Purpose: To understand the pathogenesis of the disease that presents abnormally proliferated vascular endothelial cells, a model of DMH(1,2-dimethylhydrazine)-induced abnormal proliferation of HUVECs(Human Umbilical Vein Endothelial Cells) was made. We indirectly determined that Protein Kinase C(PKC) restricts the cellular proliferation and inhibits the manifestation of growth factor by using several inhibiting substances of the transmitter through our previous studies. Thereupon, we attempted to observe direct enzymatic activities of PKC and its correlation with the abnormal proliferation of vascular endothelial cells. Methods: $10^5$ HUVECs cells were applied to 6 individual well plates in three different groups; A control group cultured without treatment, a group concentrated with $0.75{\times}10^{-8}M$ DMH only, and a group treated with DMH & $5{\times}10^{-9}M$ Calphostin C, inhibitor of PKC. In analyzing the formation of intracellular PKC enzyme, protein separation was performed, and separated protein was quantitatively measured. PKC enzyme reaction was analyzed through Protein Kinase C Assay System (Promega, USA), and the results were analyzed according to Beer's law. Results: Enzymatic activity of PKC presented the highest in all reaction time of a group concentrated only with DMH, and the lowest in the control group. The group treated with DMH and the inhibitor revealed statistically lower enzymatic activity than group only with DMH in all reaction time, although higher than the control group. Conclusion: From the enzymatic aspect, most active and immediate reaction of the PKC was observed in the group concentrated with DMH only. The group treated with DMH & PKC inhibitor showed meaningful decrease. Accordingly, PKC holds a significant role in DMH-induced abnormal proliferation of vascular endothelial cells.
Reducing $[Mg^{2+}]_o$ to 0.1 mM can evoke repetitive $[Ca^{2+}]_i$ spikes and seizure activity, which induces neuronal cell death in a process called excitotoxicity. We examined the issue of whether cultured rat hippocampal neurons preconditioned by a brief exposure to 0.1 mM $[Mg^{2+}]_o$ are rendered resistant to excitotoxicity induced by a subsequent prolonged exposure and whether $Ca^{2+}$ spikes are involved in this process. Preconditioning by an exposure to 0.1 mM $[Mg^{2+}]_o$ for 5 min inhibited significantly subsequent 24 h exposure-induced cell death 24 h later (tolerance). Such tolerance was prevented by both the NMDA receptor antagonist D-AP5 and the L-type $Ca^{2+}$ channel antagonist nimodipine, which blocked 0.1 mM $[Mg^{2+}]_o$-induced $[Ca^{2+}]_i$ spikes. The AMPA receptor antagonist NBQX significantly inhibited both the tolerance and the $[Ca^{2+}]_i$ spikes. The intracellular $Ca^{2+}$ chelator BAPTA-AM significantly prevented the tolerance. The nonspecific PKC inhibitor staurosporin inhibited the tolerance without affecting the $[Ca^{2+}]_i$ spikes. While $G{\ddot{o}}6976$, a specific inhibitor of $PKC{\alpha}$ had no effect on the tolerance, both the $PKC{\varepsilon}$ translocation inhibitor and the $PKC{\zeta}$ pseudosubstrate inhibitor significantly inhibited the tolerance without affecting the $[Ca^{2+}]_i$ spikes. Furthermore, JAK-2 inhibitor AG490, MAPK kinase inhibitor PD98059, and CaMKII inhibitor KN-62 inhibited the tolerance, but PI-3 kinase inhibitor LY294,002 did not. The protein synthesis inhibitor cycloheximide significantly inhibited the tolerance. Collectively, these results suggest that low $[Mg^{2+}]_o$ preconditioning induced excitotoxic tolerance was directly or indirectly mediated through the $[Ca^{2+}]_i$ spike-induced activation of $PKC{\varepsilon}$ and $PKC{\xi}$, JAK-2, MAPK kinase, CaMKII and the de novo synthesis of proteins.
Nam, Yun Sung;Suh, Jung Sook;Song, Hyun Ju;Sohn, Uy Dong
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제17권2호
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pp.139-147
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2013
Lysolipids such as LPA, S1P and SPC have diverse biological activities including cell proliferation, differentiation, and migration. We investigated signaling pathways of LPA-induced contraction in feline esophageal smooth muscle cells. We used freshly isolated smooth muscle cells and permeabilized cells from cat esophagus to measure the length of cells. Maximal contraction occurred at $10^{-6}M$ and the response peaked at 30s. To identify LPA receptor subtypes in cells, western blot analysis was performed with antibodies to LPA receptor subtypes. LPA1 and LPA3 receptor were detected at 50 kDa and 44 kDa. LPA-induced contraction was almost completely blocked by LPA receptor (1/3) antagonist KI16425. Pertussis toxin (PTX) inhibited the contraction induced by LPA, suggesting that the contraction is mediated by a PTX-sensitive G protein. Phospholipase C (PLC) inhibitors U73122 and neomycin, and protein kinase C (PKC) inhibitor GF109203X also reduced the contraction. The PKC-mediated contraction may be isozyme-specific since only $PKC{\varepsilon}$ antibody inhibited the contraction. MEK inhibitor PD98059 and JNK inhibitor SP600125 blocked the contraction. However, there is no synergistic effect of PKC and MAPK on the LPA-induced contraction. In addition, RhoA inhibitor C3 exoenzyme and ROCK inhibitor Y27632 significantly, but not completely, reduced the contraction. The present study demonstrated that LPA-induced contraction seems to be mediated by LPA receptors (1/3), coupled to PTX-sensitive G protein, resulting in activation of PLC, PKC-${\varepsilon}$ pathway, which subsequently mediates activation of ERK and JNK. The data also suggest that RhoA/ROCK are involved in the LPA-induced contraction.
The present study investigated the involvement of the phospholipase C (PLC) and protein kinase C (PKC) signaling pathways during progesteroneinduced meiotic maturation in amphibian (Rana dybowskii) oocytes. Prosesterone-induced germinal vesicle breakdown (GVBD) of oocytes was significantly inhibited by a PKC inhibitor, staurosporine and a PLC inhibitor, U73122, in a dose-dependent manner. In contrast, U73343, an inactive analogue of U73122, was ineffective in suppressing GVBD. PKC activity in oocytes reached a maximum level at 30 min after progesterone stimulation and this elevated PKC activity was effectively suppressed by U73122 or staurosporine, suggesting that the activation of PKC enzyme is closely linked to PLC signaling during oocyte maturation. In addition, these inhib itors blocked the maturation promoting factor (MPF) activity which appeared in oocytes in response to progesterone, suggesting that PKC activation is an important signal for MPF activity. Therefore, this study demonstrates that the activation of PKC via PLC signaling is directly linked to an intracellular protein kinase cascade related to the appearance of MPF activity during meiotic maturation in amphibian (Rana dybowskii) oocytes.
Previously we showed that the human GM3 synthase gene was expressed during the induction of megakaryocytic differentiation in human leukemia K562 cells by phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA). In this study we found that treatment of PMA-induced K562 cells with $G{\ddot{o}}6976$, a specific inhibitor of PKC, and U0126, an inhibitor of the extracellular signal-regulated kinase (ERK) reduced expression of GM3 synthase, whereas wortmannin, an inhibitor of phosphoinositide 3-kinase (PI3K) did not. Moreover, activation of ERK and cAMP response element binding protein (CREB) was prevented by pretreatment with $G{\ddot{o}}6976$ and U0126. PMA stimulated the promoter activity of the 5'-flanking region from -177 to -83 region of the GM3 synthase gene, and mutation or deletion of a CREB site located around -143 of the promoter reduced PMA-stimulated promoter activity, as did the inhibitors $G{\ddot{o}}6976$ and U0126. Our results demonstrate that induction of GM3 synthase during megakaryocytic differentiation in PMA-stimulated human leukemia K562 cells depends upon the PKC/ERK/CREB pathway.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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