We examined the signaling molecules involved in the 6-hydroxydopamine (6-OHDA)-induced neuronal cell death and increase in cellular glutathione (GSH) level in SK-N-SH cells. The 6-OH-DA-induced cell death was significantly prevented by the pretreatment with N-acetylcysteine (NAC), a thiol antioxidant, and BAPTA, an intracellular $Ca^{2+}$ chelator. Although 6-OHDA induced ERK phosphorylation, the pretreatment with PD98059, an ERK inhibitor, did not block 6-OHDA-induced cell death. In addition, the 6-OHDA-induced activation of caspase-3, a key signal for apoptosis, was blocked by the pretreatment with NAC and BAPTA. While the level of reactive oxygen species (ROS) was significantly increased in the 6-OHDA-treated cells, the cellular GSH level was not altered for the first 6-hr exposure to 6-OHDA, but after then, the level was significantly increased, which was also blocked by the pretreatment with NAC and BAPTA, but not by PD98059. Depletion of GSH by pretreating the cells with DL-buthionine-(S,R)-sulfoximine (BSO), a glutathione synthesis inhibitor, rather significantly potentiated the 6-OHDA-induced death. In contrast to the pretreatment with NAC, 6-OHDA-induced cell death was not prevented by the post-treatment with NAC 30 min after 6-OHDA treatment. The results indicate that the GSH level which is increased adaptively by the 6-OHDA-induced ROS and intracellular $Ca^{2+}$ is not enough to overcome the death signal mediated through ROS-$Ca^{2+}$ -caspase pathway.
Objectives : In this study, we investigated the effect of Fructus Ligustri Lucidi $H_2O$ fraction (FLLW) on cell proliferation, and the phosphorylation of ERKs and Akt in human dermal fibroblast neonatal (HDFn). Methods : After treatment of HDFn with FLLW, MTT assay was performed to quantitatively determine cellular viability. The ERK and Akt pathways were analyzed in vitro by Western blot in a HDFn. HDFn proliferation after FLLW and minoxidil treatment in the absence or presence of PD98059, a MEK inhibitor, LY294002, and a PI3K inhibitor, was examined by Western blot or MTT assay. Results : FLLW increased cell proliferation in a dose-dependent manner and minoxidil used as positive control also induced cell proliferation in HDFn. FLLW increased the phosphorylation of ERK and Akt. In addition, minoxidil, too, induced the phosphorylation of ERK and Akt in HDFn. PD98059 and LY294002 significantly attenuated FLLW-inducible p-ERK and p-Akt expression and proliferation in cultured HDFn. Conclusions : Our results suggest that FLLW stimulates the growth of fibroblast cells through ERK and Akt pathways. Therefore, FLLW is a potential agent for the inducer of fibroblast growth.
The phosphorylation of extracellular signal-regulated kinases (p-ERK) in the spinal cord of rats with acute monophasic experimental autoimmune encephalomyelitis (EAE) was studied using immunohistochemistry and treatment with inhibitor. P-ERK is constitutively expressed in glial cells in the normal spinal cord. In EAE, some inflammatory cells in the subarachnoid space were positive for p-ERK at the early stage, and its immunoreactivity declined when those cells infiltrated the parenchyma at the peak stage. In a blocking experiment using its inhibitor, the intravenous administration of PD98059 from day 7 to 13 post-immunization did not modulate EAE paralysis. Considering the results, we postulate that intravenous administration of PD98059 is not effective in ameliorating EAE paralysis, although many inflammatory cells express ERK in the subarachnoid space.
Although previous studies have demonstrated that BMP9 is highly capable of inducing osteogenic differentiation of mesenchymal stem cells, the molecular mechanism involved remains to be fully elucidated. In this study, we showed that BMP9 simultaneously promotes the activation of Smad1/5/8, p38 and ERK1/2 in C3H10T1/2 cells. Knockdown of Smad4 with RNA interference reduced nuclear translocation of Smad1/5/8, and disrupted BMP9-induced osteogenic differentiation. BMP9-induced osteogenic differentiation was blocked by p38 inhibitor SB203580, whereas enhanced by ERK1/2 inhibitor PD98059. SB203580 decreased BMP9-activated Smads singling, and yet PD98059 stimulated Smads singling in C3H10T1/2 cells. The effects of inhibitor were reproduced with adenovirus expressing siRNA targeted p38 and ERK1/2, respectively. Taken together, our findings revealed that Smads, p38 and ERK1/2 are involved in BMP9-induced osteogenic differentiation. Also, it is noteworthy that p38 and ERK1/2 may play opposing regulatory roles in mediating BMP9-induced osteogenic differentiation of C3H10T1/2 cells.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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2003.11a
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pp.83-83
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2003
In our previous study, glucose deprivation was reported to induce the potentiated death and ATP loss in immunostimulated astroglia. And this vulnerability to glucose deprivation was due to overproduction of nitric oxide (NO) and hydrogen peroxide (H$_2$O$_2$). In the present study, the role of extracellular signal-regulated kinase 1/2 (ERK1/2) in the glucose deprivation-induced death of immunostimulated astroglia was examined. We showed that immunostimulation with LPS+IFN-ν activated the ERKl/2 signal pathway and produced a large amount of NO and H$_2$O$_2$. Generation of NO and H$_2$O$_2$ in immunostimulated astroglia was mediated via ERK1/2 signal pathways, since addition of the ERK kinase (MEKl) inhibitor PD98059 reduced NO and H$_2$O$_2$production. ERK1/2 activation-mediated NO and H$_2$O$_2$ production is due to an activation of iNOS and NADPH oxidase, respectively. Finally, we found that glucose deprivation caused ATP depletion and the augmented death in immunostimulated astroglia, which was also prevented by PD98059 treatment. These results demonstrate that the ERK1/2 signal pathways play an important role in glucose deprivation induced the death in immunostimulated astroglia by regulating the generation of NO and H$_2$O$_2$.
Background: Resveratrol has been reported to have potential chemopreventive and apoptosis-inducing properties in a variety of tumor cell lines. Objective: In this study, to investigate the effects of resveratrol on protein kinase C (PKC) activity and apoptosis in human colon carcinoma cells, we used HT-29 cells and examined the $PKC{\alpha}$ and ERK1/2 signaling pathways. Methods: To test the effects of resveratrol on the growth of HT-29 cells, the cells were exposed to varying concentrations and assessed with the the MTT cell-viability assay. Fluorescence-activated cell sorter (FACS) analysis was applieded to determine the effects of resveratrol on cell apoptosis. Western blotting was performed to determine the protein levels of $PKC{\alpha}$ and ERK1/2. In inhibition experiments, HT-29 cells were treated with G$\ddot{o}$6976 or PD98059 for 30 min, followed by exposure to $200{\mu}M$ resveratrol for 72 h. Results: Resveratrol had a significant inhibitory effect on HT-29 cell growth. FACS revealed that resveratrol induced apoptosis. Western blotting showed that e phosphorylation of $PKC{\alpha}$ and ERK1/2 was significantly increased in response to resveratrol treatment. Pre-treatment with $PKC{\alpha}$ and ERK1/2 inhibitors (G$\ddot{o}$6976 and PD98059) promoted apoptosis. Conclusion: Resveratrol has significant anti-proliferative effects on the colon cancer cell line HT-29. The PKC-ERK1/2 signaling pathway can partially mediate resveratrol-induced apoptosis of HT-29 cells.
Aim: To observe the effects of a novel all-trans retinoid acid (ATRA) derivative, N-(3-trifluoromethyl-phenyl)-retinamide (ATPR), on lung adenocarcinoma A549 cells and to explore the potential mechanism of ATPR inhibiting of A549 cell migration. Materials and Methods: The cytotoxicity of ATRA and ATPR on A549 cells was assessed using MTT assay. Wound healing assays were used to analyze the influences of ATRA, ATPR, ML-7 (a highly selective inhibitor of myosin light chain kinase (MLCK)), PMA (an activator of MAPKs) and PD98059 (a selective inhibitor of ERK1/2) on the migration of A549 cells. Expression of MLCK and phosphorylation of myosin light chain (MLC) were assessed by Western blotting. Results: ATRA and ATPR inhibited the proliferation of A549 cells in a dose- and time-dependent manner, and the effect of ATPR was much more remarkable compared with ATRA. Relative migration rate and migration distance of A549 cells both decreased significantly after treatment with ATPR or ML-7. The effect on cell migration of PD98059 combining ATPR treatment was more notable than that of ATPR alone. Moreover, compared with control groups, the expression levels of MLCK and phosphorylated MLC in A549 cells were both clearly reduced in ATRA and ATPR groups. Conclusions: ATPR could suppress the migration and invasion of A549 cells, and the mechanism might be concerned with down-regulating the expression of MLCK in the ERK-MAPK signaling pathway, pointing to therapeutic prospects in lung cancer.
Receptor activation of nuclear factor ${\kappa}$ B ligand (RANKL)은 파골세포의 분화와 기능에 중요한 역할을 하는 단백질로 이들 물질의 조절에는 p38 MAP kinase가 관여한다. 그러나 치주인대 섬유모세포에서 RANKL 발현 시 p38 MAP kinase의 역할은 잘 알려져 있지 않다. 이에 이번 연구는 마우스 치주인대 섬유모세포의 $IL-1{\beta}-induced$ RANKL 발현과정에서 p38의 역할을 규명하고자 하여 다음과 같은 결과를 얻었다. 마우스 치주인대 섬유모세포에 $IL-1{\beta}$ (1ng/ml)의 자극은 수용성 RANKL의 합성을 증가시켰다. 수용성 RANKL의 합성은 p38 MAP kinase 억제제인 SB203580에 의해 농도 의존적으로 억제되었으나 다른 MAP kinase 억제제인 SP600125, JNK 억제제와 PD98059, ERK 억제제에 의해서는 수용성 RANKL의 합성이 조절되지 않았다. NF-kB 억제제에 의해서도 수용성 RANKL의 합성이 억제되지 않았다. RANKL 유전자의 발현은 $IL-1{\beta}$로 자극 시에는 대조군에 비해 약 5배의 발현 증가를 보였으나 SB203580으로 전처치 시 $IL-1{\beta}$ (1ng/ml)로 자극시보다 약 1.5배의 감소를 보였다. 그러나 SP600125, PD98059, 및 NF-kB 억제제로 전처치한 경우에는 $IL-1{\beta}$로 자극한 경우와 비슷한 수준을 보였다. $IL-1{\beta}$로 자극 시 RANKL 유전자의 반감기가 90분 이었으나 SB203580로 전처치 후 $IL-1{\beta}$로 자극 시 RANKL 유전자의 반감기는 60분으로 감소하였다. Cycloheximide 전처리 시 SB203580에 의한 RANKL 유전자 발현 억제가 관찰되지 않았다. 단백질 분석결과 p38 MAP kinase의 인산화 활성은 30분까지 증가하였으나 그 이후 감소하여 2시간째에는 그 발현이 미약하였다. SB203580로 전처치 후 $IL-1{\beta}$로 자극 시 p38 MAP kinase의 인산화 활성이 감소하였다. 이상의 결과는 p38 MAP kinase가 RANKL 유전자 조절에 중요한 역할을 담당하고 있음을 시사한다.
Journal of Physiology & Pathology in Korean Medicine
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v.22
no.5
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pp.1262-1269
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2008
Low intensity pulsed ultrasound(LIPUS) is known to accelerate bone regeneration, but the precise cellular signaling mechanism is still unclear. The purpose if this study was to determine the effect of LIPUS on the signaling mechanism of rat chondrocyte. In the explant culture condition, there was inhibition effect of 1 $W/cm^2$ intensity LIPUS on chondrocytes proliferation but chondrocytes proliferation was increased at 0.25 $W/cm^2$ intensity. In addition, western blot analysis of MAPKs showed that LIPUS increased ERK1/2 activity from the 10 min treatment of LIPUS. Hydrogen peroxide($H_2O_2$), resulted in a time- and dose-dependent cell proliferation, which was largely attributed to apoptosis. $H_2O_2$ treatment caused marked sustained nucleus condensation in Hoechst stain. LIPUS and $H_2O_2$ activates phosphorylation of p-ERK1/2 and PD 98059($10^{-5}M$) blocked the effect of LIPUS and $H_2O_2$. Moreover, the synergistic phosphorylation of p44/42 MAPK by $H_2O_2$, LIPUS was selectively inhibited by PD 98059, ERK1/2 inhibitor. In order to determine whether the increase in cell proliferation caused by $H_2O_2$ and LIPUS could be explained by changes in the level of the prostaglandin $E_2$. Our study demonstrated that LIPUS stimulate the cell proliferation via activated phosphorylation of ERK1/2 in condrocyte. LIPUS has anabolic effects on rat cartilage in explant cultures, indicating a potential important method for the treatment of osteoarthritic cartilarge.
Oxytocin is a neuropeptide produced primarily in the hypothalamus and plays an important role in the regulation of mammalian birth and lactation. It has been shown that oxytocin has important cardiovascular protective effects. Here we investigated the effects of oxytocin on vascular reactivity and underlying the mechanisms in human umbilical vein endothelial cells (HUVECs) in vitro and in rat aorta ex vivo. Oxytocin increased phospho-eNOS (Ser 1177) and phospho-Akt (Ser 473) expression in HUVECs in vitro and the aorta of rat ex vivo. Wortmannin, a specific inhibitor of phosphatidylinositol 3-kinase (PI3K), inhibited oxytocin-induced Akt and eNOS phosphorylation. In the rat aortic rings, oxytocin induced a biphasic vascular reactivity: oxytocin at low dose (10-9-10-8 M) initiated a vasorelaxation followed by a vasoconstriction at high dose (10-7 M). L-NAME (a nitric oxide synthase inhibitor), endothelium removal or wortmannin abolished oxytocin-induced vasorelaxation, and slightly enhanced oxytocin-induced vasoconstriction. Atosiban, an oxytocin/vasopressin 1a receptor inhibitor, totally blocked oxytocin-induced relaxation and vasoconstriction. PD98059 (ERK1/2 inhibitor) partially inhibited oxytocin-induced vasoconstriction. Oxytocin also increased aortic phospho-ERK1/2 expression, which was reduced by either atosiban or PD98059, suggesting that oxytocin-induced vasoconstriction was partially mediated by oxytocin/V1aR activation of ERK1/2. The present study demonstrates that oxytocin can activate different signaling pathways to cause vasorelaxation or vasoconstriction. Oxytocin stimulation of PI3K/eNOS-derived nitric oxide may participate in maintenance of cardiovascular homeostasis, and different vascular reactivities to low or high dose of oxytocin suggest that oxytocin may have different regulatory effects on vascular tone under physiological or pathophysiological conditions.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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