Avian influenza (AIV) outbreaks can induce fatal human pulmonary infections in addition to economic losses to the poultry industry. In this study, we aimed to develop a rapid and sensitive point-of-care AIV test using loop-mediated isothermal amplification (LAMP) technology. We designed three sets of reverse transcription LAMP (RT-LAMP) primers targeting the matrix (M) and hemagglutinin (HA) genes of the H5 and H9 subtypes. RT-LAMP targeting the universal M gene was designed to screen for the presence of AIV and RT-LAMP assays targeting H5-HA and H9-HA were designed to discriminate between the H5 and H9 subtypes. All three RT-LAMP assays showed specific amplification results without nonspecific reactions. In terms of sensitivity, the detection limits of our RT-LAMP assays were 100 to 1,000 RNA copies per reaction, which were 10 times more sensitive than the detection limits of the reference reverse-transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) (1,000 to 10,000 RNA copies per reaction). The reaction time of our RT-LAMP assays was less than 30 min, which was approximately four times quicker than that of conventional RT-PCR. Altogether, these assays successfully detected the existence of AIV and discriminated between the H5 or H9 subtypes with higher sensitivity and less time than the conventional RT-PCR assay.
Kim, Dong-Gyun;Ahn, Sun-Hee;Bae, Ju-Yoon;Kong, In-Soo
Journal of Marine Bioscience and Biotechnology
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v.2
no.4
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pp.263-266
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2007
Vibrio vulnificusis a causative agent of serious diseases in humans resulting from the contact of wound with seawater or consumption of raw seafood. Several studies aimed at detecting V. vulnificus have targeted vvh as a representative virulence toxin gene belonging to the bacterium. In this study, we targeted the rpoS gene, a general stress regulator, to detect V. vulnificus. PCR specificity was identified by amplification of 8 V. vulnificus templates and by the loss of a PCR product with 36 non-V. vulnificus strains. The PCR assay had the 273-bp fragment and the sensitivity of 10 pg DNA from V. vulnificus. SYBR Green I-based real-time PCR assay targeting the rpoS gene showed a melting temperature of approximately $84^{\circ}C$ for V. vulnificus strains. The minimum level of detection by real-time PCR was 2 pg of purified genomic DNA, or $10^3$ V. vulnificus cells from pure cultured broth and $10^3$ cells in 1g of oyster tissue homogenates. These data indicate that real-time PCR is a sensitive, species-specific, and rapid method for detecting this bacterium using the rpoS gene in pure cultures and in infected oyster tissues.
Malaria elimination and control require prompt and accurate diagnosis for treatment plan. Since microscopy and rapid diagnostic test (RDT) are not sensitive particularly for diagnosing low parasitemia, highly sensitive diagnostic tools are required for accurate treatment. Molecular diagnosis of malaria is commonly carried out by nested polymerase chain reaction (PCR) targeting 18S rRNA gene, while this technique involves long turnaround time and multiple steps leading to false positive results. To overcome these drawbacks, we compared highly sensitive cytochrome oxidase gene-based single-step multiplex reaction with 18S rRNA nested PCR. Cytochrome oxidase (cox) genes of P. falciparum (cox-III) and P. vivax (cox-I) were compared with 18S rRNA gene nested PCR and microscopy. Cox gene multiplex PCR was found to be highly specific and sensitive, enhancing the detection limit of mixed infections. Cox gene multiplex PCR showed a sensitivity of 100% and a specificity of 97%. This approach can be used as an alternative diagnostic method as it offers higher diagnostic performance and is amenable to high throughput scaling up for a larger sample size at low cost.
Proceedings of the Microbiological Society of Korea Conference
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2003.05a
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pp.118-121
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2003
A method for detection and quantification of aceticlastic methanogens using a real-time PCR with a TaqMan probe was developed. Two sets of primers and probes targeting the family Methanosarcinaceae and Methanosaetaceae were designed by using the Ribosormal Database Project (RDP) II, and softwares for phylogenetic probe design and sequence analysis. Target-group specificity of each set of primers and probe was verified by testing DNAs isolated from pure cultures of 28 archaeal strains purchased from DSMZ. Cell numbers in the 28 archaeal cultures and in the samples from anaerobic processes were quantified using a real-time PCR with the sets of primers and probe. In conclusion, the real-time PCR assay was very specific for the corresponding target methanogenic family and was proved to be a powerful method for quantification of aceticlastic methanogens in anaerobic processes.
Malaria is a parasitic infection caused by Plasmodium species. Most of the imported malaria in Korea are due to Plasmodium vivax and Plasmodium falciparum, and Plasmodium ovale infections are very rare. Here, we report a case of a 24-year-old American woman who acquired P. ovale while staying in Ghana, West Africa for 5 months in 2010. The patient was diagnosed with P. ovale malaria based on a Wright-Giemsa stained peripheral blood smear, Plasmodium genus-specific real-time PCR, Plasmodium species-specific nested PCR, and sequencing targeting 18S rRNA gene. The strain identified had a very long incubation period of 19-24 months. Blood donors who have malaria with a very long incubation period could be a potential danger for propagating malaria. Therefore, we should identify imported P. ovale infections not only by morphological findings but also by molecular methods for preventing propagation and appropriate treatment.
Ji, Sang-Chun;Kim, Doc-Kyu;Yoon, Jung-Hoon;Lee, Choong-Hwan
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.17
no.4
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pp.668-672
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2007
A microcosmal experiment using a metagenomic technique was designed to assess the effect of BTEX (benzene, toluene, ethylbenzene, and xylenes) on an indigenous bacterial community in a Daejeon forest soil. A compositional shift of bacterial groups in an artificial BTEX-contaminated soil was examined by the 16S rDNA PCR-DGGE method. Phylogenetic analysis of 16S rDNAs in the dominant DGGE bands showed that the number of Actinobacteria and Bacillus populations increased. To confirm these observations, we performed PCR to amplify the 23S rDNA and 16S rDNA against the sample metagenome using Actinobacteria-targeting and Bacilli-specific primer sets, respectively. The result further confirmed that a bacterial community containing Actinobacteria and Bacillus was affected by BTEX.
Park, Tae-Gyu;Kang, Yang-Soon;Seo, Mi-Kyung;Park, Young-Tae
Fisheries and Aquatic Sciences
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v.11
no.4
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pp.209-211
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2008
Heterotrophic dinoflagellate Pfiesteria piscicida (Dinophyceae) has been claimed to produce potent ichthyotoxins that cause disorientation and eventually death of fish and other marine animals. A real-time PCR probe targeting for SSU rRNA gene was used for detection of P. piscicida in Chinhae Bay, Korea. PCR inhibitors were successfully removed by dilution of template DNA. Positive detections were shown from surface water samples indicating the presence of P. piscicida in Chinhae Bay.
One of the major allergenic proteins in common buckwheat (Fagopyrum elculentum) was found to be a BW10KD. In this work, allergenic BW10KD genomic DNAs from the native common buckwheat 'Pyeongchang' and Tartarian buckwheat 'Clfa47' were cloned by polymerase chain reaction (PCR), and their nucleotide sequences were determined. In addition, a novel PCR assay targeting the allergenic BW10KD gene was developed to detect and differentiate both buckwheat species in food. The nucleotide sequences of the BW10KD genomic DNA from 'Pyeongchang' and 'Clfa47' were 94% identical. Base differences in the nucleotide sequences of the BW10KD genes are probably useful as a molecular marker for species-specific identification. The 'Pyeongchang'-specific primer set 154PF/400PR and the 'Clfa47'-specific primer set 154DF/253DR generated 247 and 100 bp fragments in singleplex PCR, respectively. A duplex PCR assay with 2 species-specific primer sets simultaneously differentiated the 'Pyeongchang' and 'Clfa47' in a single reaction. The PCR assay also successfully allowed for the rapid detection of buckwheat ingredients in foods.
We have successfully applied the nested PCR to detect Cylindrocarpon destructans, a major pathogen causing root rot disease from ginseng seedlings in our former study. The PCR assay, in this study, was used to detect the pathogen from soils. The nested PCR using internal transcribed spacer (ITS) 1, 4 primer set and Dest 1, 4 primer set maintained the specificity in soils containing various microorganisms. For a soil DNA extraction method targeting chlamydospores, when several cell wall disrupting methods were tested, the combination of lyophilization and grinding with glass beads, which broke almost all the chlamydospores, was the strongest. The DNA extraction method which was completed based on the above was simple and time-saving because of exclusion of unnecessary stages, and efficient to apply in soils. As three ginseng fields whose histories were known were analyzed, the PCR assay resulted as our expectation derived from the field information. The direct PCR method will be utilized as a reliable and rapid tool for detecting and monitoring C. destructans in ginseng fields.
The marine dinoflagellate genus Alexandrium, which produces PSP toxins, has a global distribution. As human-assisted dispersal of the species has been suggested, it is important to develop molecular tools to trace the dispersal pathway. To screen population-specific DNA sequences that differentiate Korean and Japanese A. catenella, we targeted the area downstream of the chloroplast psbA gene using PCR with population-specific DNA primers followed by RFLP (restriction fragment length polymorphism) analysis and sequencing. The RFLP patterns of the PCR products divided Korean and Japanese A. catenella regional isolates into three types: Korean, Japanese, and type CMC3, isolated from Korea. We sequenced the PCR products, but found no similar gene in a homology search. The molecular phylogeny inferred from the sequences separated the Korean and Japanese A. catenella strains, as did the RFLP patterns. However, the Japanese isolates included two slightly different sequences (types J and K), while the Korean sequence was the same as the Japanese K type. In addition, a unique sequence was found in the Korean strains CMC2 and CMC3. Population-specific PCR amplification with Japanese A. catenella type-specific PCR primers designed from the type J sequence yielded PCR products for Japanese strains only, showing that the unknown gene can be used for a population analysis of Korean and Japanese A. catenella.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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