A PCR-enzyme-linked immunosorbent assay (PCR-ELISA) was developed for the rapid and sensitive detection of L. monocytogenes. PCR primers generating a 132-bp amplicon and a capture probe able to hybridize to the PCR amplicon were designed based on the L. monocytogenes-specific hly gene encoding listeriolysin. The detection limit of PCR-ELISA for L. monocytogenes was determined to be as low as 10 cells per PCR reaction, and this level of detection was achieved within 5 h. These results indicate that the PCR-ELISA provides a valuable tool for the rapid and sensitive detection of L. monocytogenes for the ready-to-eat food industry.
In order to identify Vibrio vulnificus in the Yellow Sea near Gunsan, Korea during the early and late summers, the efficiency of the real-time quantitative TaqMan PCR was compared to the efficiency of the conventional PCR and Biolog identification system^TM. Primers and a probe were designed from the hemolysin/cytolysin gene sequence of V. vulnificus strains. The number of positive detections by real-time quantitative TaqMan PCR, conventional PCR, and the Biolog identification system from seawater were 53 (36.8%), 36 (25%), and 10 strains (6.9%), respectively, among 144 samples collected from Yellow Sea near Gunsan, Korea. Thus, the detection method of the real-time quantitative TaqMan PCR assay was more effective in terms of accuracy than that of the conventional PCR and Biolog system. Therefore, our results showed that the real-time TaqMan probe and the primer set developed in this study can be applied successfully as a rapid screening tool for the detection of V. vulnificus.
Kim, Seok-Ryel;Kim, Du-Woon;Kwon, Ki-Sung;Hwang, In-Gyun;Oh, Myung-Joo
Food Science and Biotechnology
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v.17
no.3
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pp.651-654
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2008
In order to enhance the efficacy of norovirus detection by reverse transcriptase-polymerase chain reaction (RT-PCR) and nested PCR, this study developed a norovirus mRNA concentration method using poly oligo dT-conjugated magnetic beads. An efficient norovirus detection protocol was performed on commercial ham using 2 viral elution buffers (glycine buffer and Tris beef extract buffer) and 2 concentration solutions [polyethylene glycol (PEG) and zirconium hydroxide]. The different approaches were verified by RT-PCR and nested PCR. This method was performed on ham in less than 8 hr by artificial inoculation of serial dilutions of the virus ranging from 1,000 to 1 RT-PCR unit/mL. The viral extraction and concentration method had 10-fold higher sensitivity using the combination of Tris beef extract buffer and PEG as compared to glycine buffer and zirconium hydroxide. This method proved that RT-PCR and nested PCR have the sensitive ability to detect norovirus in commercial ham, in that norovirus was successfully detected in artificially contaminated samples at a detection level as low as 1-10 RT-PCR unit/mL. Overall, such a detection limit suggests this protocol is both quick and efficient in terms of its potential use for detecting norovirus in meat products.
The aim of the present study was to develop a sensitive and specific assay for the diagnosis of alcelaphine herpesvirus 1 (AlHV-1) which is a cause agent of malignant catarrhal fever in ruminants. A1HV-1 is a gamma herpesvirus, which is frequent latent, and it is often difficult to detect its antigens or specific nucleic acids because of its low genomic copies in the infected tissues. In this study, polymerase chain reaction (PCR)-dot blot hybridization (DBH) assay for detecting AlHV-1 DNA was developed and evaluated for its sensitivity and specificity as comparison with PCR and DBH alone. The developed PCR-DBH was more sensitive than PCR or DBH alone and also very specific. The results showed that the sensitivity of PCR-DBH were higher and stronger than those of PCR and DBH alone. This PCR-DBH assay can be applied efficiently to confirm the presence of AlHV-1 virus on clinical samples and to differentiate specifically between AlHV-1 infection and other viral infections.
To achieve more accurate and rapid detection of macrolide-lincosamide-streptogramin B resistance genes, erm(A), erm(B), and erm(C), we developed a TaqMan probe-based real-time PCR (Q-PCR) method and compared it with conventional PCR (C-PCR), which is the most widely using erm gene identification method. The detection limit of Q-PCR was 5 fg of genomic DNA or 5-8 CFU of bacterial cells of Staphylococcus aureus. The utilization of Q-PCR might shorten the time to erm detection from 3-4 h to about 50 min. These data indicated that Q-PCR assay appears to be not only highly sensitive and specific, but also the most rapid diagnostic method. Therefore, the appropriate application of the Q-PCR assay will permit rapid and accurate identification of erm genes from clinical and other samples.
Direct PCR from intact fungal cells is not readily suitable to all fungi mainly because of difficulties in rupturing the cell walls. Microwave irradiation has been proven to be useful in fungal DNA extraction protocol. Here we describe a fast template preparation method for PCR amplification from Aspefillus nidulans conidiospores using microwave irradiation. We optimized the duration far microwave irradiation, and the amount of template DNA for PCR. Amplification from samples prepared in this manner was so efficient that we could get PCR products with size enough to identify transformants. We believe that this is a time-saving procedure for screening true transformants of A. nidulans.
Human enteric Adenovirus-41 (HuEAdV-41) causes gastroenteritis, which detected by the polymerase chain reaction (PCR) base diagnostic system for clinical, food, environmental, fish and shellfish samples. We developed improved PCR and nested PCR primer set which had high specificity, sensitivity and reduced times. In this study, we compared seventeen conditions reported in the previous study that was using the PCR based HuEAdV-41 detection system, and non-enteric Adenovirus were detected in nine conditions. The most sensitive detection condition was up to 25 copies however it took 184 minutes of PCR reaction time. In this study, the PCR primer set developed had same level of sensitivity, it reduced the time of detection for clinical, food and seafood samples to 112 minutes. Developed nested PCR primer set needed 112 minutes but detected up to approximately 1 copy. In addition, developed PCR and nested PCR primer set was validated with twenty samples of underground water at random, of which ten samples showed specific band without non-specific reaction. We expect this study will be used to diagnose HuEAdV-41 from various samples.
A method using PCR was developed for the monitoring of glyphosate tolerant soybean (GTS) produced by the DNA recombination technique. We designed 3 pairs of specific oligonucleotide primers based on the gene sequences inserted in soybean and in lectin and ferritin genes as internal standards. Template DNAs were isolated from soybeans by the modified hexadecyl trimethyl ammonium bromide (CTAB)method and used for PCR with different primer sets. PCR, used with specific primer sets for GTS detection, showed the amplified DNA fragments with GTS template DNA but no product showed with non-GTS template. PCR amplified products were confirmed by DNA sequencing and were detected for up to 0.05% of GTS template DNA.
Gopal, Dhayaalini Bala;Lim, Chua Ang;Khaithir, Tzar Mohd Nizam;Santhanam, Jacinta
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.45
no.4
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pp.358-364
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2017
Asymmetric PCR preferentially amplifies one DNA strand for use in DNA hybridization studies. Linear-After-The-Exponential-PCR (LATE-PCR) is an advanced asymmetric PCR method which uses innovatively designed primers at different concentrations. This study aimed to optimise LATE-PCR parameters to produce single-stranded DNA of Candida spp. and Aspergillus spp. for detection via probe hybridisation. The internal transcribed spacer (ITS) region was used to design limiting primer and excess primer for LATE-PCR. Primer annealing and melting temperature, difference of melting temperature between limiting and excess primer and concentration of primers were optimized. In order to confirm the presence of single-stranded DNA, the LATE-PCR product was hybridised with digoxigenin labeled complementary oligonucleotide probe specific for each fungal genus and detected using anti-digoxigenin antibody by dot blotting. Important parameters that determine the production of single-stranded DNA in a LATE-PCR reaction are difference of melting temperature between the limiting and excess primer of at least $5^{\circ}C$ and primer concentration ratio of excess primer to limiting primer at 20:1. LATE-PCR products of Candida albicans, Candida parapsilosis, Candida tropicalis and Aspergillus terreus at up to 1:100 dilution and after 1 h hybridization time, successfully hybridised to respective oligonucleotide probes with no cross reactivity observed between each fungal genus probe and non-target products. For Aspergillus fumigatus, LATE-PCR products were detected at 1:10 dilution and after overnight hybridisation. These results indicate high detection sensitivity for single-stranded DNA produced by LATE-PCR. In conclusion, this advancement of PCR may be utilised to detect fungal pathogens which can aid the diagnosis of invasive fungal disease.
Bacterial black spot disease of prune fruit (Prunus salicina cv. formosa) has outbroke around major prune production area, Gimcheon, Euiseong and Gunwi in Gyungbuk province and has caused severe economic loss. Integrons PCR primer was designed along with sample pre-incubation and nested PCR method to enhance detection sensitivity for early detection of bacteria in fields. Designed integrons PCR primer successfully detected Xanthomonas arboricola pv. pruni from field collected samples, fruit, leaf, branch and even in raindrop collected from prune orchard. Pre-incubation along with nested PCR enhanced sensitivity to detect X. arboricola pv. pruni from seemingly healthy looking, symptomless branches. Designed integrons PCR can be used in prune nursery fields and in plant quarantine practice for the detection of X. arboricola pv. pruni.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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