A stereoselective-hydrolysing enzyme was cloned from Pseudomonas fluorescens KCTC1767 which had high enantiomeric activity toward (S)-ketoprofen ethyl ester. Analyses of typical properties resulted in low thermostability and substrate specificity. A round error-prone PCR and StEP(STaggered Extension Process) was adopted to evolute this character. As a result, the best clone 6-52 was selected which was represented to increased thermostability(40 fold) compared to wild type enzyme in $50^{\circ}C$. Additionally, specific activity toward (S)-ketoprofen ethyl ester and p-nitrophenyl derivatives improved 3 fold and 1.5 fold, respectively. DNA sequence analyses was showed some exchanged amino acid residue that was L120p, 1208v, T249A, D287H and T357A. Which the 120th's leucine substituted for proline was presumed structurally important residue concerning with catalytic activity.
Effects of the inoculum size of testing organism and pH of the plate and the concentration of agar were investigated for the selection of high kasugamycin producing mutants of Streptomyces kasugaensis ATCC 15114. For the detection of high kasugamycin-producing mutants, both concentrations of agar and test organism were optimized at the concentrations of 2% and 0.35 (A$_{550}$), respectively. The pH 7 was optimum for both growing the testing organism, Pseudomonas fluorescens IFO 12180, and for obtaining more promising mutant strains of S. kasugaensis. Under these conditions, mutants had been isolated which, tested later in liquid cultures, gave higher kasugamycin yields than that of the parent strain.
An ABC transporter apparatus of the Gram-negative bacterial type I secretion pathway can be used as a secretory protein expression system in Escherichia coli. Four types of coexpression systems for the Pseudomonas fluorescens lipase gene, tliA, and its cognate ABC transporter gene cluster, tliDEF, were constructed. When the relative expression levels were changed by adding different concentrations of IPTG, the secretion (16.9 U/ml of culture) of TliA in E. coli [pTliDEFA-223+pACYC184] was significantly higher than E. coli [pKK223-3+pTliDEFA-184] secreting the lowest level of TliA (5.2 U/ml of culture). Maximal accumulation of the lipase secreted occurred in the mid-exponential phase, implying that the efficient protein secretion via an ABC transporter was restricted only to actively growing cells. Finally, the secretion level of TliA in E. coli [pTliDEFA-223+pACYC184] was increased to 26.4 U/ml by inducing gene expression at the culture initiation time. These results indicate that a significant increase in the ABC transporter-dependent protein secretion can be achieved by simply controlling the relative expression levels between the ABC transporter and its passenger protein, even in the recombinant E. coli cells.
The expression and antibacterial. activity of recombinant human lactoferrin (hLf) was studied from methylotrophic yeast Pichia pastoris. The gene encoding hLf, isolated from human breast cDNA library, was subcloned into the expression vector, pPIC3.5K under the control of AOX1 promoter. The gene was integrated into the host chromosome and was identified by Southern blotting. The expression of the integrated gene was investigated by RT-PCR, Northern blotting, SDS-PAGE and Western blotting. Discrete band corresponding to hLf was detected from the SDS-PAGE, which was confirmed by Western blotting. The expression was also confirmed by RT-PCR and Northern blotting. The antibacterial activity of the recombinant hLf (rhLf) was investigated using Staphylococcus aureus ATCC 6538P and Micrococcus flavus ATCC 10240 as test organisms. The rhLf showed strong antibacterial activities against the bacteria. Furthermore, many Gram-negative animal pathogens such as E.coli ATCC8739, 25922, and Salmonella typhimurium 114 and 115, Pseudomonas fluorescens ID 963 I, P. aeruginosa KCCM 11802, and Gram-positive bacteria Bacillus mesentericus were also inhibited in their growth by the rhLf.
This experiment was conducted to investigate the distribution of the soil microflora of Daekwanryung highlands of Kwangwon Province. It was found that soil microorganisms each as Bacteria, Actinomycetes, Fungi, Pseudomonas spp. and Erwnia sp. were mostly in the top 0-15 cm profile. It also was found that soil microflora population was affected in many ways by kind of cropping plant. The number of Erwinia sp. that is one of the soil born plant pathogenic bacteria was more abundant in potato field than chinese cabbage soil. It was also studied difference of mountain and grassland soils from cropping soils.
A cell aggregation factor produced by Aspergillus sp. LAM 94-142 was purified and partially characterized. The factor was purified about 15 folds from culture broth by IRA 420 and IRC 120 treatment, 1% NaCl added acetone precipitation, and Sepharose 4B column chromatography with overall yield of 48%. It was heteropolysaccharide consisted of mannose, arabinose, and glucose with a molar ratio, 31:17:2, and its molecular weight was estimated to be about 900,000 daltons by Sepharodse 4B gel filtration method. The optimum pH and temperature was 8 and 40$\circ$C, respectively. The factor was stable in pH range of 3-9 and at 100$\circ$C for 90 min. The cell aggregation activity of the factor was inhibited by the addition of Hg$^{2+}$, Fe$^{2+}$, Cu$^{2+}$, and some polypeptides such as milk casein or hemoglobin. The factor aggregated Bacillus subtilis, B. macerans, B. turingiensis, E. coli, Peudomonas aeruginosa, P. fluorescens, P. malophilia, and weakly aggregated Staphylococcus sp., Sarcina lutea, P. putida and Cryptococcus neoformnans, but it didn't aggregate various strains of Candida sp. and Saccharomyces sp.
SHIN, BYUNG SIK;BON TAG KOO;SEUNG HWAN PARK;HO YONG PARK;JEONG IL KIM
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.1
no.4
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pp.240-245
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1991
We have constructed a promoter-probe vector pKU20 using pKT230, a derivative of broad-host-range plsmid RSF1010, as a base. The pKU20 contains structural gene for aminoglycoside phos-photransferase (aph), without promoter, and a multiple cloning site upstream the aph. Using this vector, a 412base pairs (bp) PstI fragment showing strong promoter activity both in Escherichia coli LE392 and Pseudomonas putida KCTC1644 has been cloned from Pseudomonas fluorescens chromosomal DNA on the basis of streptomycin resistance. The nucleotide sequence of the 412 bp fragment has been determined and the putative - 35 and -10 region was observed. Insecticidal protein gene of Bacillus thuringiensis subsp. kurstaki HD-73 inserted on downstream of the promoterlike DNA fragment was efficiently expressed in E. coli and P. putida. The toxin protein was efficiently synthesized in an insoluble form in both strains.
A psychrotrophic bacterial strain, Pseudomonas fluorescens BM07, synthesized unsaturated fatty acids (UFA) from fructose in response to lowering of growth temperature, and incorporated them into both polyhydroxyalkanoic acid (PHA) and membrane lipid. The blocking of PHA synthesis by adding 5 mM 2-bromooctanoic acid to the growth medium, containing 70 mM fructose, was found to be a useful means to profile the composition of membrane lipid by gas chromatography. As the growth temperature changed from 35 to $50^{\circ}C$, the total content of two UFA, 3-hydroxy-cis-5dodecenoic acid ($C_{12:1}$) and 3-hydroxy-cis-7-tetradecenoic acid ($C_{14:1}$), in PHA increased from 31 to 44 $mol\%$. The growth at lower temperatures also led to an increase in the level of two major UFA, palmitoleic acid (C16:1 cis9) and cis-vaccenic acid (C18:1 cis11), in membrane lipid. A fraction of these membrane-lipid UFA was converted to their corresponding cyclopropane fatty acids (CFA). The CFA conversion was a function of culture time, exhibiting biphasic increase before and after entering the stationary phase. However, pH changes in growth media had no effect on the CFA conversion, which is contrary to the case of E. coli reported. The cells grown at $30^{\circ}C$ responded to a cold shock (lowering the medium temperature down to $10^{\circ}C$) by increasing the level of C16:1 cis9 and C 18: I cis II up to that of $10^{\circ}C$-grown control cells and concomitantly decreasing the relative level of cis-9,10methylenehexadecanoic acid (the CFA converted from C16:1 cis9) from 14 to 8 $mol\%$, whereas the 10-grown cells exhibited little change in the lipid composition when exposed to a warmer environment of $30^{\circ}C$ for 12 h. Based on this one- way response, we suggest that this psychrotrophic strain responds more efficiently and sensitively to a cold shock than to a hot shock. It is also suggested that BM07 strain is a good producer of two unsaturated 3-hydroxyacids, $C_{12:1}\;and\;C_{141:1}$.
The antimicrobial activity of Curcuma aromatica Salab. was investigated. The Curcuma aromatica Salab. extract showed antimicrobial activity against six pathogens tested. These were Listeria monocytogenes ATCC 19115, Pseudomonas fluorescens ATCC 21541,Staphylococcus aureus ATCC 29273, Salmonella typhimurium ATCC 21541, vibrio parahaemolyticus ATCC 17802, and Aeromonas hydrophila KCTC 2358. Antimicrobial activity was alsonoted when the extract was tested against four isolates of Bacillus sp. purified from spoiled tofu. The growth of various pathogens was significantly inhibited (100 10,000-fold) upon growth in tryptic soy broth containing 0.05 0.2%(w/v) Curcuma aromatica Salab. extract(CE), after incubation for 12hr at $37^{\circ}C$. The growth of the four Bacillus isolates was also significantly inhibited in nutrient broth containing 0.05 0.2% CE after incubation for 24hr at $37^{\circ}C$. Although the antimicrobial activity of CE was decreased by heat treatment at temperatures above $80^{\circ}C$, the activity remained relatively high after heat treatment at $121^{\circ}C$ for 15min. The minimum inhibitory concentrations of CE were 0.1 0.3%(v/v culture) for the six pathogens, and 0.2 0.25% for the Bacillus isolates, respectively.
The genetic diversity of plant growth-promoting rhizobacterial (PGPR) fluorescent pseudomonads associated with the sugarcane (Saccharum officinarum L.) rhizosphere was analyzed. Selected isolates were screened for plant growthpromoting properties including production of indole acetic acid, phosphate solubilization, denitrification ability, and production of antifungal metabolites. Furthermore, 16S rDNA sequence analysis was performed to identify and differentiate these isolates. Based on 16S rDNA sequence similarity, the isolates were designated as Pseudomonas plecoglossicida, P. fluorescens, P. libaniensis, and P. aeruginosa. Differentiation of isolates belonging to the same group was achieved through different genomic DNA fingerprinting techniques, including randomly amplified polymorphic DNA (RAPD), amplified ribosomal DNA restriction analysis (ARDRA), repetitive extragenic palindromic (REP), enterobacterial repetitive intergenic consensus (ERIC), and bacterial repetitive BOX elements (BOX) analyses. The genetic diversity observed among the isolates and rep-PCR-generated fingerprinting patterns revealed that PGPR fluorescent pseudomonads are associated with the rhizosphere of sugarcane and that P. plecoglossicida is a dominant species. The knowledge obtained herein regarding the genetic and functional diversity of fluorescent pseudomonads associated with the sugarcane rhizosphere is useful for understanding their ecological role and potential utilization in sustainable agriculture.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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