Benzo[a]pyrene (B[a]P) is an environmental pollutant that has been implicated in carcinogenesis. Saccharomyces cerevisiae was treated with B[a]P, and the responses of its cytochrome P450 (CYP) enzyme and DNA-damage checkpoint genes were examined through gene expression profiles using a reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR). The DNA-damage checkpoint genes tested were the chk1 and pds1 genes, involved in a metaphase arrest, the swi6 gene targeted by G1 arrest, the pol2 gene related to S phase arrest, and the cln2 gene encoding a cyclin protein, all of which are based on rad9 and rad24. Among these genes, no noticeable effect was found when the cells were exposed to various concentrations of B[a]P. However, the transcriptional activity of CYP51 was significantly different when the cells were exposed to B[a]P. Accordingly, the present results indicate that cytochrome P450 plays a more significant role than DNA-damage checkpoint genes in the response of S. cerevisiae to B[a]P.
Hematopoietic stem cells (HSC) are multipotent cells that reside in the bone marrow and replenish all adult hematopoietic lineages throughoutthe lifetime. In this study, we analyzed the expression of receptors of $P2Y_{10}$, purinergic receptor families in murine hematopoietic stem cells, hematopoietic progenitor cells. In addition, the biological activity of $P2Y_{10}$ was investigated with B lymphocyte cell line, Ba/F3 in effect to cell growth and cell cycle. From the analysis of expression in hematopoieticstem cell. and progenitor with RT-PCR, $P2Y_{10}$ was strongly expressed in murine hematopoieticstem cells (c-kit+ Sca-l+ Lin-) and progenitor cell population, such as c-kit- Sca-l+ Lin-, c-kit+ Sca-l- Lin- and c-kit- Sca-l- Lin-. To investigate the biological effects by $P2Y_{10}$, retroviral vector from subcloned murine $P2Y_{10}$ cDNA was used fur gene introduction into Ba/F3 cells, and stable transfectant cells were obtained by flow cytometry sorting. In cell proliferation assay, the proliferation ability of $P2Y_{10}$ receptor genetransfected cells was strongly inhibited, and the cell cycle was arrested at G1 phase. These result suggest that the $P2Y_{10}$ may be involved the biological activity in hematopoietic stem cells and immature B lymphocytes.
Lim, Jong Chul;Chae, Jong Chan;Kim Youngsoo;Kim, Hyong Bai;Kim Chi Kyung
Journal of Microbiology
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v.34
no.4
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pp.349-354
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1996
Pseudomonas sp. P20 is a natural isolate which is capable of degrading biphenyl and 4-chlorobiphenyl. From a clone of pCK1022 harboring pcbCD genes of Pseudomonas sp P20, a pcbD gene encoding 2-hydroxy-6-oxo-6-phenylhexa-2, 4-dienoic acid (HOPDA) hydrolase was subcloned in Escherichia coli XL-1-Blue by using pBluescript SK(+) vector. The 2.8-kb HindII fragment harboring the pcbD gene cloned in pCK 1024 had a single site for each of XhoI, SalI, BstXI, and XbaI restriction enzymes. Escherichia coli CK1024 had a single site for each of XhoI, SalI, BstXI, and XbaI restriction enzymes. Escherichia coli CK1024 carrying pCK0124 degraded HOPDA to benzoate and 2-hydroxypenta-2, 4-dienoate by HOPDA hydrolase encoded by pcbD gene as effectively as E coli CK 1022 HARBORING pcbCD genes.
The ${\beta}$-galactosidase gene from Lactococcus lactis subsp. lactis ATCC 7962 was cloned and its enzymatic properties were characterized, with a view to assessing its potential use as a selection marker in the food-grade cloning vector. Chromosomal DNA from L. lactis subsp. lactis 7962 was cleaved with PstI and ligated into pBR322 for transformation into Escherichia coli TGl. Transformants showing ${\beta}$-galactosidase activity possessed the pBR322 plasmid containing a 10 kilobase (kb) PstI fragment and this plasmid was named pCKL11. The cloned ${\beta}$-galactosidase gene came from the chromosomal DNA of L. lactis subsp. lactis 7962 was confirmed by Southern hybridization. A restriction map of pCKL11 was constructed from the cleavage of both pCKL11 and the purified 10kb insert fraqment. The. optimum pH of the ${\beta}$-galactosidase determined with the E. coli harboring the pCKL11 was 7.0. The optimum temperature was $50^{\circ}C$, while the pI of the enzyme was 7.4. These values were the same as those of the enzyme from the parent strain.
A gene encoding the ${\beta}$-xylosidase/${\alpha}$-arabinofuranosidase (XylC) of Paenibacillus woosongensis was cloned into Escherichia coli. This xylC gene consisted of 1,425 nucleotides, encoding a polypeptide of 474 amino acid residues. The deduced amino acid sequence exhibited an 80% similarity with those of both Clostridium stercorarium ${\beta}$-xylosidase/${\alpha}$-N-arabinosidase and Bacillus cellulosilyticus ${\alpha}$-arabinofuranosidase, belonging to the glycosyl hydrolase family 43. The structural gene was subcloned with a C-terminal His-tag into a pET23a(+) expression vector. The His-tagged XylC, purified from a cell-free extract of a recombinant E. coli BL21(DE3) Codon Plus carrying a xylC gene by affinity chromatography, was active on para-nitrophenyl-${\alpha}$-arabinofuranoside (pNPA) as well as para-nitrophenyl-${\beta}$-xylopyranoside (pNPX). However, the enzymatic activities for the substrates were somewhat incongruously influenced by reaction pHs and temperatures. The enzyme was also affected by various chemicals at different levels. SDS (5 mM) inhibited the enzymatic activity for pNPX, while enhancing the enzymatic activity for pNPA. Enzyme activity was also found to be inhibited by addition of pentose or hexose. The Michaelis constant and maximum velocity of the purified enzyme were determined for hydrolysis of pNPX and pNPA, respectively.
Proceedings of the Korean Society for Applied Microbiology Conference
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1986.12a
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pp.525.1-525
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1986
To clone ${\beta}$-glucosidase gene from Cellulomonas sp. a gene library was constructed using E. coli JM83 pUC9. Among 2,500 pseudotransformants obtained, 20 clones developed yellow color on the p-nitrophenyl- -D-glucopyranoside filter paper These 20 clones were classified into three groups based on the results of activity staining using nondenaturating polyacrylamide gel electrophoresis and restriction enzyme digestions. Among the three groups, only one group containing pCEl plasmid has specificity for cellobiose.
Several gene delivery therapies are being developed for treatment of serum protein deficiency. EPO is one of the most promising therapeutic agent for this treatment which is currently being investigated in depth. This study has the ultimate purpose of improving the gene delivery system for an increase of red blood cell production. A plasmid DNA was constructed smaller than other plasmids for an increase in penetration into animal cells, and two genes were cloned into each vector as a co-delivery system to express erythropoietin, and interluekin-3 or thrombopoietin, which can act on erythroid cell, thus activating hematopoiesis synergically. This co-delivery system has an advantage of decreasing the labour required for industrial production of DNA vaccine. A new plasmid vector, pVAC, in size 2.9 kb, was constructed with the essential parts from PUC 19 and pSectagB, which is much smaller than other plasmid vector and is the size of 2.9 kb. Co-delivery system was constituted by cloning human erythropoietin with each of human interluekin-3 gene or human thrombopoietin gene into both pVAC and pSectagB. As a result, the transfection efficiency of pVAC was higer than that of pSectagB in vitro, and hematocrit level of the mice injected with pVAC is higher than that of other mice. And co-delivery system, made of several plasmid DNAs, was expressed in vitro.
Hybrid plasmid pEA24, shuttle vector YRp7 carrying amylase gene of Bacillus amyloliquefaciens, was transformed to yeast Saccharomyces cerevisiae, and the expression of B. amyloliquefaciens amylase gene in yeast was investigated. The frequency of transformation to S. cerevisiae DBY747 with YRp7 was increased by treatment of 40% polyethylene glycol (MW 4, 000), PH 7.0, at 3$0^{\circ}C$, and by regeneration used 2% top agar. The amount of cellular amylase activity produced by S. cerevisiae containing pEA24 was 2% of that secreted from B. amyloliquefaciens, but in case of S. cerevisiae transformant, the amylase secreted was not detected. A comparison of genetic stability of pEA24 and YRp7 plasmids in yeast was carried out by cultivation of transformants in tryptophan-supplement-medium. The pEA24 plasmid was more unstable than YRp7 in S. cerevisiae. The size of pEA24 extracted from S. cerevisiae transformants was found to be identical with that from E. coli transformants by agarose gel electrophoresis.
Purpose : This study was aimed to investigate the inhibitory effect of Corydalis Tuber on the proliferation of human uterine leiomyoma cell and the expression of gene related the mechanism of cell apoptosis. Methods : We counted the number of suvival cells treated with indicated concentration of Corydalis Tuber and investigated cell viability by MTS assay. Furthermore, flow cytometric analyis were used to dissect between necrosis and apoptosis related with cell cycle and then we observed the differential gene expression by western blot analysis. Results : 1) The inhibitory effect on the proliferation of uterine leiomyoma cell treated with Corydalis Tuber was increased in a concentration and time proportional. 2) The result of flow cytometry analysis, subG1 phase arrest related cell apoptosis was not investigated in uterine leiomyoma cell treated Corydalis Tuber but showed G2/M phase prolongation. 3) The gene expression of p27, p21 related cell cycle was increased according to increasing concentration, but p53 was not exchanged. 4) The dephosphorylation of pRb gene were increased dependent on treatment concentration and pro-caspase 3, CDK4 were not exchanged. Conclusion : This study showed that Corydalis Tuber have the inhibitory effect on the proliferation of human uterine leiomyoma cell but the effect was thoughted no relationship with apoptosis. The inhibitory effect was suggested that dephosphorylation of pRb gene induced with increasing p21, p27 prolonged cell division in G2/M phase.
For the development of a glucanolytic yeast strain. the seceretion of endo-1.4-$\beta$-D-glucanase (CMCase) of Bacillus subtilis was performed in yeast using glucoamylase gene (STA1) of Saccharomyces diastaticus. A 1.7 kb-DNA fragment of STA1 gene containing authentic promoter, signal sequence, threonine serine-rich (TS) region and N-terminal region (98 amino acids) of mature glucoamylase was ligated to YEp 24. E. coli-yeast shuttle vector. And then. CMCase structural gene of B. subtilis was fused in frame with the 1.7 kb-DNA fragment of STA1 gene, resulting in recombinant plasmid pYES('24. Yeast transformant harboring pYESC24 had no CMCase activity. So. we deleted TS region and N-terminal region of mature glucoamylase existing between signal sequence and CMCase structural gene in pYESC24. consequently constructed recombinant plasmid pYESC11. The yeast transformed with the newly constructed recombinant plasmid pYESC11 efficiently secreted CMCase to extracellular medium. After 4 days culture. total CMCase activity of this transformant was 44.7 units/ml and over 93% of total CMCase activity was detected in culture supernatant.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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