This paper was designed to investigate the influence of different suppository bases on both the rectal absorption and dissolution rate of lithium carbonate, and to compare bioavailability from rectal administration with that from oral administration. The dissolution rates were in such order as PEG 4000, surfactant A (Witepsol 15+sodium lauryl sulfate), surfactant B (Witepsol 15+cholic acid), Witepsol 15 and cacao butter. Among various suppository bases, the blood level of lithium carbonate after rectal administration was increased in the following order: surfactant A>surfactant B>PEG 4000>Witepsol 15>cacao butter. When it comes to compare oral with rectal administration in AUC values, surfactants and PEG 4000 showed similar blood levels to oral administration, but lipophilic bases such as Witepsol 15 and cacao butter showed far lower blood level than oral administration. Peak time in oral administration was 2 hrs, but those in rectal administration using various suppository bases were $6{\sim}8$ hrs.
Choi, Chee-Ho;Kim, Si-Hun;Shanmugam, Srinivasan;Baskaran, Rengarajan;Park, Jeong-Sook;Yong, Chul-Soon;Choi, Han-Gon;Yoo, Bong-Kyu;Han, Kun
Biomolecules & Therapeutics
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v.18
no.1
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pp.99-105
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2010
The purpose of this study was to evaluate relative bioavailability of the coenzyme Q10 (CoQ10) in emulsion and three liposome formulations after a single oral administration (60 mg/kg) into rats. Emulsion formulation of CoQ10 was prepared by conventional method using Phospholipon 85G as an emulsifier, and three liposome formulations (neutral, anionic, and cationic) of CoQ10 were prepared by traditional lipid film hydration technique using Phospholipon 85G, cholesterol, and charge carrier lipids (1,2-dioleoyl-3-trimethylammonium-propane chloride salt for cationic liposome and 1,2-dimyristoyl-sn-glycero-3-phosphate monosodium salt for anionic liposome). Mean particle size of all CoQ10-loaded liposome was less than a micron, and size distribution of the liposome population was homogeneous. Bioavailability of CoQ10 in emulsion was 1.5 to 2.6-fold greater than liposome formulations in terms of $AUC_{0-24\;h}$. $T_{max}$ was 3 h when administered as emulsion while it was greater than 6 h in liposome formulations. Notably, it was approximately 8 h in cationic liposome. $C_{max}$ was highest in emulsion and was significantly decreased when administered as liposome. Charged liposome showed even lower $C_{max}$ than neutral liposome, especially in cationic liposome. In conclusion, therefore, it is suggested that clinicians and patients consider bioavailability issue a primary concern when choosing a CoQ10 product, especially when very high plasma level is required such as in the treatment of heart failure and Parkinson's disease.
Ipriflavone (3-phenyl-7-isopropoxy-4H-1-benzopyran-4-one, IP) is a well-known antiosteoporotic drug with poor bioavailability. In the previous study, we reported that the IP formulation prepared by spray-drying method with polyvinylpyrrolidone (PVP) (SIP) was very effective in improving the bioavailability of IP. In this study, we examined the effects of molecular weight and mixture ratios of PVP to IP on the systemic absorption of IP following oral administration of SIP at a dose of 50 mg/kg to rats. In the effect of molecular weight, the Cmax of spray-dried IP with PVP K30 (SIP-K30) was significantly higher than those of spray-dried IP with PVP 360 (SIP-360), spray-dried IP with PVP K90 (SIP-K90), and spray-dried IP with PVP K17 (SIP-K17) (p<0.05). The AUC of SIP-K30 was about 2, 3, and 5.5 times higher than those of SIP-360, SIP-K90, and SIP-K17, respectively. The AUC value of SIP-K30 was significantly greater than those of SIP-K17 and SIP-K90 (p<0.05) except for SIP-360. In the ratio of PVP K30 to drug, the $C_{max}$ and the AUC value of 3 : 7 IP-PVP solid dispersion were similar to those of 5 : 5 IP-PVP and significantly higher than those of the other solid dispersions (p<0.05). It was concluded that the spray-dried IP with PVP K30 at the ratio of 3:7 (w/w) was the best formulation for improving the bioavailability of IP.
Cefuroxime axetil is a cephalosporin antibiotic having a high activity against a wide spectrum of Grampositive and Gram-negative microorganisms. It is a cephalosporin antibiotic which exist as 2 diastereoisomers: diastereoisomer A and B. It shows polymorphism of three forms: a crystalline form having a melting point of about $180^{\circ}C$, a substantially amorphous form having a high melting point of about $135^{\circ}C$ and a substantially amorphous form having a low melting point of about 70^{\circ}C$. The crystalline form of cefuroxime axetil is slightly soluble in water because diastereoisomer A has lower solubility than B in water. Substantially amorphous form of which there are no difference in solubility between diastereoisomer A and B has better solubility than crystalline form, but it forms a thicker gel than crystalline form upon contact with an aqueous medium. Based on this reason, cefuroxime axetil is not readily absorbable in the gastrointestinal tract, rendering its bioavailability on oral administration very low. The object of this study was to develop an improved non-crystalline cefuroxime axetil composition having a high physicochemical stability and bioavailability. A non-crystalline cefuroxime axetil solid dispersant showing no peak on a Differential Scanning Calorimetry (DSC) scan is prepared by dissolving cefuroxime axetil and a surfactant in an organic solvent; suspending a water-insoluble inorganic carrier in the resulting solution; and spray drying the resulting suspension to remove the organic solvent, said solid dispersant having an enhanced dissolution and stability of cefuroxime axetil and being useful for the preparation of a pharmaceutical composition for oral administration. Tablet was formulated with this cefuroxime axetil solid dispersant, disintegrants and other ingredients. It disintegrated and dissolved easily and dynamically in dissolution medium, so showed a good dissolution profile.
The purpose of this study is to investigate the bioequivalence of two haloperidol 5 mg tablets, Myung In haloperidol (Myung In Pharm. Co., Ltd., test drug) and $Peridol^{R}$(Whanin Pharm. Co., Ltd., reference drug), and also to estimate the pharmacokinetic parameters of haloperidol in Korean volunteers. The bioavailability and pharmacokinetics of haloperidol tablets were examined on 24 healthy volunteers who received a single oral dose of each preparation in the fasting state in a randomized balanced 2 way crossover design. After an oral dosing, blood samples were collected for a period of 60 h. Plasma concentrations of haloperidol were determined using a liquid chromatographic electrospray mass spectrometric (LC-MS) method. The pharmacokinetic parameters were calculated with noncompartmental pharmacokinetic analysis. The geometric means of $AUC_{0-60h} and C_{max}$ between test and reference formulations were $17.21\pm8.26 ng\cdot/mL vs 17.31\pm13.24 ng\cdot/mL and 0.87\pm0.74 ng/mL vs 0.85\pm0.62 ng/mL$. respectively. The $90\%$ confidence intervals of mean difference of logarithmic transformed $AUC_{0-60h} and C_{max} were log0.9677{\sim}log1.1201 and log0.8208{\sim}log1.1981$, respectively. It shows that the bioavailability of test drug is equivalent with that of reference drug. The geometric means of other pharmacokinetic parameters ($AUC_{inf}. t_{1/2}, V_{d}/F, and CL/F$) between test drug and reference drug were $21.75\pm8.50 ng{\cdot}h/mL vs 21.77\pm15.63 ng{\cdot}h/mL, 29.87\pm8.25 h vs 29.60\pm7.56 h, 11.51\pm5.45 L vs 12.90\pm6.12 L and 0.26\pm0.09 L/h vs 0.31\pm0.17 L/h$, respectively. These observations indicate that the two formulation for haloperidol was bioequivalent and, thus, may be clinically interchangeable.
The aim of this study was to investigate the pharmacokinetic changes of verapamil and its major metabolite, norverapamil, after oral administration of verapamil (10 mg/kg) in rabbits with slight, moderate and severe hepatic failure induced by carbon tetrachloride. The plasma verapamil concentrations in all groups of hepatic failure were significantly higher (p<0.01) than the control. However, the plasma norverapamil concentrations in severe hepatic failure were significantly higher (p<0.05) than the control. The peak concentrations ($C_{max}$) and the areas under the plasma concentration-time curve (AUC) of verapamil in the rabbits were significantly (p<0.01) higher than the control. The absolute bioavailability ($F_{A.B}$) and the relative bioavailability ($F_{R.B}$) of verapamil in the rabbits with hepatic failure were significantly higher ($13.6-22.2\% and 150-244\%$, respectively) than the control ($9.1\% and 100\%$, respectively). Although the AUC and $C_{max}$ of its major metabolite, norverapamil, in slight, moderate hepatic failure were not significantly lower than the control, the metabolite-parent AUC ratio in all groups of hepatic failure was decreased significantly (p<0.05, in slight group; p<0.01, in moderate and severe group) than the control. This could be due to decrease in metabolism of verapamil in the liver because of suppressed hepatic function in the hepatic failure groups because verapamil is mainly metabolized in the liver. From our data, it would seem appropriate that in patients with liver disease, doses of verapamil should be decreased by degree of hepatic failure.
The purpose of this study was to investigate the effect of atorvastatin on the pharmacokinetics of nifedipine (6 mg/kg) after oral administration of nifedipine with or without atorvastatin (0.5 and 2.0 mg/kg) in rats, and also was to evaluate to the effect of atorvastatin on the CYP3A4 activity. The 50% inhibiting concentration ($IC_{50}$) values of atorvastatin on CYP3A4 activity is 46.1 ${\mu}M$. Atorvastatin inhibited CYP3A4 enzyme activity in a concentration-dependent manner. Coadministration of atorvastatin increased significantly (p<0.05, 2.0 mg/kg) the plasma concentration-time curve (AUC) and the peak concentration ($C_{max}$) of nifedipine compared to the control group. The relative bioavailability (RB%) of nifedipine was increased from 1.15- to 1.37-fold. Coadministration of atorvastatin did not significantly change the terminal half-life ($T_{1/2}$) and the time to reach the peak concentration ($T_{max}$) of nifedipine. Based on these results, we can make a conclusion that the significant changes of these pharmacokinetic parameters might be due to atorvastatin, which possesses the potency to inhibit the metabolizing enzyme (CYP3A4) in the liver and intestinal mucosa, and also inhibit the P-glycoprotein (P-gp) efflux pump in the intestinal mucosa. It might be suggested that atorvastatin altered disposition of nifedipine by inhibition of both the first-pass metabolism and P-glycoprotein efflux pump in the small intestine of rats. In conclusion, the presence of atorvastatin significantly enhanced the oral bioavailability of nifedipine, suggesting that concurrent use of atorvastatin with nifedipine should require close monitoring for potential drug interation.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1996.04a
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pp.272-272
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1996
While ranitidine is well known to be absorbed rapidly, the underlying cause of variable bioavailability in intra- and inter-subjects has not been clarified yet. Intestinal permeability is a key controlling factor for oral absorption of highly soluble drugs, In the present study, intestinal ferfusions have been conducted to determine the intestinal permeabilities(Peffs) of ranitidine in the rats, dogs and humans and compared to the estimated fractions of dose absorbed (FAs) in humans. A new in vivo methodology, using a regional segmental perfusion technique, has been used in the dogs and humans. In situ single-pass perfusion experiments have been performed in the rats. In the dog and human studies, perfusion experiments have been conducted on two periods to determine the intrasubject variability, There was low significant intrasubject variation as compared to intersubject variation. The Peffs of ranitidine were 33%, 51%, and 45% inthe rats, dogs and humans, respectively. The FAs were approximately the same for all three species models, suggesting rats and dogs are good animal models for estimating the oral absorption of ranitidine in humans. In addition, the estimated extent of absorption of this drug is consistent with the average bioavailability, indicating that ranitidine has permeability-limited absorption characteristics. Supported by FDA Grant FD01462.
The aim of this study was to investigate the effect of morin on the pharmacokinetics of nifedipine in rats. The pharmacokinetic parameters of nifedipine were measured after the oral administration of nifedipine (5 mg/kg) in the presence or absence of morin (1.5, 7.5 and 15 mg/kg, respectively). Compared to the control groups, the presence of 7.5 mg/kg and 15 mg/kg of morin significantly (p<0.05) increased the area under the plasma concentration-time curve (AUC) of nifedipine by 48.5${\sim}$68.2%, and the peak concentration (C$_{max}$,) of nifedipine by 59.9~84.2%. The absolute bioavailability(AB%) of nifedipine was significantly (p<0.05) increased by 21.5${\sim}$24.5% compared to the control (14.5%). While there was no significant change in the time to reach the peak plasma concentration (T$_{max}$) and the terminal half-life (T$_{1/2}$) of nifedipine in the presence of morin. It might be suggested that morin altered disposition of nifedipine by inhibition of both the first-pass metabolism and p-glycoprotein (P-gp) efflux pump in the small intestine of rats. In conclusion, the presence of morin significantly enhanced the oral bioavailability of nifedipine, suggesting that concurrent use of morin or morin-containing dietary supplement with nifedipine should require close monitoring for potential drug interaction.
The purpose of this study was to investigate the effect of coadministration and 3 days-pretreatmemt of niledipine (2, 10 mg/kg) on the pharmacokinetic parameters and bioavailability of paclitaxel (50 mg/kg) after oral administration in rats. Coadministration of nifedipine with paclitaxel did alter the $C_{max}$ (115${\pm}$29 ng/ml without nifedipine; 135${\pm}$35 ng/ml with nifedipine (10 mg/kg): p<0.05) and AUC (188${\pm}$459 ng/mlㆍhr with-out nifedipine; 2546${\pm}$642 ng/mlㆍhr with nifedipine; p<0.05). Three days treatment of nifedipine on the prior to paclitaxel administration increased the $t_{1/2}$ 〔9.90${\pm}$2.47 hr without nifedipine; 12.37${\pm}$3.12 hr with nifedipine (2 mg/kg): 12.83${\pm}$3.32 hr with nifedipine (10 mg/ml); p<0.05] and AUC [1833${\pm}$459 ng/mlㆍhr without nifedipine; 2663${\pm}$648 ng/mlㆍhr with nifedipine (2 mg/kg): 3006${\pm}$734 ng/mlㆍhr with nifedipine (10 mg/ml): p <0.05]. Drug interaction between nifedipine and paclitaxel decreased the elimination rate constant and increased the oral bioavailability of paclitaxel. On the basis of the results of this study, it might be considered that nifedip ine may inhibit cytochrome P450, which are engaged in paclitaxel metabolism, result in increased $t_{1/2}$ and AUC of paclitaxel. However, further study should be conducted to clarify the roles of cytochrome P450 and P-glycoprotein on paclitaxel bio-availability wit/or without nifedipine.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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