In the previous study(6), we constructed the CheY-OmpR hybrid, Chp, which affects the expressions of ompF and om pC genes. Here we further characterize these effects and present the regulatory mechanism based on in vivo and in vitro data. Although Chp retained the sequence-specific DNA-binding ability, it was not possible to enhance transcriptional activity, suggesting that it may act as a competitive inhibitor to OmpR. The DNA-binding affinity of Chp was not modulated by phosphorylation of its Che Y portion. Chp was able to increase ompR transcription. FurthemlOre, it was found that the wild-type OmpR also exerts the same effect, which is also eOlltrolled by changes in medium osmolarity and in EnvZ activity.
We investigated the safety, immunogenicity and protectivity of mix-crude outer membrane protein (cOMP) vaccine against salmonellosis in animals. The mix-cOMP vaccine was extracted from Salmonella enterica serovar Typhimurium (ST) and Salmonella enterica serovar Enteritidis (SE) and Salmonella enterica serovar Braenderup (SB) isolated from pigs. The mix-cOMP vaccine gave significantly higher antibody response than ST-bacterin and ST-cOMP vaccine in guinea pigs. The survival rates of mix-cOMP vaccinated groups showed significantly higher (100%) than those (0-20%) of unvaccinated control group, challenged with 3 species of Salmonella (ST, SE and SB) in mice. Vaccinated groups in pigs showed reduction of clinical signs, increase of average weight gains, decrease of bacterial recovery rates, compared with unvaccinated groups. Especially, the survival rates (100%) of vaccinated groups in chickens showed higher than that (0%) of unvaccinated group. Based on these results, we suggest that the mix-cOMP Salmonella vaccine developed in this study will be effective for the protection against Salmonellosis caused by the various serotypes Salmonella species in animals.
Salmonella enterica serovar typhi, a Gram-negative food-borne pathogen, causes typhoid fever in humans. OmpC is an outer membrane porin of S. typhi expressed throughout the infection period. OmpC is potentially an attractive antigen for multivalent vaccines and diagnostic kit designs. In this study we combined in silico, in vitro and in vivo approaches to analyze various aspects of OmpC's antigenic properties. The conserved region, in addition to secondary and tertiary structures, and linear B cell epitopes, were predicted. A number of results obtained from in silico analyses were validated by experimental studies. OmpC was amplified, cloned and then expressed, with the recombinant protein then being purified. BALB/c mice were immunized by purified denatured OmpC. The titer of antibody was raised. Results of challenges with the pathogen revealed that the immunity is non-protective. Most of the theoretical and experimental results were in consensus. Introduced linear B cell epitopes can be employed for the design of diagnostic kits based on antigen-antibody interactions.
Ray, Durga;Kim, Yeon Ha;Choe, unjeong;Kang, Ho Young
Journal of Life Science
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v.31
no.1
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pp.28-36
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2021
Edwardsiella piscicida is a significant cause of hemorrhagic septicemia in fish and gastrointestinal infections in humans. Survival bacteria require specialized mechanisms to adapt to environmental fluctuations. Hence, to understand the mechanism through which E. piscicida senses and responds to environmental osmolarity changes, we determined the protein expression profile and physiological properties under various salinity conditions in this study. The OmpR protein is a part of the Env-ZOmpR two-component system that has been implicated in sensing salt stress in bacteria. However, the physiological role played by this protein in E. piscicida remains to be elucidated. Therefore, in this work, the function of the OmpR protein in response to salt stress was investigated. Phenotypic analysis revealed that, in the mutant, three of the biochemical phenotypes were different from the wild type, including, citrate utilization, hydrogen sulfide, and indole production. Introduction of the plasmid containing the entire ompR gene to the mutant strain returned it to its parental phenotype. The retarded growth rate also partially recovered. Furthermore, in our studies, OmpR was not found to be related to cell motility. Taken together, our results from the mutational analysis, the growth assay, MALDI-TOF MS, qRT-PCR, and the phenotype studies suggest that the OmpR of E. piscicida is implicated in osmoregulation, growth, expression of porins (ETAE_1826), virulence-related genes (EseC, EseD and EvpC), and certain genes of unknown function (ETAE_1540 and ETAE_2706).
Omeprazole(OMP) complexes such as inclusion complexes of OMP with $hydroxypropyl-{\beta}-cyclodextrin$(HPCD) and ${\beta}-cyclodextrin({\beta}-CD)$, OMP-cholestyramine(CHL) and OMP-ethylenediamine(OMP-ED) were prepared, respectively. The partition coefficients in Witepsol H-15 /pH 7.4 phosphate buffer solution of OMP complexes$(OMP-HPCD;\;3.69{\pm}0.26,\;OMP-{\beta}-CD;\;4.08{\pm}0.21,\;OMP-CHL;\;4.36{\pm}0.25\;and\;omeprazole\;sodium(OMP-Na);\;3.64{\pm}0.37)$ were higher than that of OMP $(2.66{\pm}0.47)$. OMP was not completely dissolved until even 3 hrs, but all the OMP complexes studied were released about 100% in 20 min. The rectal suppositories containing OMP or each above OMP complex were prepared using Witepsol H-15 base, and their dissolution and stability were examined, and pharmacokinetic study were investigated after their rectal administrations to the rabbits. While the suppository containing OMP was released only less than 60% in 150 min, $OMP-{\beta}-CD$, OMP-CHL, OMP-Na and OMP-ED suppositories were all released about 65% in 20 min. Especially, OMP-HPCD suppository released OMP about 70% in 10 min. All the additives such as sodium laurylsulfate, eglumine, arginine and PVP increased drug release from OMP-HPCD suppository to some extent. The decomposition rate constants of OMP in the suppositories were $9.117{\times}10^{-3}\;day^{-l}$ for OMP suppository, $2.121{\times}10^{-2}$ for OMP-HPCD, $1.607{\times}10^{-2}$ for $OMP-{\beta}-CD$, $9.26{\times}10^{-3}$ for OMP-Na, $6.769{\times}10^{-3}$ for OMP-CHL and $5.58{\times}10^{-3}\;day^{-l}$ for OMP-ED suppository, respectively. Additives such as arginine, eglumine and ED had some stabilizing effect for OMP-HPCD, OMP-CHL and OMP-Na suppositories, respectively. After 6 month-storage at $30^{\circ}C$, 75% RH, OMP-CHL suppository was most stable. The values of Tmax for OMP-HPCD and OMP-Na suppositories were $11.7{\pm}2.36\;and\;11.4{\pm}2.56\;min$, respectively. The values of Cmax for OMP-HPCD and OMP-CHL suppository were $2.31\;{\mu}g/ml\;(p<0.01)\;and\;1.89\;{\mu}g/ml\;p<0.01)$, respectively. The values of AUC for OMP and $OMP-{\beta}-CD$ suppository were $61.9{\pm}25.79\;and\;68.6{\pm}29.48\;{\mu}g\;{\cdot}\;min/ml$, and the corresponding values for OMP-HPCD and OMP-CHL were $106.1{\pm}43.16\;(p<0.05)\;and\;127.3{\pm}42.52\;{\mu}g\;{\cdot}\;min/ml(p<0.01)$, respectively. The above results indicate the OMP-HPCD and OMP-CHL suppositories have the excellent bioavailabilties in vivo study.
A new system for displaying proteins on the surface of Escherichia coli was developed using the Salmonella typhimurium outer membrane protein C (OmpC) as an anchoring motif. The C-terminal deletionfusion strategy was developed to fuse the polyhistidine peptides and green fluorescent protein (GFP) to the Cterminal of the truncated functional portion of OmpC. The polyhistidine peptides of up to 243 amino acids could besuccessfully displayed on the E. coli cell surface, which allowed recombinant E. coli to adsorb up to 34.2 μmol of Cd2+ per gram dry cell weight. The GFP could also be successfully displayed on the E. coli cell surface. These results suggest that the C-terminal deletion-fusion strategy employing the S. typhimurium OmpC as an anchoring motif provides a new efficient way for the display of large proteins on the surface of E. coli.
Antibiotic resistance is often associated with the production of inner membrane proteins (for example, AcrAB/TolC efflux pump) that are capable to extrude antibiotics, detergents, dyes and organic solvents. In order to evaluate the unknown MarB function of Escherichia coli, especially focused on the function of OmpF porin, several mutants were construted by T4GT7 transduction. MarA plays a major roles in mar (multiple antibiotic resistance) phenotype with AcrAB/TolC efflux pump in E. coli K-12. Futhermore, MarA decreases OmpF porin expression via micF antisense RNA. Expression of acrAB is increased in strains containing mutation in marR, and in those carrying multicopy plasmid expressing marA. MarB protein of E. coli K-12 showed its activity at OmpF porin & TolC protein as target molecule. Some paper reported MarB positively regulates OmpF function. MarA shows mar phenotype, and MarB along with MarA show decreased MIC through OmpF function. By this experiment, MarB could decrease MIC through the OmpF porin & TolC protein as target.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1995.04a
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pp.133-133
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1995
각종 OMP 복합체들은 OMP에 비해 용해도가 2.7-12.0배 증가하였으며, 모두 10분 이내에 85% 이상이 용출되어 용출규정에 적합하였고 pH 및 습도에 따른 안정성 결과도 OMP에 비해 각종 OMP 복합체가 안정성이 증가되었다. OMP-cholestyramine 수지염의 경우 온도, 습도 및 수용액 중에서의 안정성 모두 OMP에 비하여 향상되었으며, 4$0^{\circ}C$, RH 75%의 가혹조건에서도 OMP pellet에 비해 OMP-cholestyramine 수지염 pellet이 안정성과 내산성이 매우 우수하였다.
We have developed a constitutive display system of the Pseudomonas fluorescens SIK W1 TliA lipase on the cell surface of Escherichia coli using E. coli outer membrane protein C (OmpC) as an anchoring motif, which is an economical compared to induced system. For the constitutive expression of truncated OmpC-TliA fusion proteins, gntT104 promoter was employed. Cell growth was not affected by over expression of fusion protein during entire culture time, suggesting cell lysis was not a problem. The localization of truncated OmpC-TliA fusion protein on the cell surface was confirmed by immunofluorescence microscopy and measuring whole cell lipase activity. Constitutively displayed lipase was very stable, retaining activity enantioselectivity throughout the five repeated reactions. These results suggest that OmpC from E. coli be a useful anchoring motif for displaying enzymes on the cell surface without any inducers, and this stable surface display system can be employed for a broad range of biotechnological applications.
Porin proteins of Gram-negative bacteria are outer membrane proteins that act as receptors for bacteriophages and are involved in a variety of functions like solute transport, pathogenesis, and immunity. Salmonella enterica serovar Typhi (S. Typhi), a Gram-negative bacterium, is the causative agent of typhoid fever. Porins of S. Typhi have been shown to have a potential role in diagnostics and vaccination. In the present study, the major outer membrane proteins OmpF and OmpC from S. Typhi were cloned in pQE30UA vector and expressed in E. coli. The immunogenic nature of the recombinant porin proteins were evaluated by ELISA by raising hyperimmune sera in Swiss Albino mice with three different adjuvants (i.e., Freund's adjuvant and two human-compatible adjuvants like montanide and aluminium hydroxide gel) and proved to be immunogenic. The recombinant OmpF and OmpC generated in this work may be used for further studies for vaccination and diagnostics.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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