An endogenous 17-6a inhibitor of Caa+_activated protease has been purified from neo-plastic tissues of human stomach using heat treahent and conventional chromatographir procedures. It appears to consist of a single polvpeptide since the same molecular weight was obtained by both gel fntration under nondenaturing condition and gel electrophoresis in the presence of SDS. Since the size of the inhibitor or is the smallest amens those reported so far, it may represent a functional unit for inhibiting Caa+_activated protease. This protein is also capable of inhibiting the protease isolated loom chick skeletal muscle. Thus, the functional unit of the inhibitor most well be conserved during evolution. Howrver, it remains unclear what may be the physiological significance of the presence of the Iow-molecular weight form of the inhibitor in neoplastic tissues of human stomach. 사람의 위암조직으로부터 Ca2)_activated protease을 저해하는 단백질을 열처리 및 여러 크로마토그라피 방법을 이용하여 순수분리 하였다. 이 저해단백질은SDS-전기영동카자1 filtra-tion의 방법에 의하여 그 분자량이 17 kDa으로 나타남으로 보아 단일 Polypeptide로 구성되어 있음을 알 수 있었다. 이 저해 단백질의 분자량은 지금까지 알려진 CaB+_activated protease의 저해단백질에 비하여 가장 작은 것이었다. 따라서, 이 단.백질은 Ca2)에 의하여 활성화되는 단백질 분해효소의 작용을 저해하는 기능적 단위로 추측되었다. 한편, 이 저해제는 계 골격근에서 추출한 Ca2+ _activated protease의 촹성 도 억제 하는 것으로 나타났다. 이러 한 결과는 이 저 해 단백질의 기능적 단위가 진화과정 동안 오래 보존되어 왔음을 시사한다. 그러나, 사람의 위암조직에서 이 저해제가 무슨 이유로 가장 작은 분자량의 단백질로 존재하는지에 대한 생리학적 중요성에 관한 문제는 앞으로 많이 연구되어져 야 할 것이다.
Vibrio parahaemolyticus is a halophilic bacterium associated with seafood gastroenteritis. An unusual strain of Kanagawa-positive urease producing Vibrio parahaemolyticus O1:K1 was isolated from the environment and identified . A polymerase chain reaction assay revealed that this strain harbored both the tdh and the genes. The urease from this strain was studied. Maximum urease production was induced in LB medium containing 0.2% urea, 0.5% glucose, 2% NaCl and pH 5.5 with 6h of culti-vation at 37$\^{C}$ under aeration. Purification of urease was achieved by the process of whole cell lysate, 65% ammonium sulphate precipitation, DEAE-cellulose ion exchange column chromatography, Sepharose CL-6B gel filtration and oxirane activated Sepharose 6B-urea affinity chromatography with 203 fold purification and 2.2% yield. Analysis of the purified enzyme by SDS-PAGE demonstrated the presence of the subunits with a molecular weight of 85kDa, 59kDa, 41kDa and the molecular weight for the native enzyme by nondenaturing PAGE and gel filtration chromatography was 255kDa. The purified urease was stable at pH 7.5 and the opeimal pH in HEPES buffer was 8.0 The enzyme was stable at 60$\^{C}$ for 2 h with a residual activity of 32% . The addition of 10$\mu$M if NiCl$_2$maintained stability for 30 min. The Km value of the purified enzyme was 35.6 mM in urea substrate. The TD$\_$50/(median toxic dose) of the purified urease was 2.5$\mu\textrm{g}$/ml on human leukemia cells.
A Chemoautotroph identified as an Aeromonas sp. strain JS-1 was isolated from fresh water. Aeromonas sp. strain JS-1 used the $H_2$ and $CO_2$ as energy and carbon sources, respectively. Growth characteristics for improving the $CO_2$ fixation rate were examined in batch cultivation. Its results shown that the optimal growth appeared at culture conditions of $35^{\circ}C$, pH 7 and NaCl 0.1%(w/v). Some hydrogen-oxidizing bacteria were reported that the enzyme activity of ribulose 1,5-bisphosphate carboxylase- oxygenase (RubisCO-EC 4.1.1.39), in the key enzyme of the Calvin-Benson cycle. A RubisCO was purified from a chemoautotrophic bacterium, Aeromonas sp. strain JS-1. the enzyme was purified by ammonium sulfate precipitation, DEAE-sepharose CL-6B and gel filtration chromatography. The RubisCO showed that molecular mass was about 560KDa from gel filtration chromatography and nondenaturing PAGE, and the RubisCO was confirmed to consist of $L_8S_8$ enzyme structure by sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis. A large subunit was about 56KDa and small one was about 15kDa. The Km values of the enzyme for ribulose 1,5-bisphosphate(RUBP), $NaH^{14}CO_3$, and $Mg^{++}$ were estimated to be 0.25mM, 5.2mM, and 0.91mM, respectively. The optimum temperature for RubisCO enzymatic activity were $50^{\circ}C$, and the enzymatic activity was stable up to $45^{\circ}C$.
Band 3, the predominent 95,000 dalton anion transport protein, is the major intrinsic glycoprotein of the human erythrocyte membrane. This anion carrier exists as a dimer and binds the cytoskeletons such as spectrin, ankyrin and actin. And the liposomes are vesicular structures which form spontaneouly upon hydration of phospholipids. These artificial lipid vesicles have been investigated as model of the biological membranes and as a mean of improving the delivery of nucleic acids, drugs, proteins and biological substances to specific target tissues and cells. In this study, we were purified Band 3 from the human erythrocyte membrane(ghost) was prepared by hemolysis of intact human erythrocyte with weak alkali-hypotonic solution. Band 6 was removed from ghost by extracting with solution of an ionic strength of 0.15. Band 3 and Band 4 were solubilized selectively by extracting Band 6-depleted ghosts with Triton X-100 under nondenaturing conditions. Band 3 was then purified from Triton X-100 extract treated with p-chloromercuribenzoate by sucrose density gradient ultracentrifugation. This purified Band 3 was incorporated into liposomes prepared by reverse-phase evaporation. Phosphatidyl L-serine and cholesterol(1 : 1 molar ratio) were dissolved in chloroform and then chloroform was removed by rotatory evaporation under reduced pressure. Band 3 solution without Triton X-100 was introduced into a mixture of lipids and diethylether. Diethylether was subsequently removed by evaporation. This purified Band 3 and its incorporation into liposomes were confirmed by sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis.
The culture conditions to maximize the production of endoglucanase (EC 3.2.1.4) from the brown rot fungus Fomitopsis pinicola MKACC 54347 mycelia were investigated. Among the tested media for endoglucanase production, Mandel's mineral salts medium (MSM; 1% cellulose, 0.1% peptone, 0.14% $(NH_4)_2SO_4$, 0.03% urea, 0.2% $KH_2PO_4$, 0.03% $MgSO_4{\cdot}7H_2O$, 0.03% $CaCl_2$, and 0.1% trace metal solution (19.8 mM $FeSO_4$, 13.0 mM $MnSO_4$, 12.2 mM $ZnSO_4$, and 15.4 mM $CoCl_2$)) produced the highest activity of the enzyme. To optimize the medium composition for enzyme activity, the effects of various carbon, nitrogen, phosphorus, and inorganic sources were investigated in MSM. Maximal enzyme production was accomplished using a medium containing 2% carboxymethyl cellulose (CMC), 2% yeast extract, 0.2% $KH_2PO_4$, 0.03% $MnSO_4$, and 0.3% trace metal solution. Different physiological conditions, like incubation period and temperature, were also examined to assess their influence on enzyme production. Enzyme production from F. pinicola reached its highest level after cultivation for 8 days at $25^{\circ}C$. Nondenaturing polyacrylamide gel electrophoresis (PAGE), followed by the endoglucanase activity staining using CMC as the substrate, was performed to identify the endoglucanase under the culture conditions studied. Zymogram analysis of the culture supernatant revealed an endoglucanase band with a molecular mass of 52 kDa. The optimum pH and temperature for enzyme activity were $55^{\circ}C$ and pH 5.0, respectively.
There was a great variation in insecticide susceptibilities among field and laboratory populations of the beet armyworm, Spodoptera exigua (Hiibner). Unselected laboratory population, which had been reared for 6-7 generations in our laboratory without exposure to insecticides, was more susceptible than its parental field population in all tested insecticides. Two selected laboratory populations with parathion or deltamethrin showed much higher insecticide tolerance than did the unselected laboratory population in their own selection insecticide. The variation of the insecticide susceptibilities was highly correlated with esterase and acetylcholinesterase activities. Field and the selected laboratory populations had lower acetylcholinesterase activities and higher esterase activities than did the unselected laboratory population. Acetylcholinesterase of the field and the selected laboratory populations had higher Km values than did that of the unselected. In a population, Km values were varied among different developmental stages; acetylcholinesterase of the fifth instar larvae had the highest Km value among those of the other larval stages. Twenty one esterase bands were separated on 6.5% nondenaturing polyacrylamide gel from the whole body extracts of the fifth instar larvae. E2, E7, E8, Ell, El6, and El7 esterase bands were developed more frequently in the insecticides-selected populations than in the unselected population. These results suggest that the variation of insecticide susceptibilities of the beet armyworm includes both biochemical mechanisms: target site insensitivity and enhanced activity of detoxification enzyme.
The effect of physiological factors of beet armyworm, Spodoptera exigua (Hubner), on esterase variation was analyzed by comparing electrophoretic esterase isozymes. Each esterase isozyme was also characterized by substrate and inhibitor specificities. A total of 28 esterase isozymes were separated on 10% nondenaturing polycarylamide gel electrophoresis (PAGE). These isozymes were denoted from El to E28 according to cathodal migration distances. There was a variation in esterase isozymes among developmental stages. Larvae and pupae had more isozymes than did adults. Eggs had only eight isozymes. The isozymes of El and E2 were specific only in the first instar larvae. Esterases also showed variation according to different tissues. More kinds of esterase isozymes were found in epidermis and gut tissues than in hemolymph and fat body. Some isozymes were specific in epidermis (from El to E6), gut (E10, El 1, E25, E26, and E27), and hemolymph (E18). Among 10 naphthyl esters, a-naphthyl propionate was the most reactive substrate to the esterase isozymes. The isozymes were classified into cholinesterases (El0 and E24), arylesterases (E4, E9, E17, E19, E21, and E23), and carboxylesterases (the others) on the basis of inhibition by the esterase inhibitors-eserine, dichlorovos, moncrotophos, and paraoxon.
Ferritin is known to be the principle iron-storage protein in a wide variety of rganisms. The electrophoretic mobility and immunological cross-reactivity of dog splenic ferritin were compared with those of horse, bovine, and pig splenic ferritin after isolation using heat treatment, salting out, column chromatography, and ultrafiltration. These isolation methods allowed the recovery of $\~84{\mu}g$ of the ferritin per g of spleen. The iron content in the dog ferritin was $22.7\%$, which appeared to be higher than those in the other mammalian ferritins tested. The electrophoretic mobility of the dog ferritin under nondenaturing conditions was similar to its bovine counterpart, whereas it was more identical to pig and horse ferritins on an SDS-polyacrylamide gel. The molecular weight of the dog ferritin subunit was 19.5 kDa on an SDS-polyacrylarnide gel, and the subunit was unable to bind with iron. The polyclonal anti-dog ferritin raised in rats was able to cross-react with the pig, bovine, and horse ferritins, upon Ouchterlony double immunodiffusiion. A Western blot analysis also revealed that the anti-dog ferritin, which specifically bound with the dog ferritin subunit, could also recognize the horse, bovine, and pig ferritin subunits and the maximum cross-reactivity was exhibited with the pig ferritin subunit, indicating that the dog ferritin is immunochemically more similar to the pig ferritin than its other mammalian counterparts. Accordingly, these results elucidate the biochemical and immunochemical characteristics of dog ferritin that might have a potential to be applied as an oral iron supplement to treat iron deficiency anemia.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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