The enantioselective aza-Morita Baylis Hillman reaction of nitroalkene and N-tosylimine catalyzed by thiourea-tertiary amine has been investigated using density functional theory. Enantioselectivity is dominated by the cooperative effect of non-covalent and weak covalent interactions imposed by different units of catalyst. As Lewis base, the tertiary amine unit activates nitroalkene via weak covalent bond. The weak covalent interaction orients the reaction in a major path with smaller variations of this bond. The aromatic ring unit activates N-tosylimine via ${\pi}-{\pi}$ stacking. The non-covalent interaction selects the major path with smaller changes of the efficient packing areas. Thiourea unit donates more compact H-bonded network for species of the major path. The calculated ee value in xylene solution phase (97.6%) is much higher than that in N,N-Dimethylformamide (27.2%). Our conclusion is also supported by NBO analysis.
Autodisplay of a multimeric protein complex on a cell surface is limited by intrinsic factors such as the types and orientations of anchor modules. Moreover, improper folding of proteins to be displayed often hinders functional cell surface display. While overcoming these drawbacks, we ultimately extended the applicability of the autodisplay platform to the display of a protein complex. We designed and constructed a cell surface attachment (CSA) system that uses a non-covalent protein-protein interaction. We employed the high-affinity interaction mediated by an orthogonal cohesin-dockerin (Coh-Doc) pair from Archaeoglobus fulgidus to build the CSA system. Then, we validated the orthogonal Coh-Doc binding by attaching a monomeric red fluorescent protein to the cell surface. In addition, we evaluated the functional anchoring of proteins fused with the Doc module to the autodisplayed Coh module on the surface of Escherichia coli. The designed CSA system was applied to create a functional attachment of dimeric α-neoagarobiose hydrolase to the surface of E. coli cells.
In this work, we discuss where the failure of Kohn-Sham Density Functional Theory (DFT) occurs in weak interactions. We have adopted density-corrected density functional calculations and dispersion correction separately to find out whether the failure is due to density-driven error or functional error. The results of Benzene Ar complex, one of the most common examples of van der Waals interactions, show that DFT calculations of van der Waals interaction suffer from functional error, rather than density-driven error. In addition, errors in DFT calculations of the S22 dataset, which contains small to relatively large (30 atoms) complexes with non-covalent interactions, are governed by functional errors.
The monomer and dimer structures of the amyloid fragment Aβ(1-16) sequence formed in H2O were investigated using electrospray ionization mass spectrometry (MS) and tandem MS (MS/MS). Aβ16 monomers and dimers were indicated by signals representing multiple proton adduct forms, [monomer+zH]n+ (=Mz+, z = charge state) and [dimer+zH]z+ (=Dz+), in the MS spectrum. Fragment ions of monomers and dimers were observed using collision-induced dissociation MS/MS. Peptide bond dissociation was mostly observed in the D1-D7 and V11-K16 regions of the MS/MS spectra for the monomer (or dimer), regardless of the monomer (or dimer) charge state. Both covalent and non-covalent bond dissociation processes were indicated by the MS/MS results for the dimers. During the non-covalent bond dissociation process, the D3+ dimer complex was separated into two components: the M1+ and M2+ subunits. During the covalent bond dissociation of the D3+ dimer complex, the b and y fragment ions attached to the monomer, (M+b10-15)z+ and (M+y9-15)z+, were thought to originate from the dissociation of the M2+ monomer component of the (M1++M2+) complex. Two different D3+ complex geometries exist; two distinguished interaction geometries resulting from interactions between the M1+ monomer and two different regions of M2+ (the N-terminus and C-terminus) are proposed. Intricate fragmentation patterns were observed in the MS/MS spectrum of the D5+ complex. The complicated nature of the MS/MS spectrum is attributable to the coexistence of two D5+ configurations, (M1++M4+) and (M2+M3+), in the Aβ16 solution.
The ${\pi}-{\pi}$ interactions of the peptide-dimer and peptide-trimer complexes were investigated in the (VQIVYK + LYQLEN) and (VQIVYK + NNQQNY) mixing solutions. The results showed that tyrosine (Y) residues were critical in the formation of hetero peptide-dimers and -trimers during the early oligomerization process. We used collision-induced dissociation (CID) along with electrospray ionization mass spectroscopy (ESI-MS) to obtain the structural information of the hetero-dimers and -trimers. We chose three amyloidogenic peptides-VQIVYK, NNQQNY, and LYQLEN-from tau protein, yeast prion-like protein Sup35, and insulin chain A, respectively. Hetero-dimer, -trimer, -tetramer, and -pentamer complexes were observed in the mass spectra. The tandem mass spectrum of the hetero-dimer and hetero-trimer showed two different fragmentation patterns (covalent and non-covalent bond dissociation). Y-Y interaction structures were also proposed for the hetero-dimer and -trimer complexes.
The oligomerization of G-proteincoupled receptors (GPCRs) has been shown to occur by various mechanisms, such as via disulfide covalent linkages, non covalent (ionic, hydrophobic) interactions of the N-terminal, and/or transmembrane and/or intracellular domains. Interactions between GPCRs could involve an association between identical proteins (homomers) or non-identical proteins (heteromers), or between two monomers (to form dimers) or multiple monomers (to form oligomers). It is believed that muscarinic receptors may also be arranged into dimeric or oigomeric complexes, but no systematic experimental evidence exists concerning the direct physical interaction between receptor proteins as its mechanism. We undertook this study to determine whether muscarinic receptors form homomers or a heteromers by direct protein-protein interaction within the same or within different subtypes using a yeast two-hybrid system. Intracellular loops (i1, i2 and i3) and the C-terminal cytoplasmic tails (C) of human muscarinic (Hm) receptor subtypes, Hm1, Hm2 and Hm3, were cloned into the vectors (pB42AD and pLexA) of a two-hybrid system and examined for heteromeric or homodimeric interactions between the cytoplasmic domains. No physical interaction was observed between the intracellular domains of any of the Hm/Hm receptor sets tested. The results of our study suggest that the Hm1, Hm2 and Hm3 receptors do not form dimers or oligomers by interacting directly through either the hydrophilic intracellular domains or the C-terminal tail domains. To further investigate extracellular domain interactions, the N-terminus (N) and extracellular loops (o1 and o2) were also cloned into the two-hybrid vectors. Interactions of Hm2N with Hm2N, Hm2o1, Hm2o2, Hm3N, Hm3o1 or Hm3o2 were examined. The N-terminal domain of Hm2 was found to have no direct interaction with any extracellular domain. From our results, we excluded the possibility of a direct interaction between the muscarinic receptor subtypes (Hm1, Hm2 and Hm3) as a mechanism for homo- or hetero-meric dimerization/oligomerization. On the other hand, it remains a possibility that interaction may occur indirectly or require proper conformation or subunit formation or hydrophobic region involvement.
The mechanism of interaction of cyanocobalamin (CB) with bovine serum albumin (BSA) has been investigated by spectrofluorometric and circular dichroism methods. Association constant for the CB-BSA system showed that the interaction is non-covalent in nature. Binding studies in the presence of an hydrophobic probe, 8-anilino-l-naphthalene sulphonic acid, sodium salt (ANS) showed that there is hydrophobic interaction between CB and ANS and they do not share common sites in BSA. Stern-Volmer analysis of fluorescence quenching data showed that the fraction of fluorophore (protein) accessible to the quencher (CB) was close to unity indicating thereby that both tryptophan residues of BSA are involved in drug-protein interaction. The rate constant for quenching, greater than $10^{10}$$M^{-1}$$s^{-1}$, indicated that the drug binding site is in close proximity to tryptophan residue of BSA. Thermodynamic parameters obtained from data at different temperatures showed that the binding of CB to BSA involves hydrophobic bonds predominantly. Significant increase in concentration of free drug was observed for CB in presence of paracetamol. Circular dichroism studies revealed the change in helicity of BSA due to binding of CB to BSA.
Trehalose-tethered monomeric and dimeric berberines were synthesized in 50% and 30% from the reaction of berberrubine with 6-tosyl-${\alpha}$,${\alpha}^{\prime}$-trehalose and 6,6'-ditosyl-${\alpha}$,${\alpha}^{\prime}$-trehalose, respectively, and fully characterized by MS (HR and ESI) and NMR ($^1H$, $^{13}C$, COSY and HSQC). Spectrophotometric and spectrofluorimetric titrations indicated that compared with berberine, trehalose-tethered monomeric berberine had comparable DNA-binding affinity toward calf-thymus DNA, whereas trehalose-spaced dimeric berberine exhibited higher DNA-binding affinity. The potential application of these conjugates is also briefly discussed.
The reportedly synergistic effects of carbon nanotubes (CNTs) and graphene hybrids have prompted strong demand for an efficient modifier to enhance their dispersion. Here, we investigated the ability of poly(acrylonitrile) (PAN) to overcome the van der Waals interaction of multi-walled CNTs (MWCNTs) and graphene by employing a simple wrapping process involving ultrasonication and subsequent centrifugation of PAN/MWCNT/graphene solutions. The physical wrapping of MWCNTs and graphene with PAN was investigated for various PAN concentrations, in an attempt to simplify and improve the polymer-wrapping process. Transmission electron microscopy analysis confirmed the wrapping of the MWCNTs and graphene with PAN layers. The interaction between the graphitic structure and the PAN molecules was examined using proton nuclear magnetic resonance, ultraviolet-visible spectroscopy, Fourier transform infrared spectroscopy, thermogravimetric analysis, and Raman spectroscopy. The obtained results revealed that the cyano groups of the PAN molecules facilitated adhesion of the PAN molecules to the MWCNTs and graphene for polymer wrapping. The resulting enhanced dispersion of MWCNTs and graphene was verified from zeta potential and shelf-life measurements.
von Willebrand factor (vWF) is a multimeric glycoprotein which functions within the coagulation system. It colocalizes with factor VIII (FVIII) by non-covalent interaction and alters its intracellular trafficking. vWF is also instrumental in maintaining the stability of secreted FVIII. The principal objective of this study was to generate a lentivirus-based vWF expression vector for gene therapy of hemophilia A. We inserted a vWF of 8.8 Kb into a lentiviral vector thereby producing VSV-G-pseudotyped vEx52. However, its titer was quite low, presumably because the length of vWF gene exceeds the size limit of the lentiviral vector. In order to overcome the low-titer, we concentrated the vEx52 and thus increased the efficiency of transduction approximately 6-fold with $1/100^{th}$ of the volume. However, as concentration requires an additional laborious step, we attempted to enhance the transduction efficiency by deleting exons 24-46 and 29-46 in pRex52 to construct pRex23 and pRex28, and in pvEx52, yielding pvEx23 and pvEx28, respectively. The transfected pRex52 had a profound effect on the activity of secreted FVIII, and this activity declined as domains of vWF were deleted. However, when the domain-deleted vWF-lentiviruses were transduced into K562 cells, the vEx28 increased the activity of the secreted FVIII compared to what was observed with vEx52. This result is probably due to higher efficiencies of transduction and expression while retaining the essential domains required for proper interaction with FVIII.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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