To study influence of carbonmonoxide (CO) poisoning on the content of amino acid neurotransmitter in brain, male rat was exposed to CO 5000 ppm for 30 minutes (60-75% HbCO). Aspartic acid and glutamic acid level in the cerebral cortex and aspartic acid level in the striatum were significantly decreased. GABA level in the cerebral cortex was significantly increased after the 30 and 60 minutes of CO intoxication. Taurine level in both the cerebral cortex and the striatum was increased although nonsignificant. Consequently, the CO-induced hypoxia brain showed lower level of excitatory neurotransmitter, aspartic acid and glutamic acid and higher level of inhibitory neurotransmitter, GABA and taurine. These results suggest that the change in content of amino acid neurotransmitter in the rat brain may be concerned with several CO poisoning symptoms.
This study aimed to investigate whether neurotransmitter receptors in the nervous system were also expressed in oral keratinocytes. Expressions of various neurotransmitter receptor genes in immortalized mouse oral keratinocyte (IMOK) cells were examined by reverse transcriptase polymerase chain reaction. IMOK cells expressed calcitonin gene-related peptide (CGRP) receptor subunit genes Ramp1 and Ramp3 and glutamate receptor subunit genes Grina, Gria3, Grin1, Grin2a, and Grin2d. Moreover, IMOK cells expressed Adrb2 and Chrna5 that encode beta 2 adrenergic receptor and cholinergic receptor nicotinic alpha 5 for sympathetic and parasympathetic neurotransmitters, respectively. The expression of Bdkrb1 and Ptger4, which encode receptors for bradykinin and prostaglandin E2 involved in inflammatory responses, was also observed at low levels. Expressions of Ramp1 and Grina in the mouse gingival epithelium were also confirmed by immunohistochemistry. When the function of neurotransmitter receptors expressed on IMOK cells was tested by intracellular calcium response, CGRP, glutamate, and cholinergic receptors did not respond to their agonists, but the bradykinin receptor responded to bradykinin. Collectively, oral keratinocytes express several neurotransmitter receptors, suggesting the potential regulation of oral epithelial homeostasis by the nervous system.
Journal of the Institute of Convergence Signal Processing
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v.14
no.4
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pp.222-230
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2013
Retinal bipolar cells according to the light stimulus respond to potential slowly, emit neurotransmitter release(glutamine acid) to depend on membrane potential. In this paper, the several physiological information on neurotransmitter release mechanism in the presynaptic terminal of the ON-type bipolar cells are incorporated into the formula model. The source of fast components and slow components of neurotransmitter release was arranged in parallel, this model was able to reproduce the membrane potential and intracellular $Ca^{2+}$ concentration dependence of neurotransmitter release faithfully. In addition, because the fast releasable components of neurotransmitter was represented by the membrane potential dependence of trapezoid type, whereas the slow releasable components was represented by the membrane potential dependence of a bell type, $Ca^{2+}$ concentration rise in intracellular is suppressed by $Ca^{2+}$ buffer to reduce slow releasable components, it was confirmed that the membrane potential dependence of neurotransmitter release was characteristics of a trapezoid type. And, in the light response of ON type bipolar cell, the result of the simulation of the neurotransmitter release caused by the components of transient and persistent was that the start of light response occurred the fast release of neurotransmitter, it was confirmed that the transient component and persistent component of the light response occurred the slow release. It was confirmed that the later of persistent component of the light response occurred due to the continuous release by synaptic vesicle supplemented from the storage pool.
There is evidence that cholesterol in the brain plays an important role in the neurotransmitter release. A decrease of the cholesterol level severely hampers the activity of the membrane fusion machinery, thereby inhibiting the release. Meanwhile, the results from several clinical studies suggest that a low cholesterol level is linked to the dysfunction of some brain activities. Because the neurotransmitter release underlies the basic brain function, the combined results lead to a testable hypothesis that the cholesterol-lowering drugs may inhibit the neurotransmitter release at the synapse. Such inhibition of the release could result in impaired brain function for a limited group of people. A molecular basis for the hypothesis is discussed.
Translationally controlled tumor protein (TCTP) activates basophils to release histamine and causes chronic inflammation. It was also reported that TCTP significantly reduced in brain of Alzheimer's Disease and Down Syndrome as compared to normal person, suggesting that TCTP might be involved in cognitive function. We wondered whether TCTP could act as a general inducer in neurotransmitters release in brain. We, therefore, investigated the role of TCTP in PC12 cell line which expressed neuronal properties. We found that TCTP could activate JNK, and the activity was inhibited by pretreatment of dicoumarol, a JNK inhibitor. However, TCTP could not activate ERK that has known to be involved in neurotransmitter release. These suggest TCTP did not participate in neurotransmitter release from PC12 cells, and TCTP might not be a general inducer in neurotransmitter release.
Vasoactive intestinal peptide (VIP) is a very potent dilatator and a nonadrenergic, noncholinergic (NANC) neurotransmitter or neuromodulator in the peripheral and the central nervous systems. The mechanisms of action of VIP were examined in aortic circular and in uterine longitudinal smooth muscle strips of the rat. The effects of sympathetic neurotransmitter were investigated in gastric and aortic circular muscle strips of the mouse and the rat. The effects of silver spike point, SSP, low frequency electrical stimulations of VIP, sympathetic neurotransmitter and $\beta$-endorphin were examined in plasma, serum and 24h urine from the healthy volunteer. In gastric smooth muscle strips from the mouse, adrenergic neurotransmitter norepinephrine was inhibitory effected, followed by caused phasic and tonic contraction to the, muscrine receptor agonist carbachol and acetylcholine, respectively. In urine from the healthy volunteer, both norepinephrine and epinephrine were significantly decreased in continue type and low frequency (3 Hz) of SSP electrical stimulations. The contractile responses to S-HT in uterine longitudinal smooth muscle strips of the rats were completely decreased by a VIP 1 $\mu$M. The contractile responses to PGF2$\alpha$ were not decreased by a VIP. In plasma and serum from the healthy volunteer, both VIP and $\beta$-endorphin were significantly increased in continue type and low frequency (3 Hz) of SSP electrical stimulations. Therefore, this study demonstrate that VIP has the capacity to relax vascular or gastric smooth muscles in part by stimulating the generation of NO, and silver spike point low frequency electrical stimulation has the capacity both to decrease sympathetic neurotransmitters and to increase VIP, $\beta$-endorphin.
We established an in vitro experimental system using the following procedure. We first introduced tritium-labelled norepinephrine ([3H]-NE)into PC12 cells. The [3H]-NE incorporated into PC12 cells were then stimulated by a high concentration (60 mM) of $K^+$ during 12 minutes. Then, we counted the amount of [3H]-NE release from PC12 cells with the scintillation counter. After screening fungal, Streptomyces or bacterial product using this experimental system, we obtained S9940 from Streptomyces spp. which inhibited [3H]-NE release from PC12 cells. S9940 also inhibits the release of ATP as a neurotransmitter of PC12 cells and rat cortical neurons. The inhibitory effect was seen even when the PC12 cells were treated with low $K^+$ buffer containing ionomycin $(1\muM)$ as an ionopore. This result suggests that the inhibitory action of S9940 on neurotransmitter release appeared after the influx of $Ca^{2+}$.
The effects of toluene inhalation on the contents of amino acid neurotransmitters in rat brain were investigated and blood toluene concentrations inducing changes of behavior and amino acid neurotransmitter contents in rat brain were observed. Male wistar rats were exposed to toluene vapor (single dose : 1700, 5000 and 10000 ppm for 2 hrs, repeated dose : 1700 and 5000 ppm for 2 hrs/day$\times$6 days). Toluene concentrations in blood and the inhalation chamber were assayed by GC with headspace sampler. HPLC method following PITC derivatization was used to measure the amino acid contents in brain tissues such as frontal cortex, caudate, hippocampus, cerebellum and brain stem. Glutamic acid and aspartic acid levels were increased by single inhalation of toluene (5000 ppm) in all the brain areas assayed in this experiment. In caudate and cerebellum, taurine levels were decreased by single inhalation of low dose toluene (1700 ppm), but increased by repeated administration. At high blood toluene concentration, GABA levels were increased in all the brain areas assayed in this experiment and the increasing extents of inhibitory amino acid contents measured in caudate and hippocampus were greater than those of excitatory amino acids. These results suggest that the changes of amino acid neurotransmitter contents in brain by exposure to toluene may modulate toluene-induced behaviors.
We established an in vitro experimental system using the following procedure. We first introduced tritium-labeled norepinephrine ([$^3$H]-NE) into PC12 cells, The [$^3$H]-NE incorporated into PC12 cells were then stimulated by a high concentration (60 mM) of $K^+$ buffer during 12 minutes. Then, we collected $100{\mu}l$ supernatant and counted the amount of [$^3$H]-NE release from PC12 cells with a scintillation counter. After screening fungal, Streptomyces spp. or bacterial product using this experimental sytem, we obtained FS11052 from Streptomyces spp. which inhibited [$^3$H]-NE release from PC12 cells. FS11052 also inhibits the release of ATP as a neurotransmitter of PC12 cells and rat cortical neurons, The inhibitory effect was seen even when the PC12 cells were treated with low $K^-$ buffer containing ionomycin ($1{\mu}M$) as an ionopore. This result suggests that the inhibitory action of FS11052 on neurotransmitter release appeared after the influx of $Ca^{2+}$.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1994.04a
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pp.88-93
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1994
The mechanisms controlling the intensity and duration of synaptic transmission are numerous. Once an action potential reaches a nerve terminal, the stored neurotransmitters are released in a quantum fashion into the synaptic cleft. At that point neurotransmitters can act on post-synaptic receptors to elicit an action on the post-synaptic cell or net at so-called auto-receptors that are located on the presynaptic side and which often regulate the further release of the neutotransmitter. Whereas the action of the neurotransmitter receptors is regulated by desensitization phenomenon, the major mechanism by which the intensity and duration of neurotransmitter action is presumably regulated by either its degradation or its removal from the synaptic cleft. In the central nervous system, specialized proteins located in fe plasma membrane of presynaptic terminals function to rapidly remove neurotransmitters from the synaptic cleft in a sodium chloride-dependent fashion. These proteins have been referred to as uptake sites or neurotransmitter transporters. Once taken up by the plasma membrane transporters, neurotransmitters are repackaged into secretory vesicles by distinct transporters which depend on a proton gradient.
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