Oxidative stress or accumulation of reactive oxygen species (ROS) leads neuronal cellular death and dysfunction, and it contributes to neuronal degenerative disease such as Alzheimer's disease, Parkinson's disease and stroke. Glutamate is one of the major excitatory neurotransmitter in the central nervous system (CNS). Glutamate contributes to fast synaptic transmission, neuronal plasticity, outgrowth and survival, behavior, learning and memory. In spite of these physiological functions, high concentration of glutamate causes neuronal cell damage, acute insults and chronic neuronal neurodegenerative diseases. Heme oxygenase-1 (HO-1) enzyme plays an important role of cellular antioxidant system against oxidant injury. NNMBS020, the water-insoluble fraction of the 70% EtOH extract of root barks of Dictamnus dasycarpus, showed dominant neuroprotective effects on glutamate-induced neurotoxicity in mouse hippocampal HT22 cells by induced the expression of HO-1 and increased HO activity. In mouse hippocampal HT22 cells, NNMBS020 makes the nuclear accumulation of Nrf2 and stimulates extracellular signal-regulated kinase (ERK) pathway. The ERK MAPK pathway inhibitor significantly reduced NNMBS020-induced HO-1 expression, whereas the JNK and p38 inhibitors did not. In conclusion, the water-insoluble fraction of the 70% EtOH extract of root barks of D. dasycarpus (NNMBS020) significantly protect glutamate-induced oxidative damage by induction of HO-1 via Nrf2 and ERK pathway in mouse hippocampal HT22 cells.
The present study evaluated antioxidant and neuroprotective activities of hesperidin, a flavanone mainly isolated from citrus fruits, and its aglycone hesperetin using cell-free bioassay system and primary cultured rat cortical cells. Both hesperidin and hesperetin exhibited similar patterns of 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl radical scavenging activities. While hesperidin was inactive, hesperetin was found to be a potent antioxidant, inhibiting lipid peroxidation initiated in rat brain homogenates by $Fe^{2+}$ and L-ascorbic acid. In consistence with these findings, hesperetin protected primary cultured cortical cells against the oxidative neuronal damage induced by $H_2O_2$ or xanthine and xanthine oxidase. In addition, it was shown to attenuate the excitotoxic neuronal damage induced by excess glutamate in the cortical cultures. When the excitotoxicity was induced by the glutamate receptor subtype-selective ligands, only the N-methyl-D-aspartic acid-induced toxicity was selectively and markedly inhibited by hesperetin. Furthermore, hesperetin protected cultured cells against the $A_{{\beta}(25-35)}-induced$ neuronal damage. Hesperidin, however, exerted minimal or no protective effects on the neuronal damage tested in this study. Taken together, these results demonstrate potent antioxidant and neuroprotective effects of hesperetin, implying its potential role in protecting neurons against various types of insults associated with many neurodegenerative diseases.
BACKGROUND/OBJECTIVES: Brain aging is a major risk factor for severe neurodegenerative diseases. Conversely, L-histidine and L-carnosine are known to exhibit neuroprotective effects. The aim of this study was to examine the potential for L-histidine, L-carnosine, and their combination to mediate anti-brain aging effects in neuronal cells subjected to D-galactose-induced aging. MATERIALS/METHODS: The neuroprotective potential of L-histidine, L-carnosine, and their combination was examined in a retinoic acid-induced neuronal differentiated SH-SY5Y cell line exposed to D-galactose (200 mM) for 48 h. Neuronal cell proliferation, differentiation, and expression of anti-oxidant enzymes and apoptosis markers were subsequently evaluated. RESULTS: Treatment with L-histidine (1 mM), L-carnosine (10 mM), or both for 48 h efficiently improved the proliferation, neurogenesis, and senescence of D-galactose-treated SH-SY5Y cells. In addition, protein expression levels of both neuronal markers (β tubulin-III and neurofilament heavy protein) and anti-oxidant enzymes, glutathione peroxidase-1 and superoxide dismutase-1 were up-regulated. Conversely, protein expression levels of amyloid β (1-42) and cleaved caspase-3 were down-regulated. Levels of mRNA for the pro-inflammatory cytokines, interleukin (IL)-8, IL-1β, and tumor necrosis factor-α were also down-regulated. CONCLUSIONS: To the best of our knowledge, we provide the first evidence that L-histidine, L-carnosine, and their combination mediate anti-aging effects in a neuronal cell line subjected to D-galactose-induced aging. These results suggest the potential benefits of L-histidine and L-carnosine as anti-brain aging agents and they support further research of these amino acid molecules.
Objectives : The purpose of the study is to determine the neuroprotective effects of the water extract of Angelicae Acutilobae Radix(AA) on ischemia reperfusion-induced apoptosis in SK-N-SH human brain neuronal cells. Methods: SK-N-SH cells were treated with different concentrations of AA water extract (0.1, 0.2, 0.5 and 1.0 mg/ml) for 2 hr and then stimulated with Dulbecco's phosphate-buffered saline containing CI-DPBS: 3mM sodium azide and 10 mM 2-deoxy-D-glucose for 45 min, reperfused with growth medium, and incubated for 24 h. Cell viability was determined by WST-1 assay, and ATP/ADP levels were measured by ADP/ATP ratio assay kit. The levels of caspase-3 protein were determined by Western blot and apoptotic body was observed by Hoechst 33258 staining. Results : AA extract significantly inhibited decreasing the cell viability in ischemia-induced SK-N-SH cells. AA also increased the ratio of ADP/ATP in ischemia-induced neuronal cells and decreased the expression levels of apoptotic protein, caspase-3 and apoptotic DNA damage. Conclusions : Our results suggest that AA extract has a neuroprotective property via suppressing the apoptosis and increasing the energy levels in neuronal cells, suggesting that AA extract may has a therapeutic potential in the treatment of ischemic brain injury.
Objectives : The purpose of the study is to determine the neuroprotective effects of the water and 80% EtOH extract of some herbal medicine plant on ischemia reperfusion-induced cell death in SK-N-SH human brain neuronal cells. Methods : SK-N-SH cells were treated with 3mM sodium azide and 10 mM 2-deoxy-D-glucose for 45 min, ptior to the addition of different concentrations of herbal medicine plant extract (0, 10, 25, 50, 100, 250, 500, 1000 ${\mu}g/ml$) for 2 hr and then reperfused with growth medium, incubated for 24 h. Cell viability was determined by WST-1 assay, and ATP/ADP levels were measured by ADP/ATP ratio assay kit. Results : Herbal medicine plant extract significantly inhibited decreasing the cell viability in ischemia-induced SK-N-SH cells. Also increased the ratio of ADP/ATP in ischemia-induced neuronal cells. Conclusions : Our results suggest that herbal medicine plant extract has a neuroprotective property via increasing the energy levels in neuronal cells, suggesting that extract may has a therapeutic potential in the treatment of ischemic brain injury. The exact component and mechanism remains for the future study.
Gangliosides play an important role in neuronal differentiation processes. The regulation of ganglioside levels is related to the induction of neuronal cell differentiation. In this study, the ST8Sia5 gene was transfected into mESCs and then differentiated into neuronal cells. Interestingly, ST8Sia5 gene transfected mESCs expressed GQ1b by HPTLC and immunofluorescence analysis. To investigate the effects of GQ1b over-expression in neurogenesis, neuronal cells were differentiated from GQ1b expressing mESCs in the presence of retinoic acid. In GQ1b expressing mESCs, increased EBs formation was observed. After 4 days, EBs were co-localized with GQ1b and nestin, and GFAP. Moreover, GQ1b co-localized with MAP-2 expressing cells in GQ1b expressing mESCs in 7-day-old EBs. Furthermore, GQ1b expressing mESCs increased the ERK1/2 MAP kinase pathway. These results suggest that the ST8Sia5 gene increases ganglioside GQ1b and improves neuronal differentiation via the ERK1/2 MAP kinase pathway.
The amphetamine derivative 3, 4-methylenedioxymethamphetamine (MDMA) has become a popular recreational drug, and has also been shown to cause serotonergic neurotoxicity. This report shows that MDMA impairs brain development in a whole mouse embryo culture. The results of quantitative real-time PCR analysis showed that autophagy-related protein 5 (Atg5) expression is elevated in mouse embryo and neuroblastoma cells after MDMA treatment. This elevated Atg5 expression interferes with the neuronal differentiation of neuroblastoma cells such as SH-SY5Y and PC12 cells. Thus, our results suggest that the use of MDMA during pregnancy may impair neuronal development via an induction of Atg5 expression.
Gaucher disease (GD) is an autosomal recessive lysosomal storage disorder caused by mutations in the glucocerebrosidase gene (GBA), which encodes the lysosomal enzyme glucosylceramidase (GCase). Deficiency in GCase leads to characteristic visceral pathology and lethal neurological manifestations in some patients. Investigations into neurogenesis have suggested that neurodegenerative disorders, such as GD, could be overcome or at least ameliorated by the generation of new neurons. Bone marrowderived mesenchymal stem cells (BM-MSCs) are potential candidates for use in the treatment of neurodegenerative disorders because of their ability to promote neurogenesis. Our objective was to examine the mechanism of neurogenesis by BM-MSCs in GD. We found that neural stem cells (NSCs) derived from a neuronopathic GD model exhibited decreased ability for self-renewal and neuronal differentiation. Co-culture of GBA-deficient NSCs with BM-MSCs resulted in an enhanced capacity for self-renewal, and an increased ability for differentiation into neurons or oligodendrocytes. Enhanced proliferation and neuronal differentiation of GBA-deficient NSCs was associated with elevated release of macrophage colony-stimulating factor (M-CSF) from BM-MSCs. Our findings suggest that soluble M-CSF derived from BM-MSCs can modulate GBA-deficient NSCs, resulting in their improved proliferation and neuronal differentiation.
We attempted to analyze the mechanism of polychlorinated biphenyl (PCB)-induced neurotoxicity and identify the target molecules in the neuronal cells for PCBs.Since the developing neuron is particularly sensitive to PCB-induced neurotoxicity, we isolated cerebellar granule cells derived from 7-day old Sprague Dawley (SD) rats and grew cells in culture for additional 7 days to mimic PND-14 conditions. Only non-coplanar PCBs at a high dose showed a significant increase of total protein kinase C (PKC) activity at phobol 12,13-dibutyrate ([$^3M$]PDBu) binding assay, indicating that non-coplanar PCBs are more neuroactive than coplanar PCBs in neuronal cells. PKC isozymes were immunoblotted with the selected monoclonal antibodies. PKC-${\alpha}$, ${\delta}$, and ε were activated with non-coplanar PCB exposure. Receptor for activated C kinase-1 (RACK-1), anchoring protein for activated PKC, was more induced with exposure to coplanar PCBs than non-coplanar PCBs. Reverse transcription PCR (RT-PCR) analysis showed induction of neurogranin (RC-3) and growth associated protein-43 (GAP-43) mRNA with non-coplanar PCBs. The results indicate that these factors may be useful biomarkers for differentiating non-coplanar PCBs from coplanar PCBs. The present study demonstrated that non-coplanar PCBs are more neuroactive congeners than coplanar PCBs.
Abnormal distribution of enteric nerves such as adrenergic, cholinergic and non-adrenergic non-cholinergic nerves (NANC) may cause the failure of relaxation at the involved bowel segment in Hirschsprung's disease (HD). Nitric oxide (NO) is a major inhibitory NANC neurotransmitter in the gastrointestinal tract. NO is synthesized by activation of nNOS (neuronal nitric oxide synthase) in the intramural ganglion cells and regulates bowel movement. To assess the distribution of nNOS in HD, immunohistochemical staining to nNOS was utilized on paraffin embedded specimens. Ten control colon specimens were tested for feasibility of staining. Immunohistochemisrty was done on ganglionic colon as well as aganglionic segment of 15 patients with HD. nNOS immunoreactivity was observed in the neuronal cells, small cells and nerve fibers in the muscle layer and submucosal neuronal cells of control specimens. This finding was also observed in the ganglionic segments of HD. But, there was no nNOS immunoreactivity in aganglionic segments of HD. In conclusion nNOS immunohistochemical staining of paraffin embedded specimen is feasible and reliable. And the results suggest that the relaxation failure of the aganglionic bowel in HD is related to the absence of nNOS containing cells and nerve fibers.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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