Gaucher disease (GD) is an autosomal recessive lysosomal storage disorder caused by mutations in the glucocerebrosidase gene (GBA), which encodes the lysosomal enzyme glucosylceramidase (GCase). Deficiency in GCase leads to characteristic visceral pathology and lethal neurological manifestations in some patients. Investigations into neurogenesis have suggested that neurodegenerative disorders, such as GD, could be overcome or at least ameliorated by the generation of new neurons. Bone marrowderived mesenchymal stem cells (BM-MSCs) are potential candidates for use in the treatment of neurodegenerative disorders because of their ability to promote neurogenesis. Our objective was to examine the mechanism of neurogenesis by BM-MSCs in GD. We found that neural stem cells (NSCs) derived from a neuronopathic GD model exhibited decreased ability for self-renewal and neuronal differentiation. Co-culture of GBA-deficient NSCs with BM-MSCs resulted in an enhanced capacity for self-renewal, and an increased ability for differentiation into neurons or oligodendrocytes. Enhanced proliferation and neuronal differentiation of GBA-deficient NSCs was associated with elevated release of macrophage colony-stimulating factor (M-CSF) from BM-MSCs. Our findings suggest that soluble M-CSF derived from BM-MSCs can modulate GBA-deficient NSCs, resulting in their improved proliferation and neuronal differentiation.
Repair mechanisms in the postnatal and mature central nervous system(CNS) have long been thought to be very limited. However recent works have shown that the mature CSN contains neural progenitors, precursors, and stem cells that are capable of generating new neurons, astrocytes, and oligodendrocytes especially in germinative areas such as the subventricular zone of the lateral ventricles, the dentate gyrus of the hippocampus. These findings raise the possibilities for the development of novel neural repair strategies via mobilization and replacement for dying neurons of neural stem cells in situ. Indeed recent reports have provided evidences that endogenous stem cells are activated in response to various injuries, and in some injury models, limited neuronal replacement occurs in the CNS. Here, current understandings for endogenous neurogenesis and induction neurogeneis in postnatal CNS including neonatal brain are summarized and discussed.
This study was designed to investigate the changes in the properties of the neuronal setm cells or progenitor cells associated with age-related decline in neurogenesis of the hippocampal dentate gyrus (DG). Active whole cells cycle marker Ki67 (a marker of whole cell cycle)-positive and S phase marker bromodeoxyuridine (BrdU)-positive. Neural stem cells gradually were reduced in the hippocampal subgranular zone (SGZ) in an age-dependant manner after birth (from P1 month to P1 year). The ratio of BrdUpositivecells/Ki67-positive cells was gradually enhanced in an age-dependent manner. The ratio of Ki67-positive cells/accu-mulating BrdU-positive cells at 3 hrs after BrdU injection was injected once a day for consecutive 5 days gradually decreased during ageing. TUNEL- and caspase 3 (apoptotic terminal caspase)-positive cells gradually decreased in the dentate SGZ during ageing and immunohistochemical findings of glial fibrillary acid protein (GFAP) were not changed during ageing. NeuN, a marker of mature neural cells, and BrdU-double positive cells gradually decreased in an age-dependent manner but differentiating ratio and survival rate of cells were not changed at 4 wks after BrdU injection once a day for consecutive 5 days. The number of BrdU-positive cells migrated from the hippocampal SGZ into granular layer and its migration speed was gradually declined during ageing. These results suggest that the adult neurogenesis in the mouse hippocampal DG gradually decrease through reducing proliferation of neural stem cells accompanying with cells cycle change and reduced cells migration rather than changes of differentiation.
Spinal cord injury (SCI) is one of the most devastating conditions and many SCI patients suffer neurological sequelae. Stem cell therapies are expected to be beneficial for many patients with central nervous system injuries, including SCI. Adult stem cells (ASCs) are not associated with the risks which embryonic stem cells have such as malignant transformation, or ethical problems, and can be obtained relatively easily. Consequently, many researchers are currently studying the effects of ASCs in clinical trials. The environment of transplanted cells applied in the injured spinal cord differs between the phases of SCI; therefore, many researchers have investigated these phases to determine the optimal time window for stem cell therapy in animals. In addition, the results of clinical trials should be evaluated according to the phase in which stem cells are transplanted. In general, the subacute phase is considered to be optimal for stem cell transplantation. Among various candidates of transplantable ASCs, mesenchymal stem cells (MSCs) are most widely studied due to their clinical safety. MSCs are also less immunogenic than neural stem/progenitor cells and consequently immunosuppressants are rarely required. Attempts have been made to enhance the effects of stem cells using scaffolds, trophic factors, cytokines, and other drugs in animal and/or human clinical studies. Over the past decade, several clinical trials have suggested that transplantation of MSCs into the injured spinal cord elicits therapeutic effects on SCI and is safe; however, the clinical effects are limited at present. Therefore, new therapeutic agents, such as genetically enhanced stem cells which effectively secrete neurotrophic factors or cytokines, must be developed based on the safety of pure MSCs.
Neural stem cells (NSCs) have the ability to self-renew and differentiate into multiple nervous system cell types. During embryonic development, the concentrations of soluble biological molecules have a critical role in controlling cell proliferation, migration, differentiation and apoptosis. In an effort to find optimal culture conditions for the generation of desired cell types in vitro, we used a microfluidic chip-generated growth factor gradient system. In the current study, NSCs in the microfluidic device remained healthy during the entire period of cell culture, and proliferated and differentiated in response to the concentration gradient of growth factors (epithermal growth factor and basic fibroblast growth factor). We also showed that overexpression of ASCL1 in NSCs increased neuronal differentiation depending on the concentration gradient of growth factors generated in the microfluidic gradient chip. The microfluidic system allowed us to study concentration-dependent effects of growth factors within a single device, while a traditional system requires multiple independent cultures using fixed growth factor concentrations. Our study suggests that the microfluidic gradient-generating chip is a powerful tool for determining the optimal culture conditions.
Kim, Sang Chul;Lee, Eun-Hye;Yu, Ji Hea;Kim, Sang-Mi;Nam, Bae-Geun;Chung, Hee Yong;Kim, Yeon-Soo;Cho, Sung-Rae;Park, Chang-Hwan
Biomolecules & Therapeutics
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제27권1호
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pp.78-84
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2019
Cell therapeutic agents for treating degenerative brain diseases using neural stem cells are actively being developed. However, few systems have been developed to monitor in real time whether the transplanted neural stem cells are actually differentiated into neurons. Therefore, it is necessary to develop a technology capable of specifically monitoring neuronal differentiation in vivo. In this study, we established a system that expresses cell membrane-targeting red fluorescent protein under control of the Synapsin promoter in order to specifically monitor differentiation from neural stem cells into neurons. In order to overcome the weak expression level of the tissue-specific promoter system, the partial 5' UTR sequence of Creb was added for efficient expression of the cell surface-specific antigen. This system was able to track functional neuronal differentiation of neural stem cells transplanted in vivo, which will help improve stem cell therapies.
Carbon monoxide (CO) is a gaseous molecule produced from heme by heme oxygenase (HO). Endogenous CO production occurring at low concentrations is thought to have several useful biological roles. In mammals, especially humans, a proper neurovascular unit comprising endothelial cells, pericytes, astrocytes, microglia, and neurons is essential for the homeostasis and survival of the central nervous system (CNS). In addition, the regeneration of neurovascular systems from neural stem cells and endothelial precursor cells after CNS diseases is responsible for functional repair. This review focused on the possible role of CO/HO in the neurovascular unit in terms of neurogenesis, angiogenesis, and synaptic plasticity, ultimately leading to behavioral changes in CNS diseases. CO/HO may also enhance cellular networks among endothelial cells, pericytes, astrocytes, and neural stem cells. This review highlights the therapeutic effects of CO/HO on CNS diseases involved in neurogenesis, synaptic plasticity, and angiogenesis. Moreover, the cellular mechanisms and interactions by which CO/HO are exploited for disease prevention and their therapeutic applications in traumatic brain injury, Alzheimer's disease, and stroke are also discussed.
Journal of The Korean Society of Inherited Metabolic disease
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제6권1호
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pp.108-115
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2006
The inherent biology of neural stem cells (NSCs) endows them with capabilities that not only circumvent many of the limitations of other gene transfer vehicles, but that enable a variety of novel therapeutic strategies heretofore regarded as beyond the purview of neural transplantation, Most neurodegenerative diseases are characterized not by discrete, focal abnormalities but rather by extensive, multifocal, or even global neuropathology. Such widely disseminated lesions have not conventionally been regarded as amenable to neural transplantation. However, the ability of NSCs to engraft diffusely and become integral members of structures throughout the host CNS while also expressing therapeutic molecules may permit these cells to address that challenge. Intriguingly, while NSCs can be readily engineered to express specified foreign genes, other intrinsic factors appear to emanate spontaneously from NSCs and, in the context of reciprocal donor-host signaling, seem to be capable of neuroprotective and/or neuroregenerative functions. Stem cells additionally have the appealing ability to "home in" on pathology, even over great distances. Such observations help to advance the idea that NSCs - as a prototype for stem cells from other solid organs - might aid in reconstructing the molecular and cellular milieu of maid eve loped or damaged organs.
Kim Sehee;Hong Ji Young;Joo So Yeon;Kim Jae Hwan;Moon Shin Yong;Yoon Hyun Soo;Kim Doo Han;Chung Hyung Min;Choi Seong-Jun
Reproductive and Developmental Biology
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제28권4호
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pp.247-252
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2004
Human embryonic stem (ES) cells are derived from the inner cell mass of the preimplantation embryo. Human ES cells have the capacity to differentiate into various types of cells in the body. Human ES cells are indefinite source of cells for cell therapy in various degenerative disorders including neuronal disorders. Directed differentiation of human ES cells is a prerequisite for their clinical application. The objective of this study is to develop the culture condition for the derivation of neural precursor cells from human ES cells. Neural precursor cells were derived from human ES cells in a stepwise culture condition. Neural precursor cells in the form of neural rosette structures developed into neurospheres when cultured in suspension. Suspension culture of neurospheres has been maintained over 4 months. Expressions of nestin, soxl, sox2, pax3 and pax6 transcripts were upregulated during differentiation into neural precursor cells by RT-PCR analysis. In contrast, expression of oct4 was dramatically downregulated in neural precursor cells. Immunocytochemical analyses of neural precursor cells demonstrated expression of nestin and SOX1. When induced to differentiate on an adhesive substrate, neuro-spheres were able to differentiate into three lineages of neural systems, including neurons, astrocytes and oligo-dendrocytes. Transcripts of sox1 and pax6 were downregulated during differentiation of neural precursor cells into neurons. In contrast, expression of map2ab was elevated in the differentiated cells, relative to those in neural precursor cells. Neurons derived from neural precursor cells expressed NCAM, Tuj1, MAP2ab, NeuN and NF200 in immunocytochemical analyses. Presence of astrocytes was confirmed by expression of GFAP immuno-cytochemically. Oligodendrocytes were also observed by positive immuno-reactivities against oligodendrocyte marker O1. Results of this study demonstrate that a stepwise culture condition is developed for the derivation of neural precursor cells from human ES cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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