We previously reported that NAD(P)H:quinone oxidoreductase 1 (NQO1)-knockout (KO) mice exhibited spontaneous inflammation in the gut. We also found that NQO1-KO mice showed highly increased inflammatory responses compared with NQO1-WT control mice when subjected to DSS-induced experimental colitis. In a Clostridium difficile toxin-induced mouse enteritis model, NQO1-KO mice were also sensitive compared with NQO1-WT mice. Moreover, numerous studies have shown that NQO1 is functionally associated with immune regulation. Here, we assessed whether NQO1 defects can alter macrophage activation. We found that peritoneal macrophages isolated from NQO1-KO mice produced more IL-6 and $TNF-{\alpha}$ than those isolated from NQO1-WT mice. Moreover, the dicumarol-induced inhibition of NQO1 significantly increased IL-6 and $TNF-{\alpha}$ production in peritoneal macrophages isolated from NQO1-WT mice, as well as in the cultured mouse macrophage cell line, RAW264.7. These results indicate that NQO1 may negatively regulate the activation of macrophages. Knockout or chemical inhibition of NQO1 markedly reduced the expression of $I{\kappa}B$ (inhibitor of $NF{\kappa}B$) in both mouse peritoneal macrophages and RAW264.7 cells. Finally, RAW264.7 cells treated with dicumarol exhibited morphological changes reflecting macrophage activation. Our results suggest that NQO1 may suppress the $NF{\kappa}B$ pathways in macrophages, thereby suppressing the activation of these cells. Thus, immunosuppressive activity may be among the many possible functions of NQO1.
NAD(P)H:quinone oxidoreductase (NQO1), an obligatory two-electron reductase, is a ubiquitous cytosolic enzyme that catalyzes the reduction of quinone substrates. The NQO1- mediated two-electron reduction of quinones can be either chemoprotection/detoxification or a chemotherapeutic response, depending on the target quinones. When toxic quinones are reduced by NQO1, they are conjugated with glutathione or glucuronic acid and excreted from the cells. Based on this protective effect of NQO1, the use of dietary compounds to induce the expression of NQO1 has emerged as a promising strategy for cancer prevention. On the other hand, NQO1-mediated two-electron reduction converts certain quinone compounds (such as mitomycin C, E09, RH1 and β-lapachone) to cytotoxic agents, leading to cell death. It has been known that NQO1 is expressed at high levels in numerous human cancers, including breast, colon, cervix, lung, and pancreas, as compared with normal tissues. This implies that tumors can be preferentially damaged relative to normal tissue by cytotoxic quinone drugs. Importantly, NQO1 has been shown to stabilize many proteins, including p53 and p33ING1b, by inhibiting their proteasomal degradation. This review will summarize the biological roles of NQO1 in cancer, with emphasis on recent findings and the potential of NQO1 as a therapeutic target for the cancer therapy.
NAD(P)H quinone oxidoreductase 1 (NQO1) is a flavoprotein that catalyzes the two electron reduction of diverse substrates, including quinones. It uses NADH or NADPH as a cofactor for enzymatic machinery. In the metabolism of quinones, NQO1 has two conflicting functions because of the different stability of converted hydroquinones. The stable form of hydroquinone is excreted from cells by conjugation with glutathione or glucuronic acid. The unstable form of hydroquinone induces cell death by induction of oxidative stress and DNA damage. Certain quinones known as bio-reductive agents have a cytotoxic function following reduction by NQO1. Bio-reductive agents, such as ${\beta}$-lapachone or mitomycin C, induce the depletion of NAD(P)H and the generation of oxidative stress in an NQO1-dependent manner. NQO1 is highly expressed in several cancer tissues. Therefore, NQO1 is a good therapeutic target for cancer treatment with bio-reductive agents.
We previously showed that NAD(P)H:quinone oxidoreductase 1 (NQO1) knockout (KO) mice exhibited spontaneous inflammation with markedly increased mucosal permeability in the gut, and that NQO1 is functionally associated with regulating tight junctions in the mucosal epithelial cells that govern the mucosal barrier. Here, we confirm the role of NQO1 in the formation of tight junctions by human colonic epithelial cells (HT29). We treated HT29 cells with a chemical inhibitor of NQO1 (dicumarol; 10 μM), and examined the effect on the transepithelial resistance of epithelial cells and the protein expression levels of ZO1 and occludin (two known regulators of tight junctions between gut epithelial cells). The dicumarol-induced inhibition of NQO1 markedly reduced transepithelial resistance (a measure of tight junctions) and decreased the levels of the tested tight junction proteins. In vivo, luminal injection of dicumarol significantly increased mucosal permeability and decreased ZO1 and occludin protein expression levels in mouse guts. However, in contrast to the previous report that the epithelial cells of NQO1 KO mice showed marked down-regulations of the transcripts encoding ZO1 and occludin, these transcript levels were not affected in dicumarol-treated HT29 cells. This result suggests that the NQO1-depedent regulation of tight junction molecules may involve multiple processes, including both transcriptional regulation and protein degradation processes such as those governed by the ubiquitination/proteasomal, and/or lysosomal systems.
In order to study the change of protein synthesis in developing chick embryo under the influence of carcinogenic substances, we introduced a kind of potent carcinogen, 4-nitroquinoline-1-oxide (4 NQO) to the yolk sac of developing chick embryo. There are changes of synthetic pattern of protein abreast with proceeding of development is each tissue. Protein synthesis in samples which was treated with 4NQO was decreased as compared with untreated control samples. There are tissue specificity in 4NQO effect, showing the apparent decreasing at the 24 hr after drug treatment in the lung and gizzard muscle but not in heart muscle. The results in the present study suggested that 4NQO treated samples was decreased as compared with control samples. From the above data we could know that 4NQO also affected the synthesis of glycosaminoglycan.
Nam, Seung Taek;Hwang, Jung Hwan;Kim, Dae Hong;Park, Mi Jung;Lee, Ik Hwan;Nam, Hyo Jung;Kang, Jin Ku;Kim, Sung Kuk;Hwang, Jae Sam;Chung, Hyo Kyun;Shong, Minho;Lee, Chul-Ho;Kim, Ho
BMB Reports
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v.47
no.9
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pp.494-499
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2014
NADH:quinone oxidoreductase 1 (NQO1) is known to be involved in the regulation of energy synthesis and metabolism, and the functional studies of NQO1 have largely focused on metabolic disorders. Here, we show for the first time that compared to NQO1-WT mice, NQO1-KO mice exhibited a marked increase of permeability and spontaneous inflammation in the gut. In the DSS-induced colitis model, NQO1-KO mice showed more severe inflammatory responses than NQO1-WT mice. Interestingly, the transcript levels of claudin and occludin, the major tight junction molecules of gut epithelial cells, were significantly decreased in NQO1-KO mice. The colons of NQO1-KO mice also showed high levels of reactive oxygen species (ROS) and histone deacetylase (HDAC) activity, which are known to affect transcriptional regulation. Taken together, these novel findings indicate that NQO1 contributes to the barrier function of gut epithelial cells by regulating the transcription of tight junction molecules.
Park, Se Ra;Jung, Ju Young;Kim, Young-Jung;Jung, Da Young;Lee, Mee Young;Ryu, Si Yun
Korean Journal of Veterinary Research
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v.56
no.1
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pp.15-21
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2016
NAD(P)H-quinone oxidoreductase-1 (NQO1) is a down-stream target gene of nuclear factor erythroid 2-related factor 2 (Nrf2), and performs diverse biological functions. Recently, NQO1 is recognized as an effective gene for the cytotoxic inserts with its diverse biological functions, which is focused on antioxidant properties. The aim of present study was to assess the impact of NQO1 knockdown on cytoprotection-related protein expression in cisplatin cytotoxicity by using small interfering (si) RNA targeted on NQO1 gene. Cytotoxicity of cisplatin on ACHN cells was assessed in a dose- and time-dependent manner after siScramble or siNQO1 treatment. After cisplatin treatment, cells were subjected to cell viability assay, western-blot analysis, and immunofluorescence study. The cell viability was decreased in the siNQO1 cells (50%) than the siScramble cells (70%) after 24 h of cisplatin ($20{\mu}M$) treatment. Moreover, cytoprotection-related protein expressions were markedly suppressed in the siNQO1 cells after cisplatin treatment. The expression of Nrf2 and Klotho were decreased by 20% and 40%, respectively, of that in siScramble cells. Nrf2 and Klotho activation were also decreased in cisplatin treated siNQO1 cells, confirmed by cytoplasm-tonuclear translocation. Our findings demonstrate that the increased cisplatin-induced cytotoxicity was accompanied by suppressed Nrf2 activation and Klotho expression in siNQO1 cells.
Kim, Hyo-Jeong;Zheng, Min;Kim, Seul-Ki;Cho, Jung-Jee;Shin, Chang-Ho;Joe, Yeon-Soo;Chung, Hun-Taeg
IMMUNE NETWORK
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v.11
no.6
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pp.376-382
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2011
Background: Carbon monoxide (CO) is a cytoprotective and homeostatic molecule with important signaling capabilities in physiological and pathophysiological situations. CO protects cells/tissues from damage by free radicals or oxidative stress. NAD(P)H:quinone oxidoreductase (NQO1) is a highly inducible enzyme that is regulated by the Kelch-like ECH-associated protein 1 (Keap1)/nuclear factor erythroid 2-related factor 2 (Nrf2)/antioxidant response element (ARE) pathway, which is central to efficient detoxification of reactive metabolites and reactive oxygen species (ROS). Methods: We generated NQO1 promoter construct. HepG2 cells were treated with CO Releasing Molecules-2 (CORM-2) or CO gas and the gene expressions were measured by RT-PCR, immunoblot, and luciferase assays. Results: CO induced expression of NQO1 in human hepatocarcinoma cell lines by activation of Nrf2. Exposure of HepG2 cells to CO resulted in significant induction of NQO1 in dose- and time-dependent manners. Analysis of the NQO1 promoter indicated that an antioxidant responsible element (ARE)-containing region was critical for the CO-induced Nrf2-dependent increase of NQO1 gene expression in HepG2 cells. Conclusion: Our results suggest that CO-induced Nrf2 increases the expression of NQO1 which is well known to detoxify reactive metabolites and ROS.
Nam, Seung Taek;Hwang, Jung Hwan;Kim, Dae Hong;Lu, Li Fang;Hong, Ji;Zhang, Peng;Yoon, I Na;Hwang, Jae Sam;Chung, Hyo Kyun;Shong, Minho;Lee, Chul-Ho;Kim, Ho
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.26
no.8
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pp.1446-1451
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2016
Clostridium difficile toxin A causes acute gut inflammation in animals and humans. It is known to downregulate the tight junctions between colonic epithelial cells, allowing luminal contents to access body tissues and trigger acute immune responses. However, it is not yet known whether this loss of the barrier function is a critical factor in the progression of toxin A-induced pseudomembranous colitis. We previously showed that NADH:quinone oxidoreductase 1 (NQO1) KO (knockout) mice spontaneously display weak gut inflammation and a marked loss of colonic epithelial tight junctions. Moreover, NQO1 KO mice exhibited highly increased inflammatory responses compared with NQO1 WT (wild-type) control mice when subjected to DSS-induced experimental colitis. Here, we tested whether toxin A could also trigger more severe inflammatory responses in NQO1 KO mice compared with NQO1 WT mice. Indeed, our results show that C. difficile toxin A-mediated enteritis is significantly enhanced in NQO1 KO mice compared with NQO1 WT mice. The levels of fluid secretion, villus disruption, and epithelial cell apoptosis were also higher in toxin A-treated NQO1 KO mice compared with WT mice. The previous and present results collectively show that NQO1 is involved in the formation of tight junctions in the small intestine, and that defects in NQO1 enhance C. difficile toxin A-induced acute inflammatory responses, presumably via the loss of epithelial cell tight junctions.
Dicumarol is a coumarin derivative isolated from sweet clover (Melilotus alba), and has anti-coagulant activity with the inhibitory activity of NAD(P)H quinone oxidoreductase1 (NQO1). NQO1 catalyzes the two-electron reduction of quinones to hydroquinones. Dicumarol competes with NAD(P)H for binding to NQO1, resulting in the inhibition of NQO1 enzymatic activity. The expression of matrix metalloproteinases (MMPs) has been implicated in the invasion and metastasis of cancer cells. The expression of MMPs is regulated by cytokines and signal transduction pathways, including those activated by phorbol myristate acetate (PMA). However, the effects of dicumarol on metalloproteinase (MMP)-9 expression and activity are not investigated here. This study investigated whether dicumarol inhibits MMP-9 expression and activity in PMA-treated human renal carcinoma Caki cells. Dicumarol markedly inhibited the PMA-induced MMP-9 mRNA expression and MMP-9 activity. NF-κB and AP1 promoter activity, which is important in MMP-9 expression, also decreased in dicumarol-treated cells. Furthermore, dicumarol markedly suppressed the ability of PMA-mediated migration in Caki cells. When the relevance of NQO1 in the dicumarol-mediated inhibitory effect on PMA-induced MMP9 activity was elucidated, knock-down of NQO1 with siRNA was found to have no effect on PMA-induced MMP9 activity, suggesting that the stimulating effect of dicumarol on PMA-induced MMP9 activity is independent of NQO1 activity. Taken together, the present studies suggested that dicumarol may inhibit PMA-induced migration via down-regulation of MMP-9 expression and activity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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