BACKGROUND/OBJECTIVE: Chronic hyperglycemia induces oxidative stress via accumulation of reactive oxygen species (ROS) and contributes to diabetic complications. Hyperglycemia induces mitochondrial superoxide anion production through the increased activity of nicotinamide adenine dinucleotide phosphate (NADPH) oxidase. This study aimed to determine whether fisetin and luteolin treatments suppress the oxidative stress by modulating the expression of sirtuins (SIRTs) and forkhead box O3a (FOXO3a) under hyperglycemic conditions in human monocytes. MATERIALS/METHODS: Human monocytic cells (THP-1) were cultured under osmotic control (14.5 mmol/L mannitol), normoglycemic (NG, 5.5 mmol/L glucose), or hyperglycemic (HG, 20 mmol/L glucose) conditions, in the absence or presence of fisetin and luteolin for 48 h. To determine the effect of fisetin and luteolin treatments on high glucose-induced oxidative stress, western blotting and intracellular staining were performed. RESULTS: Hyperglycemic conditions increased the ROS production, as compared to normoglycemic condition. However, fisetin and luteolin treatments inhibited ROS production under hyperglycemia. To obtain further insight into ROS production in hyperglycemic conditions, evaluation of p47phox expression revealed that fisetin and luteolin treatments inhibited p47phox expression under hyperglycemic conditions. Conversely, the expression levels of SIRT1, SIRT3, SIRT6, and FOXO3a were decreased under high glucose conditions compared to normal glucose conditions, but exposure to fisetin and luteolin induced the expression of SIRT1, SIRT3, SIRT6, and FOXO3a. The above findings suggest that fisetin and luteolin inhibited high glucose-induced ROS production in monocytes through the activation of SIRTs and FOXO3a. CONCLUSIONS: The results of our study supports current researches that state fisetin and luteolin as potential agents for the development of novel strategies for diabetes.
Quercetin-3-O-${\beta}$-D-glucuronopyranoside (QGC) is a flavonoid glucoside extracted from Rumex Aquaticus Herba. We aimed to explore its protective effect against ethanol-induced cell damage and the mechanism involved in the effect in feline esophageal epithelial cells (EEC). Cell viability was tested and 2',7'-dichlorofluorescin diacetate assay was used to detect intracellular $H_2O_2$ production. Western blotting analysis was performed to investigate MAPK activation and interleukin 6 (IL-6) expression. Exposure of cells to 10% ethanol time-dependently decreased cell viability. Notably, exposure to ethanol for 30 min decreased cell viability to 43.4%. When cells were incubated with $50{\mu}M$ QGC for 12 h prior to and during ethanol treatment, cell viability was increased to 65%. QGC also inhibited the $H_2O_2$ production and activation of ERK 1/2 induced by ethanol. Pretreatment of cells with the NADPH oxidase inhibitor, diphenylene iodonium, also inhibited the ethanol-induced ERK 1/2 activation. Treatment of cells with ethanol for 30 or 60 min in the absence or presence of QGC exhibited no changes in the IL-6 expression or release compared to control. Taken together, the data indicate that the cytoprotective effect of QGC against ethanol-induced cell damage may involve inhibition of ROS generation and downstream activation of the ERK 1/2 in feline EEC.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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2003.11a
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pp.83-83
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2003
In our previous study, glucose deprivation was reported to induce the potentiated death and ATP loss in immunostimulated astroglia. And this vulnerability to glucose deprivation was due to overproduction of nitric oxide (NO) and hydrogen peroxide (H$_2$O$_2$). In the present study, the role of extracellular signal-regulated kinase 1/2 (ERK1/2) in the glucose deprivation-induced death of immunostimulated astroglia was examined. We showed that immunostimulation with LPS+IFN-ν activated the ERKl/2 signal pathway and produced a large amount of NO and H$_2$O$_2$. Generation of NO and H$_2$O$_2$ in immunostimulated astroglia was mediated via ERK1/2 signal pathways, since addition of the ERK kinase (MEKl) inhibitor PD98059 reduced NO and H$_2$O$_2$production. ERK1/2 activation-mediated NO and H$_2$O$_2$ production is due to an activation of iNOS and NADPH oxidase, respectively. Finally, we found that glucose deprivation caused ATP depletion and the augmented death in immunostimulated astroglia, which was also prevented by PD98059 treatment. These results demonstrate that the ERK1/2 signal pathways play an important role in glucose deprivation induced the death in immunostimulated astroglia by regulating the generation of NO and H$_2$O$_2$.
Lee, Ji-Eun;Cho, Kyu Eun;Lee, Kyung Eun;Kim, Jaesang;Bae, Yun Soo
Molecules and Cells
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v.37
no.12
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pp.907-911
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2014
The function of reactive oxygen species (ROS) as second messengers in cell differentiation has been demonstrated only for a limited number of cell types. Here, we used a well-established protocol for BMP2-induced neuronal differentiation of neural crest stem cells (NCSCs) to examine the function of BMP2-induced ROS during the process. We first show that BMP2 indeed induces ROS generation in NCSCs and that blocking ROS generation by pretreatment of cells with diphenyleneiodonium (DPI) as NADPH oxidase (Nox) inhibitor inhibits neuronal differentiation. Among the ROS-generating Nox isozymes, only Nox4 was expressed at a detectable level in NCSCs. Nox4 appears to be critical for survival of NCSCs at least in vitro as down-regulation by RNA interference led to apoptotic response from NCSCs. Interestingly, development of neural crest-derived peripheral neural structures in Nox4-/- mouse appears to be grossly normal, although Nox4-/- embryos were born at a sub-Mendelian ratio and showed delayed over-all development. Specifically, cranial and dorsal root ganglia, derived from NCSCs, were clearly present in Nox4-/- embryo at embryonic days (E) 9.5 and 10.5. These results suggest that Nox4-mediated ROS generation likely plays important role in fate determination and differentiation of NCSCs, but other Nox isozymes play redundant function during embryogenesis.
Antimicrobial actions of reactive oxygen/nitrogen species (ROS/RNS) derived from products of NADPH oxidase and inducible nitric oxide (NO) synthase in host phagocytes inactivate various bacterial macromolecules. To cope with these cytotoxic radicals, pathogenic bacteria have evolved to conserve systems necessary for detoxifying ROS/RNS and repairing damages caused by their actions. In response to these stresses, bacteria also induce expression of molecular chaperones to aid in ameliorating protein misfolding. In this study, we explored the function of a newly identified chaperone Spy, that is localized exclusively in the periplasm when bacteria exposed to conditions causing spheroplast formation, in the resistance of Salmonella Typhimurium to ROS/RNS. A spy deletion mutant was constructed in S. Typhimurium by a PCR-mediated method of one-step gene inactivation with ${\lambda}$ Red recombinase, and subjected to ROS/RNS stresses. The spy mutant Salmonella showed a modest decrease in growth rate in NO-producing cultures, and no detectable difference of growth rate in $H_2O_2$ containing cultures, compared with that of wild type Salmonella. Quantitative RT-PCR analysis showed that spy mRNA levels were similar regardless of both stresses, but were increased considerably in Salmonella mutants lacking the flavohemoglobin Hmp, which are incapable of NO detoxification, and lacking an alternative sigma factor RpoS, conferring hypersusceptibility to $H_2O_2$. Results demonstrate that Spy expression can be induced under extreme conditions of both stresses, and suggest that the protein may have supportive roles in maintaining proteostasis in the periplasm where various chaperones may act in concert with Spy, thereby protecting bacteria against toxicities of ROS/RNS.
Purpose: Abnormal potassium channels expression affects vessel function, including vascular tone and proliferation rate. Diverse potassium channels, including voltage-gated potassium (Kv) channels, are involved in pathological changes of pulmonary arterial hypertension (PAH). Since the role of the Kv1.7 channel in PAH has not been previously studied, we investigated whether Kv1.7 channel expression changes in the lung tissue of a monocrotaline (MCT)-induced PAH rat model and whether this change is influenced by the endothelin (ET)-1 and reactive oxygen species (ROS) pathways. Methods: Rats were separated into 2 groups: the control (C) group and the MCT (M) group (60 mg/kg MCT). A hemodynamic study was performed by catheterization into the external jugular vein to estimate the right ventricular pressure (RVP), and pathological changes in the lung tissue were investigated. Changes in protein and mRNA levels were confirmed by western blot and polymerase chain reaction analysis, respectively. Results: MCT caused increased RVP, medial wall thickening of the pulmonary arterioles, and increased expression level of ET-1, ET receptor A, and NADPH oxidase (NOX) 4 proteins. Decreased Kv1.7 channel expression was detected in the lung tissue. Inward-rectifier channel 6.1 expression in the lung tissue also increased. We confirmed that ET-1 increased NOX4 level and decreased glutathione peroxidase-1 level in pulmonary artery smooth muscle cells (PASMCs). ET-1 increased ROS level in PASMCs. Conclusion: Decreased Kv1.7 channel expression might be caused by the ET-1 and ROS pathways and contributes to MCT-induced PAH.
In the previous report, E-kong-san, which is usually used for recovering health in traditional medicine, has been shown to decrease cisplatin induced nephrotoxicity in vivo and in vitro. The significant reduction of E-kong-san on the cisplatin induced nephrotoxicity led us to investigate whether the effect of this water extract was a result of triggering antioxidation. In monkey kidney Vero cells, E-kong-san at $5{\sim}10\;mg/ml$ was able to attenuate 2mM cisplatin-stimulated cell death by 46.8% and 31.8%, respectively. E-kong-san showed strong free radical scavengering activities on 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazil (DPPH) radical and xanthine/xanthine oxidase (XOD) generated superoxide anion radical $(O_2^{-.})$. We further studied the effects of E-kong-san on lipid peroxidation in rat liver microsomes induced by enzymatic and nonenzymatic methods. Moreover, E-kong-san exhibited significant inhibition on both ascorbic $acid/Fe^{2+}$ and $ADP/NADPH/Fe^{3+}$ induced lipid peroxidation in rat liver microsomes. Based on these results, we suggest that E-kong-san protects the cisplatin induced cytotoxicity by its antioxidative mechanism.
Kim, Chang-Jong;Lee, Seung-Jun;Seo, Moo-Hyun;Cho, Nam-Young;Sohn, Uy-Dong;Lee, Moo-Yeol;Shin, Yong-Kyoo;Sim, Sang-Soo
Archives of Pharmacal Research
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v.25
no.5
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pp.675-680
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2002
In order to investigate the underlying mechanism of HCI in oesophagitis, the inflammatory response to HCI was observed in RBL-2H3 mast cells. Rat basophilic leukemia (RBL-2H3) cells were used to measure histamine release, arachidonic acid (AA) release, reactive oxygen species (ROS) and peroxynitrite generation induced by HCI. Exogenous HCl increased the level of histamine release and ROS generation in a dose dependent manner, whereas it decreased the spontaneous release of [$^3$H] M and the spontaneous production of peroxynitrite. Mepacrine (10 $\mu$M), oleyloxyethyl phosphorylcholine (10 $\mu$M) and bromoenol lactone (10 $\mu$M) did not affect both the level of histamine release and ROS generation induced by HCI. U73122 (1 $\mu$M), a specific phospholipase C (PLC) inhibitor did not have any influence on level of histamine release and ROS generation. Propranolol (200 $\mu$M), a phospholipase D (PLD) inhibitor, and neomycin (1 mM), a nonspecific PLC and PLD inhibitor, significantly inhibited both histamine release and ROS generation. Diphenyleneiodonium (10 $\mu$M), a NADPH oxidase inhibitor, and tiron (5 mM), an intracellular ROS scavenger significantly inhibited the HCI-induced histamine release and ROS generation. These findings suggest that the inflammatory responses to HCI is related to histamine release and ROS generation, and that the ROS generation by HCI may be involved in histamine release via the PLD pathway in RBL-2H3 cells.
Objectives: This study examined whether Lycii Radicis Cortex has an inhibitory effect on inflammatory response through an oxidative stress and advanced glycation endproducts (AGEs)-mediated pathway in streptozotocin (STZ)-induced type 1 diabetic rats. Methods: Lycii Radicis Cortex was orally administered to STZ-induced diabetic rats in doses of 80 or 160 mg/kg body weight/day for 2 weeks, and its effects were compared with those of diabetic control and normal rats. Results: The administration of Lycii Radicis Cortex decreased the elevated serum urea nitrogen and renal reactive oxygen species (ROS), and reduced the increased AGEs in the serum and kidney. The elevated protein expressions of nicotinamide adenine dinucleotide phosphate (NADPH) oxidase subunits in the kidney of diabetic control rats were significantly decreased after Lycii Radicis Cortex treatments. Moreover, the kidney of diabetic rats exhibited the up-regulation of receptor for AGEs (RAGE) and AGEs-related proteins; however, Lycii Radicis Cortex treatment also significantly reduced those expressions (excepted RAGE). In addition, the diabetic rats exhibited an up-regulation of the expression of proteins related to inflammation in the kidney, but Lycii Radicis Cortex administration reduced significantly the expression of the inflammatory proteins through the nuclear factor-kappa B (NF-${\kappa}B$) and activator protein-1 (AP-1) pathways. Conclusions: This study provides scientific evidence that Lycii Radicis Cortex exerts the antidiabetic effect by inhibiting the expressions of AGEs and NF-${\kappa}B$ in the STZ-induced diabetic rats.
Kim, Hae Jin;Yoo, Hae Young;Zhang, Yin Hua;Kim, Woo Kyung;Kim, Sung Joon
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.21
no.6
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pp.687-694
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2017
Plumbagin, a hydroxy 1,4-naphthoquinone compound from plant metabolites, exhibits anticancer, antibacterial, and antifungal activities via modulating various signaling molecules. However, its effects on vascular functions are rarely studied except in pulmonary and coronary arteries where NADPH oxidase (NOX) inhibition was suggested as a mechanism. Here we investigate the effects of plumbagin on the contractility of skeletal artery (deep femoral artery, DFA), mesenteric artery (MA) and renal artery (RA) in rats. Although plumbagin alone had no effect on the isometric tone of DFA, $1{\mu}M$ phenylephrine (PhE)-induced partial contraction was largely augmented by plumbagin (${\Delta}T_{Plum}$, 125% of 80 mM KCl-induced contraction at $1{\mu}M$). With relatively higher concentrations (>$5{\mu}M$), plumbagin induced a transient contraction followed by tonic relaxation of DFA. Similar biphasic augmentation of the PhE-induced contraction was observed in MA and RA. VAS2870 and GKT137831, specific NOX4 inhibitors, neither mimicked nor inhibited ${\Delta}T_{Plum}$ in DFA. Also, pretreatment with tiron or catalase did not affect ${\Delta}T_{Plum}$ of DFA. Under the inhibition of PhE-contraction with L-type $Ca^{2+}$ channel blocker (nifedipine, $1{\mu}M$), plumbagin still induced tonic contraction, suggesting $Ca^{2+}$-sensitization mechanism of smooth muscle. Although ${\Delta}T_{Plum}$ was consistently observed under pretreatment with Rho A-kinase inhibitor (Y27632, $1{\mu}M$), a PKC inhibitor (GF 109203X, $10{\mu}M$) largely suppressed ${\Delta}T_{Plum}$. Taken together, it is suggested that plumbagin facilitates the PKC activation in the presence of vasoactive agonists in skeletal arteries. The biphasic contractile effects on the systemic arteries should be considered in the pharmacological studies of plumbagin and 1,4-naphthoquinones.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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