Many ligands have been experimentally designed and tested for their activities as inhibitors against bacterial enoyl-ACP reductase (FabI), ENR. Here the binding energies of the reported ligands with the E. coli ENR-$NAD^+$ were calculated, analyzed and compared, and their molecular dynamics (MD) simulation study was performed. IDN, ZAM and AYM ligands were calculated to have larger binding energies than TCL and IDN has the largest binding energy among the considered ligands (TCL, S54, E26, ZAM, AYM and IDN). The contribution of residues to the ligand binding energy is larger in E. coli ENR-NAD+-IDN than in E. coli ENR-$NAD^+$-TCL, while the contribution of $NAD^+$ is smaller for IDN than for TCL. The large-size ligands having considerable interactions with residues and $NAD^+$ have many effective functional groups such as aromatic $\pi$ rings, acidic hydroxyl groups, and polarizable amide carbonyl groups in common. The cation-$\pi$ interactions have large binding energies, positively charged residues strongly interact with polarisable amide carbonyl group, and the acidic phenoxyl group has strong H-bond interactions. The residues which have strong interactions with the ligands in common are Y146, Y156, M159 and K163. This study of the reported inhibitor candidates is expected to assist the design of feasible ENR inhibitors.
dTDP-D-glucose 4,6-dehydratase (TDPDH) catalyzes the conversion of dTDP-D-glucose to dTDP-4-keto-6-deoxy-D-glucose, and requires $NAD^+$ as a coenzyme for its catalytic activity. The dTDP-D-glucose 4,6-dehydratase from Streptomyces antibioticus $Tu{\ddot}99$ tightly binds $NAD^+$ [19]. In order to determine the role of lysine-148 in the $NAD^+$ binding, the lysine of the dTDP-D-glucose 4,6-dehydratase from Streptomyces antibioticus $Tu{\ddot}99$ was mutated to various amino acids by site-directed mutagenesis. The catalytic activity of the four mutated enzymes of TDPDH did not recover after addition of $NAD^+$ . However, the activity of K159A, the mutated enzyme of UDP-D-glucose 4-epimerase (UDPE), recovered after the addition of $NAD^+$ [15]. Although dTDP-glucose 4,6-dehydratase, and UDP-galactose (glucose) 4-epimerase are members of the short-chain dehydrogenase/reductase SDR family and the lysine-148 of TDPDH was highly conserved as in UDPE (Lys-159), the function of the lysine-148 of TDPDH was different from that of UDPE. The mutated enzymes showed that the lysine-148 of the dTDP-D-glucose 4,6-dehydratase played no role in the $NAD^+$ binding. Accordingly, it is suggested that the lysine-148 of the dTDP-D-glucose 4,6-dehydratase is involved in the folding of TDPDH.
Gyeong Soo Ko;Thang Quyet Nguyen;Seri Koh;Wonchull Kang
Journal of the Korean Chemical Society
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v.68
no.1
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pp.32-39
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2024
Glycerol dehydrogenase (GlyDH) plays a crucial role in the glycerol metabolism pathway by catalyzing the oxidation of glycerol to dihydroxyacetone (DHA). Previous studies of GlyDH have predominantly focused on unraveling the structural features of the active site and its binding interactions with ligand. However, the structural details of GlyDH in complex with both NAD+ and the substrate bound have remained elusive. In this study, we present the crystal structures of Klebsiella pneumoniae GlyDH (KpGlyDH) in the absence and presence of NAD+ at a resolution of 2.1 Å. Notably, both structures reveal the binding of the substrate, ethylene glycol, to the zinc ion. Interestingly, a significant change in the coordination number of the zinc ion is observed, with three in the absence of NAD+ and four in its presence. These findings shed light on the structural aspects of GlyDH and its interactions with NAD+ and the substrate.
Acetylcarnitine, a metabilite of carnitine, has been porven to be a potent inhibitor of ethanol oxidation in hepatocytes. It inhibits the activity of alcohol dehydrognase (ADH), but not the microsomal ethanol oxidizing system. which was significatly inhibited by acetylcarnitine at NAD ; acetylcarnitine $\leq$1. the main objectives of his study were to ascertain the interaction between acetylcarnitine and NAD on ADH activity and to elucidate whether different species have different effects. Tehpost-mocrosomal supernatant (PMS) was prepared from normal rat, guinea pig, mouse and broilers by differential centrifugation . Horse and yeast ADH were purchased from the Sigma Chemical Co. Prepared and purchased ADH are used for determination of ADH activity in the presence or absence of carnitine and acetylcar- nitine. Binding studies showed that acetylcarnitine did bind to ADH in a dose realted manner when low NAD ; acetylcar- nitine ratio was provided. It was found that the inhibitionof ADH activity occurred only when NAD concentration was less than the inhibitor concentration . Crystalline and crude ADH preparation from different vertebrate species wer inhibited by acetylcarnitine, whereas the yeast ADH was not affected by acetylcarnitine.
Min, Kyungjin;Yoon, Hye-Jin;Matsuura, Atsushi;Kim, Yong Hwan;Lee, Hyung Ho
Molecules and Cells
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v.41
no.4
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pp.331-341
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2018
L-pipecolic acid is a non-protein amino acid commonly found in plants, animals, and microorganisms. It is a well-known precursor to numerous microbial secondary metabolites and pharmaceuticals, including anticancer agents, immunosuppressants, and several antibiotics. Lysine cyclodeaminase (LCD) catalyzes ${\beta}$-deamination of L-lysine into L-pipecolic acid using ${\beta}$-nicotinamide adenine dinucleotide as a cofactor. Expression of a human homolog of LCD, ${\mu}$-crystallin, is elevated in prostate cancer patients. To understand the structural features and catalytic mechanisms of LCD, we determined the crystal structures of Streptomyces pristinaespiralis LCD (SpLCD) in (i) a binary complex with $NAD^+$, (ii) a ternary complex with $NAD^+$ and L-pipecolic acid, (iii) a ternary complex with $NAD^+$ and L-proline, and (iv) a ternary complex with $NAD^+$ and L-2,4-diamino butyric acid. The overall structure of SpLCD was similar to that of ornithine cyclodeaminase from Pseudomonas putida. In addition, SpLCD recognized L-lysine, L-ornithine, and L-2,4-diamino butyric acid despite differences in the active site, including differences in hydrogen bonding by Asp236, which corresponds with Asp228 from Pseudomonas putida ornithine cyclodeaminase. The substrate binding pocket of SpLCD allowed substrates smaller than lysine to bind, thus enabling binding to ornithine and L-2,4-diamino butyric acid. Our structural and biochemical data facilitate a detailed understanding of substrate and product recognition, thus providing evidence for a reaction mechanism for SpLCD. The proposed mechanism is unusual in that $NAD^+$ is initially converted into NADH and then reverted back into $NAD^+$ at a late stage of the reaction.
Tiba Nazar Ibrahim Al Azawi;Murtaza Khan;Bong-Gyu Mun;Song-Uk Lee;Da-sol Lee;Waqas Rahim;Anjali Pande;Nusrat Jahan Methela;Cho-Jun Ho;Byung-Wook Yun
Proceedings of the Korean Society of Crop Science Conference
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2022.10a
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pp.143-143
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2022
Plant defense systems against pathogens have been studied extensively and are currently a hot topic in plant science. Using a reverse genetics technique, this study looked into the involvement of the NO-downregulated NAD(P)-binding Rossmann-fold superfamily gene in plant growth and defense in Arabidopsis thaliana. For this purpose, the knockout and overexpressing plant of the candidate gene along with the relevant controls were exposed to control, oxidative and nitro-oxidative stresses. The results showed that candidate gene negatively regulates plants' root and shoot lengths. To investigate the role of the candidate gene in plant basal defense, R-gene-mediated resistance and systemic acquired resistance (SAR) plants were challenged with virulent or avirulent strains of Pseudomonas syringae pathovar tomato (Psf) DC3000. The results showed that the candidate gene negatively regulates plants' basal defense, R-gene-mediated resistance and SAR. Further characterization via GO analysis associated the candidate gene with metabolic and cellular processes and response to light stimulus, nucleotide binding and cellular location in the cytosol and nucleus. Protein structure analysis indicated the presence of a canonical Oxidoreductase family NAD (P)-binding Rossmann fold domain of 120 amino acids with a total of 121 plant homologs across 35 different plant species in the clad streptophyta. Arabidopsis eFP browser showed its expression in almost all the above-ground parts. Protein analysis indicated C225 and C359 as potential targets for S-Nitrosylation by NO. SMART analysis indicated possible interactions with mevalonate/galactokinase, galacturonic acid kinase, arabinose kinase, putative xylulose kinase, GroES-like zinc-binding alcohol dehydrogenase and various glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenases.
A calmodulin-dihydrofolate reductase (DHFR) sandwich fusion protein was generated by insertion of calmodulin into the $\beta$-bulge region of DHFR to observe the effects of structurally constraining the calmodulin structure. The calcium binding properties of the sandwich protein were almost identical to calmodulin. Similar to calmodulin ($10.7 {\mu}M$), the sandwich protein bound four equivalents of calcium, with half saturation ($K_{0.5}$) observed at a [$Ca^{2+}$] of $8{\mu}M$. However, nicotinamide adenine dinucleotide (NAD) kinase activation property of the sandwich protein was lower than that of calmodulin. The sandwich protein activated NAD kinase, but to only half of the level obtained with calmodulin. The K 0.5 for both calmodulin and the sandwich protein were approximately the same (1-2 nM). Methylation analyses of the sandwich protein show that insertion of calmodulin into DHFR results in a large decrease in methylation. The $V_{max}$ observed with the sandwich protein (95 nmole/min/ml) was only 22% of the value observed with calmodulin (436 nmol/min/ml) in the presence of calcium. Addition of trimethoprim to the reaction significantly inhibited the observed methylation rate. Overall, the data suggest that the insertion of calmodulin into the DHFR structure has little effect on calcium binding by the individual lobes of calmodulin, but may constrain the lobes in a manner that results in altered interaction with the calmodulin-dependent proteins, and severely perturbed the methyltransferase recognition site.
An improved procedure for the rapid purification of glucose-6-phosphate dehydrogenase from extracts of Saccharomyces cerevisiae was developed by using affinity chromatography. Among six affinty media tested, NADP$^{+}$-agarose and Affi-gel Blue were more effective than others (i.e., Affi-gel Red, AMP-agarose, ATP-agarose, and NAD$^{+}$-agarose). Conditions to desorb the enzyme bound to the affinity media were examined to increase the purity as well as yield. The best result was obtained when the column was developed with a linear gradient of KCl (0-1.0M). In case of Affi-gel Blue, introduction of NAD$^{+}$ (15mM) washing step prior to the salt gradient was most effective to remove NAD$^{+}$-binding proteins. For a large scale preparation of G-6-P dehydrogenase higher recovery was obtained by Affi-gel Blue than NADP$^{+}$-agarose, however, the purity of the enzyme was decreased by 10 times if the former was used as the affinity medium. The capacity of Affi-gel Blue for G-6-P dehydrogenase was found to be 5 times higher than that of NADP$^{+}$-agarose. Furthermore Affi-gel Blue could be reused repeatedly and its preparation is relatively easier and less expensive than NADP$^{+}$-agarose.X> +/-agarose.
Park, Jun Bae;Park, Hayeong;Son, Jimin;Ha, Sang-Jun;Cho, Hyun-Soo
Molecules and Cells
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v.42
no.8
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pp.597-603
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2019
Glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase (GAPDH) is a core enzyme of the aerobic glycolytic pathway with versatile functions and is associated with cancer development. Recently, Kornberg et al. published the detailed correlation between GAPDH and di- or monomethyl fumarate (DMF or MMF), which are well-known GAPDH antagonists in the immune system. As an extension, herein, we report the crystal structure of MMF-bound human GAPDH at $2.29{\AA}$. The MMF molecule is covalently linked to the catalytic Cys152 of human GAPDH, and inhibits the catalytic activity of the residue and dramatically reduces the enzymatic activity of GAPDH. Structural comparisons between $NAD^+$-bound GAPDH and MMF-bound GAPDH revealed that the covalently linked MMF can block the binding of the $NAD^+$ cosubstrate due to steric hindrance of the nicotinamide portion of the $NAD^+$ molecule, illuminating the specific mechanism by which MMF inhibits GAPDH. Our data provide insights into GAPDH antagonist development for GAPDH-mediated disease treatment.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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