A partition X describes that there exists αi kinds of alleles occurring i loci for each i. All genes have multiple alleles, i.e., they exist in more than two allelic forms, although any one diploid organism can carry no more than two alleles. The number of possible genotypes in a multiple allel series depends on the number of alleles. We will deal with an n locus model in which mutation and gene conversion are taken into consideration. In this paper, we firstly find the probability pn(x) of genotype $$p_{n+1}(x)=p_n(x){\sum\limits_{k=1}^{r}}q_{kx}p_n(k)$$ with the rates of mutation and gene conversion. Also we find the probability of genotype without the rates of mutation and gene conversion and we apply this probability to two examples.
Recently, many researches for plant alkaloids, one of the largest groups of natural products, are reported because of their various pharmacological activity. This study was carried out to clone putrescine N-methyltransferase (PMT) gene which is a key enzyme in diverting polyamine metabolism towards the biosynthesis of nicotine and related alkaloids from Burley tobacco. To induce expression of PMT gene in tobacco plant, the floral meristem was removed and then mRNA was purified from root. cDNA encoding PMT gene was isolated by RT PCR and cloned. Three different groups of clones were screened by PCR and restriction enzyme digestion analysis and were characterized. The data of these screening revealed that three types of PMT are present in Burley tobacco. Comparison of the nucleotide sequence of this three genes encoding putative PMT with those of other tobaccos revealed that two types of PMT are newly discovered from Nicotiana tabacum cv. Br21 tobacco and they were same as PMT2, PMT3 of N. tabacum cv. Xanthi.
The gene for isopenicillin N synthase (cyclase; IPNS) was cloned from Lysobacter lactamgenus using DNA probe amplified with primers based on the consensus sequences of isopenicillin N synthase genes of other ${\beta}$-lactam-producing microorganisms. The genomic library of L. lactamgenus using pUC18 plasmid cloned at the SacI site were screened with the PCR-generated DNA probe and three positive clones were isolated. Enzyme activities in E. coli clones were confirmed by bioassay and HPLC assay. Throughout the functional mapping, it was observed that the gene for isopenicillin N synthase is located at the 1.3-kb XhoI-BamHI fragment of insert of positive clones. Nucleotide sequencing at both ends of the XhoI-BamHI fragment revealed that IPNS of L. lactamgenus has the common amino acid sequences at amino- and carboxy-termini.
To enhance expression of foreign gene by the novel expression vector, pBmKSK1, of Bombyx mori nuclear polyhedrosis virus, E. coli $\beta$-galactosidase gene expressing recombinant virus was infected in BmN-4 cells and various concentrations of silkworm hemolymph were added to the recombinant virus-infected BmN-4 cells containing fetal bovine serum. The expression efficiency of foreign gene was determined by $\beta$-galactosidase activity in the culture media. The results showed that the silkworm hemolymph was effective to expression of foreign gene in the BmN-4 cells, suggesting that the silkworm hemolymph could be substituted for fetal bovine serum in the BmN-4 cells to enhance expression of foreign gene.
A RAG25 gene regulating flowering time was introduced into Codonopsis lanceolata through high efficiencies (ca. 90%) of plant regeneration. The leaf explants were immersed in YEP media containing Agrobacterium tumefaciens (pGA 1209) harboring RAG25 gene, and cocultivated for 3 days. After cocultivation, they were cultured in shoot inducing media (SIM), N2B2 (NAA 2 mg/L, BA 2 mg/L and kanamycin 20 mg/L) and N2B4 (NAA 2 mg/L, BA 4 mg/L and kanamycin 20 mg/L), and the putative transformants were regenerated. The introduction of nptII and RAG25 gene into Codonopsis lanceolata was confirmed by 0.7 kb and 0.6 kb bands from polymerase chain reaction and reconfirmed by Southern hybridization using PCR product of RAG25 gene.
We identified a gene encoding the N-acetylmuramoyl L-alanine amidase (amiB) of Vibrio anguillarum, which catalyzes the degradation of peptidoglycan in bacteria. The entire open reading frame (ORF) of the amiB gene was composed of 1,722 nucleotides and 573 amino acids. The deduced amino acid sequence of AmiB showed a modular structure with two main domains; an N-terminal region exhibiting an Ami domain and three highly conserved, continuously repeating LysM domains in the C-terminal portion. An amiB mutant was constructed by homologous recombination to study the biochemical function of the AmiB protein in V. anguillarum. Transmission electron microscopy (TEM) revealed morphological differences, and that the mutant strain formed trimeric and tetrameric unseparated cells, suggesting that this enzyme is involved in the separation of daughter cells after cell division. Furthermore, inactivation of the amiB gene resulted in a marked increase of sensitivity to oxidative stress and organic acids.
The WL6 strain isolated from Kimchi could not be made scientific name because it was identified as three species, i.e., Leuconostoc mesenternides ssp cremoris, Leu. mesenteroides ssp. dextranicum or Lactobacillus bifermentans when it was tested by API kit or Biolog system methods. The unidentifiable WL6 strain was finally reclassified as Lactobacillus bifermentans by genetic identification using two PCR-based specific sequence primer sets which were originated from homologous pepN and 16S rRNA genes.
In order to isolate a mutant which was constitutively expressed in xylA gene, Pxyl-cat-xylA fusion gene was constructed by the insertion of cat gene between xylA promoter and xylA structural gene in pEX13 contained xylA gene. The expression of cat and xylA gene from transformants of xylA mutant DH77 with plasmid pEXC131 containing Pxyl-cat-xylA fusion gene was induced by the addition of 0.4% xylose to media. This results indicated that cat and xylA gene were expressed under control of xylA promoter the presence of xylR gene. We have also isolated constitutive mutant plasmid pEXC131-39 from pEXC131 by trementment with N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine(NTG). cat and xylA gene from pEXC131-39 were constitutively expressed without induction of xylose regardless of xylR gene. Transformants of xylR mutant DH60 with pEXC131-39 also expressed chloramphenicol resistances and xylose isomerase without induction of xylose. This result shows that mutation in region of xylA promoter might make it possible to be constitutively expressed.
Background: Promoter hypermethylation is a common event in human cancer. O6-methylguanine-DNA methyltransferase (MGMT) is a gene involved in DNA repair, which is methylated in a variety of cancers. We aimed to explore the methylation status of MGMT gene among the North Eastern population where esophageal cancer incidence and exposure to carcinogens like nitrosamines is high. Materials and Methods: A total of 100 newly diagnosed esophageal cancer cases along with equal number of age, sex and ethnicity matched controls were included in this study. Methylation specific PCR was used to determine the MGMT methylation status in serum samples. Results: Aberrant promoter methylation of the MGMT gene was detected in 70% of esophageal cancer cases. Hypermethylation of MGMT gene was found to be influenced by environmental factors like betel quid and tobacco which contain potent carcinogens like nitrosamines. Tobacco chewing and tobacco smoking habit synergistically with MGMT methylation elevated the risk for esophageal cancer development [adjusted OR=5.02, 95% CI=1.35-18.74; p=0.010 for tobacco chewing and Adjusted OR=3.00, 95% CI=1.22-7.36; p=0.014 for tobacco smoking]. Conclusions: Results suggest that the DNA hypermethylation of MGMT is an important mechanism for MGMT gene silencing resulting in esophageal cancer development and is influenced by the environmental factors. Thus MGMT hypermethylation can be used as a biomarker for esophageal cancer in high incidence region of North East India.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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