Myoblast fusion is important for skeletal muscle formation. Even though the knowledge of myoblast fusion mechanism has accumulated over the years, the initial signal of fusion is yet to be elucidated. Our study reveals the novel function of a phosphatidylserine (PS) receptor, stabilin-2 (Stab2), in the modulation of myoblast fusion, through the recognition of PS exposed on myoblasts. During differentiation of myoblasts, Stab2 expression is higher than other PS receptors and is controlled by calcineurin/NFAT signaling on myoblasts. The forced expression of Stab2 results in an increase in myoblast fusion; genetic ablation of Stab2 in mice causes a reduction in muscle size, as a result of impaired myoblast fusion. After muscle injury, muscle regeneration is impaired in Stab2-deficient mice, resulting in small myofibers with fewer nuclei, which is due to reduction of fusion rather than defection of myoblast differentiation. The fusion-promoting role of Stab2 is dependent on its PS-binding motif, and the blocking of PS-Stab2 binding impairs cell-cell fusion on myoblasts. Given our previous finding that Stab2 recognizes PS exposed on apoptotic cells for sensing as an "eat-me" signal, we propose that PS-Stab2 binding is required for sensing of a "fuse-me" signal as the initial signal of myoblast fusion.
The role of polyamines in skeletal myoblast differentiation was investigated using the polyamine metabolic inhibitor methylglyoxal bis(guanylhydrazone)(MGBG). Concentrations of intracellular free spermidine and spermine increased 2 to 2.5-fold at the onset of myoblast fusion. The systhesis of actin, and creatine kinase activity both dramatically increased during myotube formation. However, MGBG at a concentration of 0.5 mM not only abolished the increase of intracellular free polyamines, but also reduced cell fusion to almost half the level of untreated cells, without noticeable morphological alteration. The production of actin, and creatine kinase activity were almost completely abolished by MGBG. The inhibition of myoblast fusion by MGBG was partially recovered with 0.1 mM of spermidine or spermine added externally. Results indicate that polyamines are necessary for normal myoblast differentiation. Since the first indication of myoblast differentiation is alignment of muscle cells and membrane fusion of adjacent cells, and since polyamine depletion completely inhibited the synthesis of actin, which might be associted with membranes, polyamine might be involved in myoblast differentiation through membrane reorganization events.
The differentiation of skeletal muscle precursor cells in culture is marked by the transcriptional activation of muscle-specific genes and the morphological differentiation of myoblast into multinucleate myotube. In this study, we examined the effect of TSA (Trichostatin A) on WF-kB DNA binding activity and muscle cell fusion in the process of myogenesis. Under TSA treatment, C2C12 myoblast could not fuse to myotube and its NF-kB DNA binding activity was also blocked. To investigate whether these phenomenons were affected by TSA in direct or not, differentiation media (DM) used to differentiate cells without TSA was concentrated and added to C2C12 myoblast with TSA simultaneously. C2C12 myoblast was fused to myotube and NF-kB DNA binding activity was recovered. These results suggest that TSA affects on the differentiation of myoblast, perhaps through several factors, by inhibiting myoblst fusion and blocking NF-kB DNA binding activity.
$Ca^{2+}$ influx appears to be important for triggering myoblast fusion. It remains, however, unclear how $Ca^{2+}$ influx rises prior to myoblast fusion. Recently, several studies suggested that NMDA receptors may be involved in $Ca^{2+}$ mobilization of muscle, and that $Ca^{2+}$ influx is mediated by NMDA receptors in C2C12 myoblasts. Here, we report that other types of ionotropic glutamate receptors, non-NMDA receptors (AMPA and KA receptors), are also involved in $Ca^{2+}$ influx in myoblasts. To explore which subtypes of non-NMDA receptors are expressed in C2C12 myogenic cells, RT-PCR was performed, and the results revealed that KA receptor subunits were expressed in both myoblasts and myotubes. However, AMPA receptor was not detected in myoblasts but expressed in myotubes. Using a $Ca^{2+}$ imaging system, $Ca^{2+}$ influx mediated by these receptors was directly measured in a single myoblast cell. Intracellular $Ca^{2+}$ level was increased by KA, but not by AMPA. These results were consistent with RT-PCR data. In addition, KA-induced intracellular $Ca^{2+}$ increase was completely suppressed by treatment of nifedifine, a L-type $Ca^{2+}$ channel blocker. Furthermore, KA stimulated myoblast fusion in a dose-dependent manner. CNQX inhibited not only KA-induced myoblast fusion but also spontaneous myoblast fusion. Therefore, these results suggest that KA receptors are involved in intracellular $Ca^{2+}$ increase in myoblasts and then may play an important role in myoblast fusion.
Transferrin (Tf) has been known to exert profound effect on the myoblast differentiation in uirto. Therefore, the changes in the amount and affinity of the Tf receptor would accompany the myoblast differentiation. To investigate this possibility, we exarnined the afteration pattern in the level of the Tf receptor during the myoblast fusion. The level of Tf receptor was assayed by measuring the bound 125 I-Tf onto the surface of cultured myoblasts, and it was known that the level of Tf receptor reached the maximum at about 12 hr before the initi ation of the myoblast fusion and decreased as the differentiation proceeded, and that the affinity of Tf receptor to Tf was also decreased. In addition, various inhibitiors of the myoblast fusion also influenced the level of the Tf receptor. Accroding to these results, it is postulated that the level of Tf receptor is highly regulated during the myoblast differentiation.
In order to investigate the effect of neurotransmitter on myoblast differentiation in vitro, the effects of dopamine and epinephrine on myoblast fusion and on the intracellular cAMP level in cultured myoblasts were examined. Dopamine $(3\\times10^{-5}M)$ and epinephrine $(3\\times10^{-5}M)$, when added at 34 hr after cell plating, markedly inhibited myoblast fusion, and dopamine was more potent than epinephrine. Both dopamine and epinephrine had no effect on intracellular cAMP level. At the same time, exogeneous dbcAMP, $PGE_1$, and aspirin were used to examine whether cAMP is involved in myoblast differentiation. dbcAMP $(1\\times10^{-4}M)$ inhibited myoblast fusion, whereas $PGE_1 (3\\times10^{-6}M)$ had no inhibitory effect, rather enhancing myoblast fusion. Aspirin, an inhibitor of PG synthetase, was shown to inhibit myoblast fusion. Possible mechanism by which dopamine or epinephrine at a specific concentration used inhibits myoblast fusion is discussed.
Setdb1, an H3-K9 specific histone methyltransferase, is associated with transcriptional silencing of euchromatic genes through chromatin modification. Functions of Setdb1 during development have been extensively studied in embryonic and mesenchymal stem cells as well as neurogenic progenitor cells. But the role of Sedtdb1 in myogenic differentiation remains unknown. In this study, we report that Setdb1 is required for myogenic potential of C2C12 myoblast cells through maintaining the expressions of MyoD and muscle-specific genes. We find that reduced Setdb1 expression in C2C12 myoblast cells severely delayed differentiation of C2C12 myoblast cells, whereas exogenous Setdb1 expression had little effect on. Gene expression profiling analysis using oligonucleotide microarray and RNA-Seq technologies demonstrated that depletion of Setdb1 results in downregulation of MyoD as well as the components of muscle fiber in proliferating C2C12 cells. In addition, exogenous expression of MyoD reversed transcriptional repression of MyoD promoter-driven luciferase reporter by Setdb1 shRNA and rescued myogenic differentiation of C2C12 myoblast cells depleted of endogenous Setdb1. Taken together, these results provide new insights into how levels of key myogenic regulators are maintained prior to induction of differentiation.
Objectives : Decrease in muscle mass and loss of muscle function due to aging are associated with various diseases. As interest in healthy aging increases, efforts to prevent and treat muscle hypoxia as an illness are increasing. Considering the physical limitations, a pharmacologic approach to the treatment of myopenia is needed. Methods : Terminalia chebula Rets has a wide range of pharmacological effects and is used as a medicinal product in traditional medicine. However, the drug effect on the treatment of muscle disorders has not been revealed. The purpose of this study was to evaluate the value of water extract of Terminalia chebula (WETC) as a therapeutic agent to relieve symptoms of muscle hypoxia. Results : WETC showed strong radical scavenging ability. In addition, WETC increased cell activity of myoblast, and we observed that WETC induces myoblast differentiation by immunoblot analysis using differentiation protein markers as well as cell morphology of myoblast. Based on these results, we examined the effect of chebulic acid, chebulagic acid, gallic acid, geraniin, and punicalagin on cell activity and differentiation of myoblasts. Gallic acid significantly increased cell activity of myoblast, and it was found to be an effective substance which not only induces myoblast differentiation but also promotes proliferation. Conclusions : We suggest that the WETC with antioxidant effect and its indicator gallic acid on cell activity, proliferation and differentiation of myoblast can be studied and developed as a food and medicine for prevention and treatment of various muscle diseases.
In order to investigate the mechanism of myoblast fusion during muscle differentiation in culture, the effect of muscle-conditioned medium on the fusion was studied and possible release from cultured myoblast cells of proteins which may be responsible for the promotion of myoblast fusion was analyzed. The muscle-conditioned medium showed a marked fusion-promoting activity in a dose-dependent fashion. THis fusion-promoting activity of the muscle-conditioned medium appeared to be due to the accumulation of at least two proteins which were released from the myoblast into the culture medium. These released proteins were analyzed by electrophoresis and autoradiography and found to have molecular weights of 45,000 and 65,000.
We have previously reported that phosphorylation of eukaryotic elongation factor 2 (eEF2) is related to the differentiation of chick embryonic muscle cells in culture. In the present study, we found that eEF2 phosphorylation declined shortly after induction of differentiation of L6 myoblasts, when the cells prepare for terminal differentiation by withdrawing from the cell cycle. This decrease in phosphorylation was prevented by inhibitors of phosphoinositide 3-kinase (PI3-kinase) that strongly inhibit myoblast differentiation. We hypothesized that PI3-kinase plays an important role in myoblast differentiation by regulating eEF2 phosphorylation in the early stages of differentiation. To test this hypothesis, myoblasts were synchronized at in $G_2/M$ and cultured in fresh differentiation medium (DM) or growth medium (GM). In DM the released cells accumulated in $G_0$/$G_1$ while in GM they progressed to S phase. In addition, cyclin D1 was more rapidly degraded in DM than in GM, and eEF2 phosphorylation decreased more. Inhibitors of PI3-kinase increased eEF2 phosphorylation, but PI3-kinase became more activated when eEF2 phosphorylation declined. These results suggest that the regulation of L6 myoblast differentiation by PI3-kinase is related to eEF2 phosphorylation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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