This study evaluated the effects of γ-aminobutyric acid (GABA)-enriched fermented sea tangle (GFST), as a functional food, on brain derived neurotrophic factor (BDNF)-related muscle growth and lipolysis, in a sarcopenic obesity high-risk group. Twenty-one middle-aged women (53-63 y) participated in this randomized, double-blind, placebo controlled study. Participants ingested either 1,000 mg of GFST (n = 10) or a sucrose placebo (CON) (n = 11) everyday, for 8 weeks. Subjects were asked to abstain from any regular exercise. Fasting venous blood samples, body composition and muscular strength were measured before and after supplementation period. Collectively, we demonstrated that GFST significantly decreased total fat mass and triglyceride in body composition, as well as significantly increasing serum BDNF (p < 0.001), angiotensin converting enzyme (p < 0.001), human growth hormone and insulin-like growth factor-1 levels (p < 0.05 and p < 0.05, respectively) accompanied by increased total lean mass (p < 0.01). Furthermore, the reported improvements in total work, knee extension and flexion at 60° s−1 (p < 0.05), and peak torque normalized to body weight of knee flexion at 60° s−1 (p < 0.05), support an ergogenic effect of GABA associated with increased growth factor levels. The use of GFST, as a functional food ingredient, to elicit anti-obesity effects and stimulate the release of muscle-related growth factors with increasing serum BDNF levels may provide a protective intervention for age-related degeneration such as sarcopenic obesity.
Although exercise-induced growth factors such as Insulin-like growth factor-I (IGF-I) are known to affect various aspects of physiology in skeletal muscle cells, the molecular mechanism by which IGF-I modulates anti-inflammatory effects in these cells is presently unknown. Here, we showed that IGF-I stimulation suppresses the expression of toll-like receptor 4 (TLR4), a key innate immune receptor. A pharmacological inhibitor study further showed that PI3K/Akt signaling pathway is required for IGF-I-mediated negative regulation of TLR4 expression. Furthermore, IGF-I treatment reduced the expression of various NF-${\kappa}B$-target genes such as TNF-${\alpha}$ and IL-6. Taken together, these findings indicate that the anti-inflammatory effect of exercise may be due, at least in part, to IGF-I-induced suppression of TLR4 and subsequent downregulation of the TLR4-dependent inflammatory signaling pathway.
Kim, Hye Jin;Hwang, Ji Sun;Kwak, Yi-Sub;Lee, Won Jun
Journal of Life Science
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v.22
no.12
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pp.1651-1657
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2012
Plectin and microtubule actin cross-linking factor 1 (MACF1) are architectural proteins that contribute to the function of skeletal muscle as generators of mechanical force. However, the influence of insulin- like growth factor-I (IGF-I), a master regulator of skeletal muscle cells, on plectin and MACF1 in skeletal muscle cells has not been demonstrated. The effect of IGF-I on plectin and MACF1 gene expression was investigated by treating differentiated C2C12 murine skeletal muscle cells with 20 ng/ml of IGF-I at different time points. The IGF-I treatment increased plectin protein expression in a dose-dependent manner. The mRNA level of plectin was measured by real-time quantitative PCR to determine if plectin induction was regulated pretranslationally. IGF-I treatment resulted in a very rapid induction of plectin mRNA transcript in C2C12 myotubes. Plectin mRNA increased by 140 and 180% after 24 and 48 hours of IGF-I treatment, respectively, and returned to the control level after 72 hours of IGF-I treatment. MACF1 mRNA increased 86 and 90% after 24 and 48 hours of IGF-I treat-ment, respectively, and returned to the control level after 72 hours of IGF-I treatment. These results suggested that the plectin gene is regulated pretranslationally by IGF-I in skeletal muscle cells. In conclusion, IGF-I induces a rapid transcriptional modification of the plectin and MACF1 genes in C2C12 skeletal muscle cells and has modulating effects on a cytolinker protein as well as on contractile proteins.
It is well established that brain-derived neurotrophic factor (BDNF) is expressed not only in the brain but also in skeletal muscle, and is required for normal neuromuscular system function. Histone deacetylases (HDACs) and insulin-like growth factor-I (IGF-I) are potent regulators of skeletal muscle myogenesis and muscle gene expression, but the mechanisms of HDAC and IGF-I in skeletal muscle-derived BDNF expression have not been examined. In this study, we examined the effect of IGF-I and suberoylanilide hydroxamic acid (SAHA), a pan-HDAC inhibitor, on BDNF induction. Proliferating or differentiating C2C12 skeletal muscle cells were treated with increasing concentrations (0-50 ng/ml) of IGF-I in the absence or presence of $5{\mu}M$ SAHA for various time periods (3-24 hr). Treatment of C2C12 cells with IGF-I resulted in a dose- and time-dependent decrease in BDNF mRNA expression. However, inhibition of HDAC led to a significant increase in the expression of BDNF mRNA levels. In addition, immunocytochemistry revealed high BDNF protein levels in undifferentiated C2C12 skeletal muscle cells, whether untreated, IGF-I-treated, or exposed to SAHA. These results represent the first evidence that IGF-I can suppress the mRNA and protein expression of BDNF; conversely, SAHA attenuates the effects of IGF-I. Consequently, SAHA upregulates BDNF expression in C2C12 skeletal muscle cells.
Nho, Un Seok;Kim, Yeo Hyang;Hyun, Myung Chul;Lee, Sang Bum
Clinical and Experimental Pediatrics
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v.46
no.2
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pp.167-172
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2003
Purpose : Pulmonary vascular hypertension is a common problem in congenital heart disease, the most common cardiac condition in childhood. However, the mechanisms responsible for this pathologic change, treatment, and prevention are poorly understood. Therefore, we studied the gene expression of vascular endothelial growth factor(VEGF) by using a hypoxic model of the pulmonary artery smooth muscle cells. Methods : The main pulmonary artery and its proximal branches of a 6 wk old Fischer rat were excised. They were cut into multiple small pieces and suspended in DMEM medium supplemented with 20% fetal bovine serum and incubated in 5% $CO_2$-95% air atmosphere. The smooth muscle cells were confirmed by immunostaining with smooth muscle myosin and ${\alpha}$-smooth muscle actin antibodies. The VEGF gene expression in the hypoxic group was compared with the one in control the group as well as the one in the starved group by RT-PCR and Northern blot hybridization. Results : There was no statistically significant difference among the control, hypoxic and starved groups. Conclusion : There are few studies of pulmonary vascular hypertension at the molecular level in Korea. Therefore, we studied the expression of VEGF gene in hypoxic pulmonary vascular smooth muscle cells. Further studies will be needed to find the difference between newly born and adult rats, or human and rat pulmonary vascular smooth muscle cells in gene expression. We hope that the study will lead to a better understanding of pulmonary vascular hypertension.
Connective tissue growth factor (CTGF) is a novel fibrotic mediator, which is considered to mediate fibrosis through extracellular matrix (ECM) synthesis in diabetic cardiovascular complications. Statins have significant immunomodulatory effects and reduce vascular injury. We therefore examined whether fluvastatin has anti-fibrotic effects in vascular smooth muscle cells (VSMCs) and elucidated its putative transduction signals. We show that advanced glycation end products (AGEs) stimulated CTGF mRNA and protein expression in a time-dependent manner. AGE-induced CTGF expression was mediated via ERK1/2, JNK, and Egr-1 pathways, but not p38; consequently, cell proliferation and migration and ECM accumulation were regulated by CTGF signaling pathway. AGE-stimulated VSMC proliferation, migration, and ECM accumulation were blocked by fluvastatin. However, the inhibitory effect of fluvastatin was restored by administration of CTGF recombinant protein. AGE-induced VSMC proliferation was dependent on cell cycle arrest, thereby increasing G1/G0 phase. Fluvastatin repressed cell cycle regulatory genes cyclin D1 and Cdk4 and augmented cyclin-dependent kinase inhibitors p27 and p21 in AGE-induced VSMCs. Taken together, fluvastatin suppressed AGE-induced VSMC proliferation, migration, and ECM accumulation by targeting CTGF signaling mechanism. These findings might be evidence for CTGF as a potential therapeutic target in diabetic vasculature complication.
Aging in mammals, including humans, is accompanied by loss of bone and muscular function and mass, characterized by osteoporosis and sarcopenia. Although resistance exercise training (RET) is considered an effective intervention, its effect is blunted in some elderly individuals. Fibroblast growth factor (FGF) and its receptor, FGFR, can modulate bone and muscle quality during aging and physical performance. To elucidate this possibility, the FGFR inhibitor NVP-BGJ398 was administrated to C57BL/6n mice for 8 weeks with or without RET. Treatment with NVPBGJ398 decreased grip strength, muscular endurance, running capacity and bone quality in the mice. FGFR inhibition elevated bone resorption and relevant gene expression, indicating altered bone formation and resorption. RET attenuated tibial bone resorption, accompanied by changes in the expression of relevant genes. However, RET did not overcome the detrimental effect of NVP-BGJ398 on muscular function. Taken together, these findings provide evidence that FGFR signaling may have a potential role in the maintenance of physical performance and quality of bone and muscles.
It is well known that both insulin-like growth factor-I and suppressor of cytokine signaling-3 (SOCS-3) are known to modulate various aspects of physiology in skeletal muscle cells. Furthermore, although SOCS-3 expression is related to insulin resistance in non-skeletal muscle cells and is known to interact with insulin-like growth factor-I receptor, the effect of IGF-I on SOCS-3 gene expression in skeletal muscle cells is presently unknown. C2C12 myotubes were treated with different concentrations (0-200 ng/ml) of IGF-I or for various periods of time (3-72 hr). Immunofluorescent staining image revealed that IGF-I induced SOCS-3 protein expression in a dose-dependent manner. Western blot data also showed that SOCS-3 proteins were induced by IGF-I (200 ng/ml) in C2C12 myotubes in a time-dependent manner. The level of SOCS-3 mRNA was also significantly increased after 3hr of IGF-I (10-100 ng/ml) treatment. However, the levels of SOCS-3 mRNA were significantly decreased after 24 and 48 hr of IGF-I (10-100 ng/ml) treatment compared to the control. In conclusion, SOCS-3 protein is induced by IGF-I treatment in C2C12 skeletal muscle cells and this induction is regulated pretranslationally. The modulating effect of IGF-I on SOCS-3 expression may be an important regulator of gene expression in skeletal muscle cells.
The platelet-derived growth factor (PDGF) signaling pathway is essential for inducing a dedifferentiated state of vascular smooth muscle cells (VSMCs). Activation of PDGF inhibits smooth muscle cell (SMC)-specific gene expression and increases the rate of proliferation and migration, leading to dedifferentiation of VSMCs. Recently, microRNAs have been shown to play a critical role in the modulation of the VSMC phenotype in response to extracellular signals. However, little is known about microRNAs regulated by PDGF in VSMCs. Herein, we identify microRNA- 15b (miR-15b) as a mediator of VSMC phenotype regulation upon PDGF signaling. We demonstrate that miR-15b is induced by PDGF in pulmonary artery smooth muscle cells and is critical for PDGF-mediated repression of SMC-specific genes. In addition, we show that miR-15b promotes cell proliferation. These results indicate that PDGF signaling regulates SMC-specific gene expression and cell proliferation by modulating the expression of miR-15b to induce a dedifferentiated state in the VSMCs.
Objective: Skeletal muscle satellite cells (SMSCs) are significant for the growth, regeneration, and maintenance of skeletal muscle after birth. However, currently, few studies have been performed on the isolation, culture and inducing differentiation of goose muscle satellite cells. Previous studies have shown that C1q and tumor necrosis factor-related protein 3 (CTRP3) participated in the process of muscle growth and development, but its role in the goose skeletal muscle development is not yet clear. This study aimed to isolate, culture, and identify the goose SMSCs in vitro. Additionally, to explore the function of CTRP3 in goose SMSCs. Methods: Goose SMSCs were isolated using 0.25% trypsin from leg muscle (LM) of 15 to 20 day fertilized goose eggs. Cell differentiation was induced by transferring the cells to differentiation medium with 2% horse serum and 1% penicillin streptomycin. Immunofluorescence staining of Desmin and Pax7 was used to identify goose SMSCs. Quantitative realtime polymerase chain reaction and western blot were applied to explore developmental expression profile of CTRP3 in LM and the regulation of CTRP3 on myosin heavy chains (MyHC), myogenin (MyoG) expression and Notch signaling pathway related genes expression. Results: The goose SMSCs were successfully isolated and cultured. The expression of Pax7 and Desmin were observed in the isolated cells. The expression of CTRP3 decreased significantly during leg muscle development. Overexpression of CTRP3 could enhance the expression of two myogenic differentiation marker genes, MyHC and MyoG. But knockdown of CTRP3 suppressed their expression. Furthermore, CTRP3 could repress the mRNA level of Notch signaling pathway-related genes, notch receptor 1, notch receptor 2 and hairy/enhancer-of-split related with YRPW motif 1, which previously showed a negative regulation in myoblast differentiation. Conclusion: These findings provide a useful cell model for the future research on goose muscle development and suggest that CTRP3 may play an essential role in skeletal muscle growth of goose.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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