${\beta}Pix$ is a guanine nucleotide exchange factor for the Rho family small GTPases, Rac1 and Cdc42. It is known to regulate focal adhesion dynamics and cell migration. However, the in vivo role of ${\beta}Pix$ is currently not well understood. Here, we report the production and characterization of ${\beta}Pix$-KO mice. Loss of ${\beta}Pix$ results in embryonic lethality accompanied by abnormal developmental features, such as incomplete neural tube closure, impaired axial rotation, and failure of allantois-chorion fusion. We also generated ${\beta}Pix$-KO mouse embryonic fibroblasts (MEFs) to examine ${\beta}Pix$ function in mouse fibroblasts. ${\beta}Pix$-KO MEFs exhibit decreased Rac1 activity, and defects in cell spreading and platelet-derived growth factor (PDGF)-induced ruffle formation and chemotaxis. The average size of focal adhesions is increased in ${\beta}Pix$-KO MEFs. Interestingly, ${\beta}Pix$-KO MEFs showed increased motility in random migration and rapid wound healing with elevated levels of MLC2 phosphorylation. Taken together, our data demonstrate that ${\beta}Pix$ plays essential roles in early embryonic development, cell spreading, and cell migration in fibroblasts.
Growth factors (GFs) produced by the embryo or by the maternal reproductive tract have been reported to regulate the embryonic development and differentiation. Among GFs, EGF as a mitogen plays a role in mitosis and functional differentiation of trophectoderm cells in mouse. The present study was carried out to investigate the effect of EGF on development of mouse embryos and to localize EGF in the mouse oocytes and embryos, which has been reported to be detected in the reproductive tract in mammals. To investigate the effect of EGF on the development of the embryo, mouse 2-cell embryos were cultured to blastocysts stage in Ham's F10 medium, treated with EGF(10-50 ng/ml) for 72 hrs. Immunocytochemistry was performed from oocyte to blastocyst stage with anti-EGF and anti-Mouse IgG, in order to determine the stage which EGF would be expressed in mouse. Exogenous EGF (more than 10 ng/ml) in the culture medium improved the developmental and hatching rates in the mouse embryos. As a result of immunocytochemistry, the embryonic EGF was expressed after the late 4-cell stage. EGF is thought to enhance preimplantation embryonic development and hatching. Exogenous EGF in the culture medium is thought to activate EGF receptor in the late 4-cell embryos and to enhance blastulation and hatching in mouse embryos. It is concluded that EGF enhances the developmental and hatching rates in the mouse embryos.
Stored maternal factors in oocytes regulate oocyte differentiation into embryos during early embryonic development. Before zygotic gene activation (ZGA), these early embryos are mainly dependent on maternal factors for survival, such as macromolecules and subcellular organelles in oocytes. The genes encoding these essential maternal products are referred to as maternal effect genes (MEGs). MEGs accumulate maternal factors during oogenesis and enable ZGA, progression of early embryo development, and the initial establishment of embryonic cell lineages. Disruption of MEGs results in defective embryogenesis. Despite their important functions, only a few mammalian MEGs have been identified. In this review we summarize the roles of known MEGs in mouse fertility, with a particular emphasis on oocytes and early embryonic development. An increased knowledge of the working mechanism of MEGs could ultimately provide a means to regulate oocyte maturation and subsequent early embryonic development.
In differentiating human embryonic stem (d-hES) cells there are a number of types of cells which may secrete various nutrients and helpful materials for pre-implantation embryonic development. This study examined whether the d-hES could function as a feeder cell in vitro to support mouse embryonic development. By RT-PCR analysis, the d-hES cells revealed high expression of three germ-layered differentiation markers while having markedly reduced expression of stem cell markers. Also, in d-hES cells, LIF expression in embryo implantation-related material was confirmed at a similar level to undifferentiated ES cells. When mouse 2PN embryos were cultured in control M16 medium, co-culture control CR1aa medium or co-cultured with d-hES cells, their blastocyst development rate at embryonic day 4 (83.9%) were significantly better in the d-hES cell group than in the CR1aa group (66.0%), while not better than in the M16 group (90.7%)(p<0.05). However, at embryonic days 5 and 6, embryo hatching and hatched-out rates of the dhES cell group (53.6 and 48.2%, respectively) were superior to those of the M16 group (40.7 and 40.7%, respectively). At embryonic day 4, blastocysts of the d-hES cell group were transferred into pseudo-pregnant recipients, and pregnancy rate (75.0%) was very high compared to the other groups (M16, 57.1%; CR1aa, 37.5%). In addition, embryo implantation (55.9%) and live fetus rate (38.2%) of the d-hES cell group were also better than those of the other groups (M16, 36.7 and 18.3%, respectively; CR1aa, 23.2 and 8.7%, respectively). These results demonstrated that d-hES cells can be used as a feeder cell for enhancing in vitro and in vivo developmental potential of mouse pre-implantation embryos.
It is well known that PR/SET family members participate in transcriptional regulation via chromatin remodeling. PRDM10 might play an essential role in gene expression, but no such evidence has been observed so far. To assess PRDM10 expression at various stages of mouse development, we performed immunohistochemistry using available PRDM10 antibody. Embryos were obtained from three distinct developmental stages. At E8.5, PRDM10 expression was concentrated in the mesodermal and neural crest populations. As embryogenesis proceeded further to E13.5, PRMD10 expression was mainly in mesoderm-derived tissues such as somites and neural crest-derived populations such as the facial skeleton. This expression pattern was consistently maintained to the fetal growth period E16.5 and adult mouse, suggesting that PRDM10 may function in tissue differentiation. Our study revealed that PRDM10 might be a transcriptional regulator for normal tissue differentiation during mouse embryonic development.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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2003.11a
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pp.87-87
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2003
Taurine (2-aminoethanesulfonic acid, $^{+}NH_3CH_2CH_2{SO_3}^{-}$) is endogenous $\beta$-amino acid which is essential in fetal nutrition and development and is present in abundant quantities in several tissues of fetus. In utero, taurine deficiency causes abnormal development and abnormal function of brain, retina, kidney and myocardium. Thus, transfer of taurine into fetus is important during embryonic development. Taurine transporter (TauT) has 12 hydrophobic membrane -spanning domains, which is typical of the $Na^{+}$- and $Cl^{-}$-dependent transporter gene family. Among the various biosynthetic enzymes of taurine, cysteine sulfinic acid decarboxylase (CSD) is the rate-limiting enzyme for biosynthesis of taurine. However, the enzyme activities of taurine biosynthesis are limited in early stage of embryonic development. To analyze the expression period of TauT and CSD during embryonic development, we have investigated the gene expression of TauT and CSD using reverse transcriptase polymerase chain reaction (RT-PCR) in mouse and chicken embryos. RT-PCR anaylsis revealed that both TauT and CSD mRNAs were already expressed at Day-4.5 in mouse embryo. In chicken whole embryo, TauT and CSD mRNAs began to appear on developing times of 48 hrs and 12 hrs, respectively. TauT mRNA was detected in the organs of heart, brain and eye of the day-3 chicken embryo. Our data show that TauT and CSD mRNAs were expressed in early stage of embryonic development.
Embryonic stem (ES) cells have a capability to generate all types of cells. However, the mechanism by which ES cells differentiate into specific cell is still unclear. Using microarray technology, the differentiation process in mouse embryonic stem cells was characterized by temporal gene expression changes of mouse ES cells during differentiation in a monolayer culture. A large number of genes were differentially regulated from 1 day to 14 days, and less number of genes were differentially expressed from 14 days to 28 days. The number of up-regulated genes was linearly increased throughout the 28 days of in vitro differentiation, while the number of down-regulated genes reached the plateau from 14 days to 28 days. Most differentially expressed genes were functionally classified into transcriptional regulation, development, extra cellular matrix (ECM),cytoskeleton organization, cytokines, receptors, RNA processing, DNA replication, chromatin assembly, proliferation and apoptosis related genes. While genes encoding ECM proteins were up-regulated, most of the genes related to proliferation, chromatin assembly, DNA replication, RNA processing, and cytoskeleton organization were down-regulated at 14 days. Genes known to be associated with embryo development or transcriptional regulation were differentially expressed mostly after 14 days of differentiation. These results indicate that the altered expression of ECM genes constitute an early event during the spontaneous differentiation, followed by the inhibition of proliferation and lineage specification. Our study might identify useful time-points for applying selective treatments for directed differentiation of mouse ES cells.
The present study was designed to define the role of prostaglandin in the development and hatching of mouse embryo. The effects of indomethacin, an inhibitor of prostaglandin synthesis, on the development and hatching of morula and blastocyst were examined. In early morula stage, embryos were degenerated significantly at 100 ${\mu}M$ and 200 ${\mu}M$ indomethacin. However, the viability of embryos was not influenced by concentration in any other embryonic stages. In all embryonic stages, the hatching was suppressed with concentration dependent manner, but expansion was not suppressed. Particularly, in 84h embryos post hCG injection, the hatching was suppressed significantly compared with post hCG 72h or 96h embryos. When embryos were treated with 100 ${\mu}M$ indomethacin for a specific time (12h) in according to the development stage, the hatching was suppressed all groups. These suppressional effect was decreased as embryonic development stage was progressed. However, the expansion was not affected in all treatment group. This study suggests that hatching-related metabolic substances are synthesized from morula stage and intraembryonic signaling mediated prostaglandin was important for development and hatching of mouse embryo.
This study was carried out to investigate the inhibiting or promoting effect of fetal bovine serum fractionated by the molecular weight and to examine the effect of reconstruction of serum fractions on the development of 1- and 2-cell mouse embryos fertilized in vitro (IVEE) . The serum was separated by ultrafiltration or gel filtration methods and added in m-KRB medium for culture of IVFE. The developemental ability(cavitation and hatching) of embryos following culture of day 4 and 6 was compared among fractions. Small molecular weight fraction( <3 kDa) significantly inhibited the development of 1-and 2-cell IVFE to the blastocyst stages, compared with other fractions. One-cell IVFE were more sensitively damaged than 2-cell embryos by that fraction and arrested mainly at 2~4 cell stages. Moreover, small amount(<3%,v /v) of the inhibiting fraction acted even with protein rich fraction(100~30 kDa) and arrested the embryonic development. On the other hand, 100~30 kDa fraction promoted the embryonic development and no inhibiting effect was observed at the level of 50%(v /v) in culture medium In the experiment of gel filtraton, =30 kDa fraction showed the highest promoting effect on the embryonic development, but <4 kDa fraction inhibited significantly the development. These results suggest that serum contains not only small molecular weight inhibitory component(s) but also promoting one rather than albumin on embryonic development. And serum can be more effectively used in the IVF program after removal of inhibitory component(s) by one of above separation methods.
The present study was carried out to investigate the effects of EGF and anti-EGF on early embryonic development and hatching in mice. Developmental and hatching rates of mouse em-bryos from 2-cell to morular stage which were cultured in Ham's FlO medium supplemented with EGF (1-1,000 ng/ml) or anti-EGF (whole serum diluted from 1:10 to 1:1,000) were compared to those of control When mouse early 2-cell embryos were cultured in the EGF supplemented medium, blastulation was accelerated compared with control. Hatching rate was also significantly (p
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[게시일 2004년 10월 1일]
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