The in-vitro fertilization in human clinic and animal reproduction is a very important technique but the rate of success is still low. When the in-vitro fertilization and culture of gametes or embryos were done under the condition which Hema hydrogel chamber were implanted into the peritoneal cavity of mouse, the in-vitro fertilization and development of embryos could be significantly improved and the cell-block under in-vitro culture could be overcome. Also, the Rema hydrogel chamber was very useful for the protection of isolated blastomeres. It is concluded that the polymerized Hema (pHema) hydrogel chamber may be effectively used in the fields of embryo transfer and in vitro fertilization.
This study was carried out to investigate the aggregation rate of isolated mouse 2-, 4- and 8-cell stage blastomeres in phytohemagglutinin(PHA) solution. The morphologically normal embryos were collected from the oviduct of superovulated female mouse by flushing with M2 and the zona pellucida of embryos were removed with 0.5% pronase. The blastomeres were isolated by pipetting after plunging into Ca++-Mg++free PBS for 20 min. The result showed that aggregation rate in 0.5% (84.9~93.1%) was higher than that in 1.0% PHA(76.0~82.1%). Optimal aggregation time was 60min (83.9~100.0%) when compared with 30min (78.8~87.5%). Developmental to blastocyst in recombinated blastomeres was higher under conditions of 0.5% PHA solution and 60-min aggregation than that under other conditions.
Development in vitro of 2-cell mouse embryos was examined after appropriate exposure to oviductal milieu to demonstrate biological activity present in the oviducts. ICR and ($C57Bl/6{\times}Balb/c$) $F_1$ hybrid mice were superovulated and mated for the recovery of early embryos. Embryos were recoverd at every 2h intervals from 32h post-hCG(hph) to 56 hph. The proportions of developmental stages were determined in the recovered embryos. Development in vitro of 2-cell embryos was more rapid in $F_1$ hybrid than in ICR, showing high proportions of 4-cell embryo and blastocyst at 120 hph. 100% of blastocyst development was obtained at 38hph in $F_1$ hybrid and at 50 hph in ICR when 2-cell embryos were cultured upto 120hph in vitro. Moreover, in vitro culture of oviducts containing 2-cell embryos in ICR mice for 12h from 34hph to 46hph increased developmental capacity of ICR mouse embryo in vitro. The results indicate that oviductal environment contains substances having mitogenic activity and overcoming early cell block in vitro. The mitogenic activity is effective in vitro as well as in vivo.
Objective : The purpose of the current series of experiments were to assess the effect of GM-CSF, as a medium supplement, on the development of mouse embryos and the expression of LIF and IL-1? mRNA. Materials and Methods: Mouse 2-cell embryos were collected from the oviducts of 6 weeks old ICR mice at 48 hours after hCG injection. Embryos were cultured in P-1 medium supplemented with mouse GM-CSF (0, 1, 5, 10 ng/ml). The embryo development to blastocysts and hatching blastocysts was assessed and the cell number in blastocyst was also examined. Using RT-PCR, the expressions of LIF and IL-1? mRNA in blastocyst were evaluated in the GM-CSF supplemented group and control group. Results: In mouse, the addition of GM-CSF increased the percentage of blastocysts (65.5%, 68.6%, 73.0% and 76.1% for control and 1, 5 and 10 ng/ml, respectively), and increased the proportion of hatching blastocysts (35.2%, 36.4%, 43.2% and 53.0% for control and 1, 5 and 10 ng/ml, respectively). The mean cell numbers in blastocyst were significantly increased in GM-CSF supplemented groups compared to control group. LIF and IL-1? expression in blastocyst were significantly higher in GM-CSF supplemented group than in control group. Conclusion: The results of experiment by mouse embryos showed beneficial effects of GM-CSF as a medium supplement. Furthermore, the addition of GM-CSF significantly increased the expression of LIF and IL-1? in mouse embryos. These results suggest that GM-CSF might be a important molecule in embryo implantation.
Hyeonyeong Shin;Soyeon Kim;Myungyoun Kim;Jaeeun Lee;Dongil Jin
Journal of Animal Science and Technology
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제65권4호
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pp.767-778
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2023
The aim of the research is to identify that porcine oocytes can function as recipients for interspecies cloning and have the ability to develop to blastocysts. Furthermore each mitochondrial DNA (mtDNA) in interspecises cloned embryos was analyzed. For the study, mouse-porcine and porcine-porcine cloned embryos were produced with mouse fetal fibroblasts (MFF) and porcine fetal fibroblasts (PFF), respectively, introduced as donor cells into enucleated porcine oocytes. The developmental rate and cell numbers of blastocysts between intraspecies porcine-porcine and interspecies mouse-porcine cloned embryos were compared and real-time polymerase chain reaction (PCR) was performed for the estimate of mouse and porcine mtDNA copy number in mouse-porcine cloned embryos at different stages.There was no significant difference in the developmental rate or total blastocyst number between mouse-porcine cloned embryos and porcine-porcine cloned embryos (11.1 ± 0.9%, 25 ± 3.5 vs. 10.1 ± 1.2%, 24 ± 6.3). In mouse-porcine reconstructed embryos, the copy numbers of mouse somatic cell-derived mtDNA decreased between the 1-cell and blastocyst stages, whereas the copy number of porcine oocyte-derived mtDNA significantly increased during this period, as assessed by real-time PCR analysis. In our real-time PCR analysis, we improved the standard curve construction-based method to analyze the level of mtDNA between mouse donor cells and porcine oocytes using the copy number of mouse beta-actin DNA as a standard. Our findings suggest that mouse-porcine cloned embryos have the ability to develop to blastocysts in vitro and exhibit mitochondrial heteroplasmy from the 1-cell to blastocyst stages and the mouse-derived mitochondria can be gradually replaced with those of the porcine oocyte in the early developmental stages of mouse-porcine cloned embryos.
내인성 암원유전자인 c-myc유전자는 세포의 증식과 분화에 밀접한 연관되어 있으며, 그의 생물학적인 기능은 이형결합체인 myn과의 결합을 통해서 이루어진다. 본 연구에서는 착상전 생쥐 배아에서의 내인성 c-myc 유전자와 myn 유전자의 발현을 조사하기 위하여 RT-PCR 방법을 이용하였다. myn 유전자 산물은 배아 발생시기를 거쳐서 균일하게 발현된 반면,c-myc 유전자의 발현은 차후 포배기 시기까지 상당한 양으로 증가1세포기에 측정된 후,2세포기에 들어 현저하게 줄었으나, 차후 포배기 시기까지 상당한 양으로 증가하였다. 이러한 c-myc과 myn유전자발현의 비균등한 조화가 중요한 역할을 할 것으로 사료된다. 착상전 생쥐 초기배아 발생 과정에서의 myn 유전자의 기능을 알아 보고자, myn에 대한 antisense oligouncleotides(Myn2, Myn3)를 1세포기이 수정란에 미세주입하였다. Myn2와 Myn3의 미세주입에 의해 상실기/포배기의 변이 시기에 비정상적인 발생이 야기되었다. 이사의 결과로, c-myc은 그의 이형결합체인 myn과 함께 착상전 생쥐 초기배아에서의 중요한 역할을 할 것으로 사료된다.
To determine the effect of calcium on the preimplantational development of mouse two-cell embryo, the various concentrations of calcium were added into the culture media and the rate of blastocyst formation was observed. Also, to examine the effect of trifluoperazine, an inhibitor of calmodulin which is involved in the several intracellular calcium functions, embryos were cultured for 48 hours at the various concentrations of this inhibitor. An additional 24 hour culture was done to examine the effect of this drug on the transformation from morula to blastocyst. The results are as following ; 1. About 1.71mM of extracellular calcium is adequate for blastocyst formation and the higher concentrations of calcium (3.43mM and 8.55mM) do not affect on the blastocyst formation and the degenerating rate. 2. Trifluoperazine $100{\mu}M$ presents the inhibitory effect on the blastocyst formation while $1{\mu}M$ and $10{\mu}M$ do not so. 3. After an additional 24 hour culture, there is transformation of morula to blastocyst and the degenerating rate of embryo is increased all together.
본 연구는 EGF가 체외수정된 생쥐배의 착상전 발달 및 inner cell mass (ICM) 과 trophectoderm (TE) 세포수에 미치는 영향을 조사하고, 그와 더불어 간접 면역형광방법을 이용하여 배 발달 단계에 따른 EGF-receptor (EGF-R) 단백의 발현유무를 조사하기 위해 실시하였다. 그 결과를 요약하면 다음과 같다. 2-세포기 배의 group (5/25 ${\mu}l$)배양은 단독 배양보다 양호한 배 발달을 유도 할 수 있었으며, 단독 배양에서의 저조한 배 발달은 EGF를 첨가함으로서 개선시킬 수 있었다. 특히, 10 ng/ml의 EGF가 첨가된 단독배양군 (62.4%)은 단독대조군 (47.9%)에 비하여 유의하게 높은 배 발달을 나타냈다. 또한, ICM과 TE세포수 공히 EGF첨가에 의해 증가되는 것을 differential labelling기법으로 확인 할 수 있었다. 발달단계에 미치는 EGF의 효과를 검토하였던 바 4-세포기 이후의 배 발달에 유의하게 영향을 미치는 것을 알 수 있었고, 특히 배반포기배의 ICM도 동시에 증가되는 것을 알 수 있었다. 한편, 간접면역형광에 의한 EGF-R의 발현유무를 조사한 결과, 4-세포기 이후에 EGF-R가 발현되는 것을 확인할 수 있었다. 따라서, EGF는 착상전 생쥐배의 4-세포기 이후에 발현되는 EGF-R에 반응하여 배 발달을 유기하며, 또한 배반포기배의 ICM과 TE세포수의 증가에 영향을 미치는 것을 알 수 있었다.
The present experirnents on cryopreservation were carried out to investigate effect of solution toxicity, equilibration time and cell stages on the post-thaw survival of mouse morulae and blastocyst embryos cryopreserved by vitrification in EFS solution. The mouse embryos were exposed to the EFS solution in one step at room temperature, kept in the EFS solution during different period for toxicity test, vitrified in liquid nitrogen and thawed rapidly. After the mouse morulae embryos were exposed to EFS solution for 2 and 5 ruin. at room temperature and then they were washed in 0.5 M sucrose solution and basal mediurn(D-PBS + 10% FCS), they were cultured to examined cryoprotectant toxicity induced injury during exposure, most of embryos developed to expanded blastocysts(100 and 90.0%). However, when the exposure time was extended to 10 and 20 min, these development rates dropped dramatically in 10 ruin. (75.0%) and 20 ruin. (4.5%), respectively. When the compacted morulae were vitrified in EFS solution after equilibration for 2 and 5 min, the embryos have developed to normal blastocyst following thawing, washing and culture processes was 89.3 and 89.6%. However, when the exposure time was expanded to 10 ruin, this survival rate dropped to 68.8%. When the blastocyst were vitrified in EFS solution after equilibration for 2, 5 and 10 minutes, the survival rate of embryos which developed to normal blastocyst following thawing and culture processing were 58.5, 46.7 and 22.4%, respectively. The optimal time of equilibration of mouse morula and blastocysts in EFS solution seemed o be 2 and 5 ruin.
Programmed cell death or apoptosis is associated with changes in $K^+$ concentration in many cell types. Recent studies have demonstrated that two-pore domain $K^+$ ($K_{2P}$) channels are involved in mouse embryonic development and apoptotic volume decrease of mammalian cells. In cerebellar granule neurons that normally undergo apoptosis during the early developmental stage, TASK-1 and TASK-3, members of $K_{2P}$ channels, were found to be critical for cell death. This study was performed to identify the role of $K^+$ channels in the $H_2O_2$-induced or cryo-induced cell death of mouse and bovine embryos. Mouse and bovine two-cell stage embryos (2-cells) exposed to $H_2O_2$ for 4 h suffered from apoptosis. The 2-cells showed positive TUNEL staining. Treatment with high concentration of KCl (25mM) inhibited $H_2O_2$-induced apoptosis of 2-cells by 19%. Cryo-induced death in bovine blastocysts showed positive TUNEL staining only in the cells near the plasma membrane. Cryoprotectant supplemented with 25 mM KCl reduced apoptosis slightly compared to cryoprotectant supplemented with 5 mM KCl. However, the combination of antioxidants (${\beta}$-mercaptoethanol) with 25 mM KCl significantly decreased the rate of $H_2O_2$-induced and cryo-induced apoptosis compared to treatments with only antioxidants or 25 mM KCl. These results show that blockage of $K^+$ channel efflux for a short-time reduces $H_2O_2$- and cryo-induced apoptosis in mouse and bovine embryos. Our findings suggest that apoptosis in mouse and bovine embryos might be controlled by modulation of $K^+$ channels which are highly expressed in a given cell type.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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