Im, K.S.;Kim, H.J.;Chung, K.M.;Kim, H.S.;Park, K.W.;Niwa, K.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제8권4호
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pp.317-320
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1995
The effect of co-culture with cumulus cells and granulosa cells during maturation and development on in vitro developmental potency of follicular oocytes was examined. TCM-199 supplemented with 15% FCS and hormones was used as maturation medium. Sperm from frozen semen was capacitated in modified mTALP medium containing 0.3% BSA, $10{\mu}g/ml$ heparin and 5 mM/ml caffeine. The fertilized embryos were co-cultured on monolayer of cumulus cells or granulosa cells in TCM-199. The embryo co-cultured with cumulus cells showed higher percentage of embryo developed to morula and blastocyst (73.3%) than the embryo co-cultured without cumulus cells (30.8%). The percentage of oocytes developed to morula and blastocyst among cleaved oocytes was significantly (p < 0.05) higher in the oocytes co-cultured with cumulus cells during development (62.4%) than in the oocytes co-cultured with granulosa cells during maturation and with cumulus cells during development (52.3%), and in the oocytes co-cultured with granulose cells during development (52.8%). The results of this study indicate that co-culture of in vitro fertilized embryos with cumulus cells in the development medium increased the rate of embryos developed to morula and blastocyst among cleaved oocytes.
Present studies were conducted to investigate the developmental stage and the location of embryos in the reproductive tract at various times after ovulation, the morphologically normal after thawing of embryos preserved in liquid nitrogen, and the survival after transferring frozen-thawed embryos. The results obtained were as follows: 1. Embryo stage and location in the reproductive tract after hCG administration. For the investigation of embryo stage and location in the reproductive tract after ovulation, rabbits were laparotomized at 24, 40, 48, 72 and 120 hrs post hCG injection, simultaneously with mating. the oviducts and uteri were flushed out with PBS medium containing 50% rabbit serum, respectively. 1) Most of embryos was remained in the oviduct within 48 hrs, with the lapse of time, embryos were started to move to uterus and shifted in uterus at 72 hrs after hCG injection. 2) The representatives of embryos stage collected at 24, 40, 48, 72 and 120 hrs were 1-cell(60.4%), 8-cell to early morula (52.3, 39.3%), late blastocyst (95.5%) stages, respectively. 2. Morphological normality and survival of the frozen-thawed embryos. For the evalution of the quality and viability on the frozen-thawed embryos, immediately after thawing, embryos were assessed by morphologically normal under a dissecting microscope, and a further test of frozen-thawed embryos was made by transferring the morphologically normal embryos to the uteri of recipient rabbit induced pseudopregnancy by the injection of hCG at the time of hCG injection in donor rabbits. 1) The propotions of embryos which a, pp.ared morphologically normal was higher when 8-cell (85.7%) and morula(90.5%) were used for freezing than when 4-cell (66.7%) and blastocyst (75.8%) were used. 2) Preganacies were observed at Day 15 after transfer of frozen-thawed 8-cell (7/13), morula (19/42) and blastocyst (3/19) but not after transfer of embryos at 4-cell stage.
As a preliminary experiment to establish the process on the sexing of mouse embryos by chromosomal analysis, present studies were carried out with inbred (ICR, C57BL) and F1 hybrid [(ICR${\times}$C57BL) = F1 ${\times}$ ICR] mice to investigate the blastomere numbers and mitotic indices (M.I.) to the developmental stage of embryos recovered, the optimum periods of anti-mitotic agent administration, the successful rates of sexing and sex-ratio. The results obtained were summarized as follows: 1. The blastomere numbers (mean${\pm}$S.E.) of the morula and blastocyst were 18${\pm}$0.4 and 54${\pm}$0.7, respectively. 2. Whereas the M.I. of F1 hybrid (16${\pm}$0.2%) was higher than that fo inbred ICR (15${\pm}$0.1%) and C57BL (12${\pm}$0.6%) in the different strains, the morula (7${\pm}$0.6%) was higher than that of blastocyst (6${\pm}$0.4%) in the case of embryo stages. 3. Following to anti-mitotic agents treated, the M.I. of embryos cultured with Colcemid (17${\pm}$1.1%) was superior to that fo embryos cultured with Velban (12${\pm}$0.9%) and the Colcemid injection (7${\pm}$0.4%). 4. The successful rate of sexing in the blastocyst (38.7%; 124/320) was superior to the morula (35.9%; 52/145), and the F1 hybrid (48.1%) was higher than that of inbred ICR (42.4%) and C57 BL (28.2%). 5. In the successful rate of sexing to the methods of administration, the embryos cultured with Colcemid (46.0%) was superior to that of embryos cultured with Velban (39.0%) and the Colcemid injection (38.8%). 6. Of 98 embryos sexed after culture with Colcemid, 89(90.8%) were observed between 2 and 4 hrs. In the case of Velban treatment, 83.1% (74/89) was observed between 2$\frac{1}{2}$ and 4$\frac{1}{2}$ hrs. 7. Out of 761 prepared embryos it was possible to sex 311; 157 were male and 154 were female, i.e.a sex-ratio of 50% a, pp.oximately.
본 연구는 돼지 체외수정란의 발육에 있어서 적절한 에너지 급원을 구명하기 위하여 수행하였는 바, BMOC-II 배양액을 기본배양액으로 하여 여기에 해당과정을 통하여 에너지를 생산하는 glucose와 이 과정에 중요하게 작용하는 phosphate를 실험설계에 따라 첨가한 배 양액에 체외에서 발생된 돼지의 수정란을 배양하여 수정란의 발육에 미치는 영향을 조사하였다. 1. 배양액에 Glucose와 phosphate가 모두 첨가되지 않은 배양액에서 배양된 돼지의 수정란은 15.2%가 4-세포란 이상으로 발육하였으나, 상실배로는 전혀 발육하지 못하였다. 2. 배양액에 첨가된 glucose의 농도는 phosphate의 첨가유무에 관계없이 농도가 높은 처리에서 4-세포기 이상으로 발달한 비율은 감소하였으나, 상실배에 도달한 비율은 증가하는 경향을 나타냈고, phosphate와 함께 첨가되었을 때보다 단독으로 첨가하였을 때가 첨가농도에 관계없이 돼지 체외수정란의 발육능을 증가시켰다.
본 연구는 돼지 수정란의 2, 4, 8세포배 및 상실배로부터 분리된 분할배의 작성율, 발생능 및 급속동결에 미치는 영향을 구명하고자 실시되었으며, 그 결과는 다음과 같다. l. Pronase 처리로 분할배를 작성했을 때, 성공율은 2세포배에서 85.7% 이었고, 평균은 68.0% 이었다. Manipulator를 이용했을 경우에는 2세포배 76.6% 및 4세포배 74.3%의 성공율을 나타냈다. 2. 분할배를 체외배양했을 때 배반포기까지의 발달율은 2, 4, 8세포배 및 상실배에서 pronase 처리의 경우 각각 24.1%, 20.4%, 25.5% 및 26.2%이었고 manipulator를 이용하였을 경우 각각 36.4%, 39.5%, 36.1% 및 4l.9% 이었다. 3. 분할배를 동결 융해했을 때 배반포기까지의 발달율은 2세포배에서는 glycerol(16.l%), 4세포배에서는 DMSO(16.7%) 및 상실배에서는 ethyleneglycol(27.6%)의 내동제를 이용한 경우에서 각각 가장 좋은 성적을 나타냈다.
To enhance the embryo preservation technology and better application of embryo transfer technique to the field (dairy science or animal reproduction. etc.), we examined the viabilities of bovine embryos produced in vitro and in vivo after cryopreservation according to their developmental stage and thawing temperature. Bovine embryos from in vivo/vitro fertilization (Hanwoo) were examined at day 7, 8, and 9. Survival rates and total cell numbers of in vivo fertilized embryos were as follows: morulae 68.8% and $67\;{\pm}\;6.0$; blastocysts 80.5% and $120\;{\pm}\;10$; expanded blastocysts 77.4% and $138\;{\pm}\;9.7$, respectively. Rates of embryo development for blastocysts and expanded blastocysts after thawing were significantly higher than that of morula stage embryos (p<0.05). While survival rates of in vitro fertilized embryos according to developmental stage showed no significant difference among groups (morula 67.9%; blastocyst 74.3%; and expanded blastocyst 79.4%), total cell numbers were significantly lower than those of other groups (morula $64\;{\pm}\;5.9$; blastocyst $116\;{\pm}\;8.7$; and expanded blastocyst $135\;{\pm}\;9.1$) For the viability according to thawing temperature, survival rate was higher in $37^{\circ}C$.
The purpose of this study was to investigate the effects of developmental stage and equilibration time on survival of rabbit embryos following freezing by vitrification. Adult New Zealand White female rabbits were superovulated with PMSG and hCG. The 8-cell stage embryos were collected from 40 to 45 hours after hCG injection by flushing oviducts with Dulbecco's phosphated buffered saline and in vitro cultured in TCM-199 containing 10% fetal calf serum(FCS). Each embryos developed in vitro to 16-cell, compact morula and blastocyst was cryopreserved and cultured following thawing to examine their developmental potential to expanded blastocyst stage in vitro. The frozen-thawed-cultured embryos were stained with Hoechst 33342, and their nuclei were counted using a fluorescence microscope. On the toxicity test of EFS solution as cryopreservation, the survival rates of 8-cell stage embryos was decreased in reverse to increasing of exposure time over 5 minutes. The post-thaw survival rates of embryos on equilibration times was significantly(P<0.05) higher for 2 min. than for 5 or 10 minutes. From morula to blastocyst of rabbit embryos was more suitable than 8-cell stage for cryopreservation by vitrification. The higher post-thaw survival rate of embryos can be achieved by keeping the cryoprotectant at $4^{\circ}C$ than at $20^{\circ}C$. The mean number of nuclei per embryo following freezing by vitrification and in vitro culture to expanded blastocyst at compacted morula and blastcyst was not significantly differ from fresh blastocyst.
본 연구는 재래산양에서 복제 수정란의 생산효율을 향상시키기 위한 기초 자료를 제시하고자 체세포 핵이식을 실시하여 공핵세포의 종류, 핵이식란의 활성화 처리 방법 및 수핵난자의 조건이 체외발달율에 미치는 영향을 조사, 검토하여 핵이식란 생산을 위한 최적의 조건을 규명하고자 실시하였다. 공핵세포의 종류에 따른 핵이식란의 체외발달율은 융합이 이루어진 핵이식란의 활성화 처리 후 분할율은 귀 유래 섬유아세포를 공핵세포로 사용하였을 때가 $40.5\%$로서 태아 유래 섬유아세포를 공핵세포로 사용하였을 때의 $55.5\%$와 유의적인 차이가 없었다. 또한 상실배 또는 배반포기로의 발달율도 각각 $6.7\%$ 및 $16.0\%$로서 유의적인 차이가 없었다. 핵이식란의 활성화 방법에 따른 체외발달율은 ionomycin+6-DMAP 처리를 하였을 때 분할율은 $79.0\%$로서 전기자극을 주었을 때의 $9.5\%$보다는 유의적(P<0.05)으로 높았다. 상실배 또는 배반 포기로의 발달율도 ionomycin+6-DMAP 처리를 하였을 때는 $15.6\%$가 발달하였으나, 전기 자극을 주었을 때는 4-세포기 이후로의 발달이 전혀 이루어지지 않았다. 체세포 핵이식란은 단위발생란에 비하여 분할율$(66.1\%\;vs\;59.18\%)$ 및 상실배 또는 배반포배로의 발달율$(19.0\%\;vs\;0.0\%)$이 유의적 (P<0.05)으로 낮았다. 단위발생란의 분할율은 체내 성숙난자에서 $86.8\%$로서 난포란의 $69.0\%$보다는 유의적(P<0.05)으로 높았다 단위발생란의 상실배 또는 배반포기로의 발달율에 있어서도 체내 성숙난자$(50.0\%)$가 난포란$(23.6\%)$보다 유의적 (p.<0.05)으로 발달율이 높았다. 이상의 결과로 볼 때 재래산양의 체세포를 이용한 복제수정란의 생산효율을 향상시키기 위해서는 다수의 난자 확보를 위한 과배란처리 방법의 개선, 난포란의 이용효율 개선 및 활성화 처리방법 등이 확립되어야 하며, 후기배로의 발달율 향상을 위해서는 최적의 체외 배양조건 확립이 시급한 것으로 생각된다.
The suitable electric stimulation is essential for activation and fusion of oocytes before or after nuclear transplantation The present study was undertaken to determine the optirnal condition for the parthenogenetic activation of in vitro rnatured(IVM) bovine oocytes by electric stimulation. Different direct current(DC) electric voltage of 1.0, 1.5 and 2.0 kV/cm and pulse duration of 30, 60 and 120 $\mu$sec were applied to the JVM nocytes in 0.3 M mannitol solution containing each 100 $\mu$M CaCl$_2$ and MgCl$_2$. IVM occytes at 24, 28 and 32 hours Post-maturation(hpm) were also electrically stimulated at 1.5 kV /cm, for 60 $\mu$ sec. The stimulated nocytes were then co-cultured in TCM-199 solution containing 10% fetal calf serum with bovine oviductal epithelial cells for 7~9 days in a 5% $CO_2$ incubator at 39$^{\circ}C$ ~ Their activation and in vitro development to morula and blastocyst were assessed under an inverted microscope. The higher activation rates 62.8 and 63.4% and in vitro de- velopment rates to morula and blastocyst 5.1 and 10.9% were shown in the oocytes stimulated at the voltage of 1.0 and 1.5 kV/cm than 2.0 kV/cm, respectively. No signifi- cantly(P<0.05) different activation rate was shown in JVM oocytes stimulated for 30, 60 and 120 $\mu$sec, but developmental rates to morula and blastocyst was significantly(P<0.05) higher in the oocytes stimulated for 30 $\mu$sec(6~3%) and 60 $\mu$sec(10~0%) than 120 $\mu$sec(0~ 0%). The aged oocytes at 28 and 30 hpm showed significantly(P<0.05) higher activation rates(72~7 and 79.7%) than the oocytes at 24 hpm(50~9%)~ Also, their developmental rates to morula and blastocyst were significantly(P<0.05) higher in the nocytes at 28(14.3%) and 32 hpm(15.9%) than 24 hpm(3.6%). From these results, it can be suggested that the optimal electric stimulation for IVM bovine occytes is a DC voltage between 1.0 and 1.5 kV/cm, pulse duration of 30 or 60 $\mu$sec, and the optimal age of IVM oocytes for electric activation is at 32 hpm.
To determine the effect of calcium on the preimplantational development of mouse two-cell embryo, the various concentrations of calcium were added into the culture media and the rate of blastocyst formation was observed. Also, to examine the effect of trifluoperazine, an inhibitor of calmodulin which is involved in the several intracellular calcium functions, embryos were cultured for 48 hours at the various concentrations of this inhibitor. An additional 24 hour culture was done to examine the effect of this drug on the transformation from morula to blastocyst. The results are as following ; 1. About 1.71mM of extracellular calcium is adequate for blastocyst formation and the higher concentrations of calcium (3.43mM and 8.55mM) do not affect on the blastocyst formation and the degenerating rate. 2. Trifluoperazine $100{\mu}M$ presents the inhibitory effect on the blastocyst formation while $1{\mu}M$ and $10{\mu}M$ do not so. 3. After an additional 24 hour culture, there is transformation of morula to blastocyst and the degenerating rate of embryo is increased all together.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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