A Reum Han;Tae Kwon Moon;Im Kyeung Kang;Dae Bong Yu;Yechan Kim;Cheolhwan Byon;Sujeong Park;Hae Lin Kim;Kyoung Jin Lee;Heuiran Lee;Ha-Na Woo;Seong Who Kim
BMB Reports
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v.57
no.6
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pp.281-286
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2024
Adult hippocampal neurogenesis plays a pivotal role in maintaining cognitive brain function. However, this process diminishes with age, particularly in patients with neurodegenerative disorders. While small, non-coding microRNAs (miRNAs) are crucial for hippocampal neural stem (HCN) cell maintenance, their involvement in neurodegenerative disorders remains unclear. This study aimed to elucidate the mechanisms through which miRNAs regulate HCN cell death and their potential involvement in neurodegenerative disorders. We performed a comprehensive microarray-based analysis to investigate changes in miRNA expression in insulin-deprived HCN cells as an in vitro model for cognitive impairment. miR-150-3p, miR-323-5p, and miR-370-3p, which increased significantly over time following insulin withdrawal, induced pronounced mitochondrial fission and dysfunction, ultimately leading to HCN cell death. These miRNAs collectively targeted the mitochondrial fusion protein OPA1, with miR-150-3p also targeting MFN2. Data-driven analyses of the hippocampi and brains of human subjects revealed significant reductions in OPA1 and MFN2 in patients with Alzheimer's disease (AD). Our results indicate that miR-150-3p, miR-323-5p, and miR-370-3p contribute to deficits in hippocampal neurogenesis by modulating mitochondrial dynamics. Our findings provide novel insight into the intricate connections between miRNA and mitochondrial dynamics, shedding light on their potential involvement in conditions characterized by deficits in hippocampal neurogenesis, such as AD.
Purpose: Mitochondria play a crucial role in preserving skeletal muscle mass, and damage to mitochondria leads to muscle mass loss. This study investigated the effects of oxypeucedanin hydrate, a furanocoumarin isolated from Angelica dahurica radix, on myogenesis and mitochondrial function in vitro and in zebrafish models. Methods: C2C12 myotubes cultured in media containing 0.1, 1, 10, or 100 ng/mL oxypeucedanin hydrate were immunostained with myosin heavy chain (MHC), and then multinucleated MHC-positive cells were counted. The expressions of markers related to muscle differentiation, muscle protein degradation, and mitochondrial function were determined by quantitative reverse transcription polymerase chain reaction. To investigate the effects of oxypeucedanin hydrate on mitochondrial dysfunction, Tg(Xla.Eef1a1:mito-EGFP) zebrafish embryos were treated with 5-fluorouracil, leucovorin, and irinotecan (FOLFIRI) with or without oxypeucedanin hydrate and analyzed for mito-EGFP intensity and mitochondrial length. Results: Oxypeucedanin hydrate significantly increased MHC-positive multinucleated myotubes (≥ 3 nuclei) and increased the expression of the myogenic marker myosin heavy chain 4. However, it decreased the expressions of muscle-specific RING finger protein 1 and muscle atrophy f-box (markers of muscle protein degradation). Furthermore, oxypeucedanin hydrate enhanced the expressions of markers of mitochondrial biogenesis (peroxisome proliferator-activated receptor-gamma coactivator 1 alpha, transcription factor a mitochondrial, succinate dehydrogenase complex flavoprotein subunit A, and cytochrome c oxidase subunit 1) and mitochondrial fusion (optic atrophy 1). However, it reduced the expression of dynamin-related protein 1 (a mitochondrial fission regulator). Consistently, oxypeucedanin hydrate reduced FOLFIRI-induced mitochondrial dysfunction in the skeletal muscles of zebrafish embryos. Conclusion: The study indicates that oxypeucedanin hydrate promotes myogenesis by improving mitochondrial function, and thus, suggests oxypeucedanin hydrate has potential use as a nutritional supplement that improves muscle mass and function.
Unique cartilage matrix-associated protein (UCMA) is an extrahepatic vitamin K-dependent protein rich in γ-carboxylated (Gla) residues. UCMA has been recognized for its ability to promote osteoblast differentiation and enhance bone formation; however, its impact on osteoblasts under hyperglycemic stress remains unknown. In this paper, we investigated the effect of UCMA on MC3T3-E1 osteoblastic cells under hyperglycemic conditions. After exposure to high glucose, the MC3T3-E1 cells were treated with recombinant UCMA proteins. CellROX and MitoSOX staining showed that the production of reactive oxygen species (ROS), which initially increased under high-glucose conditions in MC3T3-E1 cells, decreased after UCMA treatment. Additionally, quantitative polymerase chain reaction revealed increased expression of antioxidant genes, nuclear factor erythroid 2-related factor 2 and superoxide dismutase 1, in the MC3T3-E1 cells exposed to both high glucose and UCMA. UCMA treatment downregulated the expression of heme oxygenase-1, which reduced its translocation from the cytosol to the nucleus. Moreover, the expression of dynamin-related protein 1, a mitochondrial fission marker, was upregulated, and AKT signaling was inhibited after UCMA treatment. Overall, UCMA appears to mitigate ROS production, increase antioxidant gene expression, impact mitochondrial dynamics, and modulate AKT signaling in osteoblasts exposed to high-glucose conditions. This study advances our understanding of the cellular mechanism of UCMA and suggests its potential use as a novel therapeutic agent for bone complications related to metabolic disorders.
Park, Kyung-Ah;Jin, Zhen;An, Hyeong Seok;Lee, Jong Youl;Jeong, Eun Ae;Choi, Eun Bee;Kim, Kyung Eun;Shin, Hyun Joo;Lee, Jung Eun;Roh, Gu Seob
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.23
no.5
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pp.335-344
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2019
Obesity causes inflammation and impairs thermogenic functions in brown adipose tissue (BAT). The adipokine lipocalin 2 (LCN2) has been implicated in inflammation and obesity. Herein, we investigated the protective effects of caloric restriction (CR) on LCN2-mediated inflammation and oxidative stress in the BAT of high-fat diet (HFD)-fed mice. Mice were fed a HFD for 20 weeks and then either continued on the HFD or subjected to CR for the next 12 weeks. CR led to the browning of the white fat-like phenotype in HFD-fed mice. Increased expressions of LCN2 and its receptor in the BAT of HFD-fed mice were significantly attenuated by CR. Additionally, HFD+CR-fed mice had fewer neutrophils and macrophages expressing LCN2 and iron-positive cells than HFD-fed mice. Further, oxidative stress and mitochondrial fission induced by a HFD were also significantly attenuated by CR. Our findings indicate that the protective effects of CR on inflammation and oxidative stress in the BAT of obese mice may be associated with regulation of LCN2.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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