Objective: This study aims to identify the relationship between odd- and branched-chain fatty acids (OBCFAs) and microbial nucleic acid bases in the rumen, and to establish a model to accurately predict microbial protein flow by using OBCFA. Methods: To develop the regression equations, data on the rumen contents of individual cows were obtained from 2 feeding experiments. In the first experiment, 3 rumen-fistulated dry dairy cows arranged in a $3{\times}3$ Latin square were fed diets of differing forage to concentration ratios (F:C). The second experiment consisted of 9 lactating Holstein dairy cows of similar body weights at the same stage of pregnancy. For each lactation stage, 3 cows with similar milk production were selected. The rumen contents were sampled at 4 time points of every two hours after morning feeding 6 h, and then to analyse the concentrations of OBCFA and microbial nucleic acid bases in the rumen samples. Results: The ruminal bacteria nucleic acid bases were significantly influenced by feeding diets of differing forge to concentration ratios and lactation stages of dairy cows (p<0.05). The concentrations of OBCFAs, especially odd-chain fatty acids and C15:0 isomers, strongly correlated with the microbial nucleic acid bases in the rumen (p<0.05). The equations of ruminal microbial nucleic acid bases established by ruminal OBCFAs contents showed a good predictive capacity, as indicated by reasonably low standard errors and high R-squared values. Conclusion: This finding suggests that the rumen OBCFA composition could be used as an internal marker of rumen microbial matter.
Amino acid (AA) substituted diets had no influence on rumen levels of total volatile fatty acids (VFA), ammonia and ${\alpha}$-amino-N, but tended to increase molar proportions of isovalerate and counts of total viable AA utilizing and celluloytic bacteria in the rumen as compared with the control urea diet. The AA diets did not affect daily flow to the duodenum of dry matter (DM), organic mater (OM) and acid detergent fibre (ADF), and rumen digestibility of these nutrients. However, the AA diets, in particular the 10 essential AA (EAA) diet improved total digestibility of DM, OM and ADF by decreasing faecal output of these fractions. Although N flow to the duodenum and N retention were not affected with the dietary treatments, duodenal bacterial flow appeared to increase by the AA diets when it was estimated by means of 2,6-diaminopimelic acid (DAP) and nucleic acid-purine bases (PB) as markers. The results suggest that AA supplements to a urea diet could improve feed utilization by stimulating microbial activity and proliferation in the rumen but and increased microbial activity per se is not necessarily associated with improvement of feed conversion.
A rapid and accurate method is described for the determination of nucleo-bases in rumen micro-organisms. A procedure to satisfactorily hydrolyse the micro-organisms involving reaction with a mixture of readily volatile organic acids (acetic and formic acids) under high pressure, is proposed, and optimal conditions for an analytical procedure with reversed phase HPLC is described. The following nucleobases contents (mmol/kg DM) of rumen micro-organisms were found: Adenine (Ade), 82.62; Guanine (Gua), 61.34; Cytosine (Cyt), 84.61; Thymine (Thy), 35.74; Uracil (Ura), 68.62; Hypoxanthine (Hxn), 13.06; Xanthine (Xn), 8.35. Total purine-N content (g/kg N) of rumen micro-organisms were 99.60. The nucleic acid N content (g/kg N) of microbial isolates were: RNA-N, 109.9; DNA-N, 50.9.
Proceedings of the Korean Society of Near Infrared Spectroscopy Conference
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2001.06a
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pp.1273-1273
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2001
The efficiency of the luminal fermentation process influences overall efficiency of luminal production, animal health and reproduction. Ruminant production systems have a significant impact on the global environment, as well. Animal wastes contribute to pollution of the environment as ammonia volatilized to the air and nitrate leached to ground water. Microbial protein synthesis in the rumen satisfies a large proportion of the protein requirements of animals. Quantifying the microbial synthesis is possible by using markers for lumen bacteria and protozoa such as nucleic acids, purine bases, some specific amino acids, or by isotopic $^{15}N,^{32}P,\;and\;^{35}S$ labelled feeds. All those methods require cannulated animals, they are time-consuming and some methods are very expensive as well. Many attempts have been made to find an alternative method for indirect measurement of microbial synthesis in intact animals. The present investigations aimed to assess possibilities of NIRS for prediction of purine nitrogen excretion and ruminal microbial nitrogen synthesis by NIR spectra of urine. Urine samples were collected from 12 growing sheep,6 of them male, and 6- female. The sheep were included in feeding experiment. The ration consisted of sorghum silage and protein supplements -70:30 on dry matter basis. The protein supplements were chosen to differ in protein degradability. The urine samples were collected daily in a vessel containing $60m{\ell}$ 10% sulphuric acid to reduce pH below 3 and diluted with tap water to 4 liters. Samples were stored in plastic bottles and frozen at $-20^{\circ}C$ until chemical and NIRS analysis. The urine samples were analyzed for purine derivates - allantoin, uric acid, xantine and hypoxantine content. Microbial nitrogen synthesis in the lumen was calculated according to Chen and Gomes, 1995. Transmittance urine spectra with sample thickness 1mm were obtained by NIR System 6500 spectrophotometer in the spectral range 1100-2500nm. The calibration was performed using ISI software and PLS regression, respectively. The following statistical results of NIRS calibration for prediction of purine derivatives and microbial protein synthesis were obtained.(Table Omitted). The result of estimation of purine nitrogen excretion and microbial protein synthesis by NIR spectra of urine showed accuracy, adequate for rapid evaluation of microbial protein synthesis for a large number of animals and different diets. The results indicate that the advantages of the NIRS technology can be extended into animal physiological studies. The fast and low cost NIRS analyses could be used with no significant loss of accuracy when microbial protein synthesis in the lumen and the microbial protein flow in the duodenum are to be assessed by NIRS.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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