Fluorescence in situ hybridization (FISH) is a powerful tool for the detection of DNA sequences in the specific region of the chromosomes. As well as for the integrated physical mapping, FISH karyotype analysis has to be preceded. Karyotype of Raphanus sativus 'Wonkyo 10039' was analyzed by a dual-color FISH technique; using various repetitive DNA probes, including 5S rDNA, 45S rDNA, and centromere retrotransposon. The length of the somatic metaphase chromosome ranged from 1.35 to $2.06{\mu}m$ with a total length of $15.29{\mu}m$. The chromosome complements comprised of eight pairs of metacentrics and one pair of submetacentric. Bleached DAPI Band analysis revealed a heterochromatin region, covering 28.6% to 50.4% each chromosomes. 5S and 45S rDNA sequences were located on two and three pairs of chromosomes, respectively. The centromere retrotransposon of Brassica (CRB) is a major component in Brassica related species that has been maintained as a common centromere component. CRB signals were detected on the centromere and pericentromeric region of R. sativus 'Wonkyo 10039' and three basic Brassica species (B. rapa, B. nigra, and B. oleracea). These results will provide a valuable background for physical mapping and elucidation of the evolutionary relationship among the Brassica related species.
The objective of this study was to elucidate the dynamics of microtubules in post-ovulatory aging in vivo and in vitro of mouse oocytes. The fresh ovulated oocytes were obtained from oviducts of superovulated female ICR mice at 16 hours after hCG injection. The post-ovulatory aged oocytes were collected at 24 and 48 hours after hCG injection from in vivo and in vitro, respectively. Immunocytochemistry was performed on ${\beta}$-tubulin and acetylated ${\alpha}$-tubulin. The microtubules were localized in the spindle assembly, which was barrel-shaped or slightly pointed at its poles and located peripherally in the fresh ovulated oocytes. The frequency of misaligned metaphase chromosomes were significantly increased in post-ovulatory aged oocytes after 48 hours of hCG injection. The spindle length and width of post-ovulatory aged oocytes were significantly different from those of fresh ovulated oocytes, respectively. The staining intensity of acetylated ${\alpha}$-tubulin showed stronger in post-ovulatory aged oocytes than that in the fresh ovulated oocytes. In the aged oocytes, the spindles had moved towards the center of the oocytes from their original peripheral position and elongated, compared with the fresh ovulated oocytes. Microtubule organizing centers were formed and observed in the cytoplasm of the aged oocytes. On the contrary, it was not observed in the fresh ovulated oocytes. The alteration of spindle formation and chromosomes alignment substantiates the poor development and the increase of disorders from the post-ovulatory aged oocytes. It might be important to fertilize on time in ovulated oocytes for the developmental competence of embryos with normal karyotypes.
Mutagenic potential of HM10411 (recombinant human granulocyte colony stimulating factor) was evaluated by bacterial reverse mutation test, in vitro chromosome aberration test and in vivo micronucleus test. The bacterial reverse mutation test was performed using the histidine auxotroph strains of Salmonella typhimurium TA100, TA1535, TA98, TA1537 and tryptophan auxotroph strain of Escherichia coli WP2 uvrA. The negative results of the bacterial reverse mutation test suggest that HM10411 does not induce mutation, in the genome of Salmonella typhimurium and E. coli under the conditions used. In addition, it has little clastogenicity either in vitro chromosome aberration test or in vivo micronucleus test. For in vitro chromosomal aberration test, Chinese hamster lung(CHL) cells were exposed to HM10411 of 23, 46 or 92 $\mu\textrm{g}$/ml for 6 or 24 hours in the absence and for 6 hours in the presence of metabolic activation system. There was no significant increase in the number of aberrant metaphase in HM 10411-treated groups at any dose levels both in the presence and absence of metabolic activation system. The micronucleus test was carried out using specific pathogen free(SPF) 7-week old male ICR mice, The test item, HM10411 was intraperitoneally administered at 1150, 2300 or 4600 $\mu\textrm{g}$/kg once a day for 2 consecutive days. There was no significant increase in the frequencies of micronucleated polychromatic erythrocytes(PCEs) at any treated groups compared with negative control group. Therefore, these results demonstrate that the test item, HM10411, was not mutagenic under the condition of these studies.
Blocking the first mitotic cleavage of the zygote is a key tool for chromosome-set manipulations in fish. We developed an improved method for inducing tetraploidy by blocking the mitosis with a combination of heat shock at 40.5$^{\circ}C$ for 1, 2 or 3 min followed by cold shock at $1.5^{\circ}C$ for 30, 45 or 60 min. When applied during the first cleavage metaphase of mud loach (Misgurnus mizolepis) zygotes, the optimal combination was heat for 2 min followed by cold for 45 min. At 1 month, the frequency of 4N survivors and the yield from total eggs fertilized was 55.7% and 14.4%, respectively, compared to heat shock alone with 20.0% efficiency and 3.6% yield. The effectiveness of the procedure was confirmed by diploid mitotic gynogenesis using transgenic markers. The overall yield of homozygous diploids, 34.0%, was better than that for single heat shock, 17.3%. The tetraploids and homozygous diploids had higher early mortality than normal diploid controls. However at 1 month, the viability of the tetraploids was the same as normal diploids. For gynogenetic diploids, the survival was similar to normal diploids after 3 months. The high efficiency of this new protocol extends the opportunity to study polyploidy in basic and applied research.
Tsuzuki, Y.;Duran, D.H.;Kuroki, Y.;Uehara, F.;Ashizawa, K.;Fujihara, N.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제11권3호
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pp.307-310
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1998
The present studies were undertaken to evaluate the effects of a low concentration of dimethyl-sulfoxide (DMSO) on in vitro maturation and development of bovine oocytes fertilized in vitro. Significantly more oocytes reached the metaphase stage of the second meiotic division in TCM-199 supplemented with $50{\mu}M$ DMSO than in the control medium (p < 0.05), and the highest rates of development up to the blastocyst stage were obtained when $50{\mu}M$ DMSO was added to the maturation and culture media (p < 0.05). The avarage of cell numbers of the blastocysts, expanded and hatched blastocysts cultured with $50{\mu}M$ DMSO were 81.7, 125.7 and 129.9 cells, respectively. The proportion of blastocysts with normal chromosome numbers was 90.5%. These results suggest that the addition of $50{\mu}M$ DMSO is beneficial for the maturation of bovine oocytes and production of the blastocysts with high quality.
Do, Jin Hwan;Kim, In Su;Park, Tae-Kyu;Choi, Dong-Kug
Molecules and Cells
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제24권1호
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pp.105-112
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2007
Most neuroblastoma cells have chromosomal aberrations such as gains, losses, amplifications and deletions of DNA. Conventional approaches like fluorescence in situ hybridization (FISH) or metaphase comparative genomic hybridization (CGH) can detect chromosomal aberrations, but their resolution is low. In this study we used array-based comparative genomic hybridization to identify the chromosomal aberrations in human neuroblastoma SH-SY5Y cells. The DNA microarray consisting of 4000 bacterial artificial chromosome (BAC) clones was able to detect chromosomal regions with aberrations. The SH-SY5Y cells showed chromosomal gains in 1q12~ q44 (Chr1:142188905-246084832), 7 (over the whole chro-mosome), 2p25.3~p16.3 (Chr2:18179-47899074), and 17q 21.32~q25.3 (Chr17:42153031-78607159), while chromosomal losses detected were the distal deletion of 1p36.33 (Chr1:552910-563807), 14q21.1~q21.3 (Chr14:37666271-47282550), and 22q13.1~q13.2 (Chr22:36885764-4190 7123). Except for the gain in 17q21 and the loss in 1p36, the other regions of gain or loss in SH-SY5Y cells were newly identified.
In counting chromosome number and karyotype study, it is necessary to let chromosomes on metaphase by pretreatment before fixation. For this purpose, colchicine, or 8-oxyquinoline are generally used. The author found out that chromosomes could be scattered by illuminating cyanoferrate complex solution in which root-tips were sunk. As materials, 8 sorts of plant such as Allium fisturosum, allium tuberosum Rottler, Triticum vulgare were used. Their root-tips were sunk on the bottom of beaker in potassium ferricyanide solution $3{\times}10-4M$ and illuminated through the solution by sterilizing lamp for 1~2 hours in dark room, keeping 10 cm distance from light source to the surface of solution and 2cm depth of solution. Then again, they were illuminated to the light which was somewhat weaker intensity than the former (distance, 16cm; depth, 3cm) for 1.5~2 hours after immersed in 1/100N-HCl and washed in water for each 5minutes. By such methods chromosomes could be scattered. About the mechanism of scattering, it is supposed that CN and Fe(CN)x ions $(x {\leq}5)$ which were gradually produced in the process of photodissociation acted together on the scattering of chromosomes.
본 연구에서 돼지 난포란에서 채취된 난모세포들을 체외 성숙 후 세포 손상이 없이 성숙 난모세포의 발생능을 알아낼 수 있는 마커로 극체의 방출이 효과적으로 활용될 수 있는지를 알아보았다. 난모세포를 48시간 성숙 배양 후 극체의 방출 유무를 검사하고, 핵염색하여 염색체의 형태를 검사하였다. 확인된 난모세포들을 $16{\sim}18$시간 추가 배양한 후 7% ethanol로 활성화시키고 $5{\mu}g/ml$ cytochalasin B에 5시간 노출 후 NCSU23 배양액으로 7일간 배양하였다. 극체 방출율은 반복에 따라 $9.9{\sim}52.4%$, 퇴행율은 $21.4{\sim}61.8%$로 변이가 크게 나타났다(p<0.01). 극체를 방출한 난모세포의 핵상은 모두 극체와 19개의 염색체를 가진 제 2 감수분열 중기 핵상을 보여주었으며, 극체를 방출하지 못한 난모세포의 핵상은 핵이 팽화된 상태인 핵형이 39.1%, PCC 형태의 핵상이 19.6%, MI 형태의 핵상이 10.9%, MII이지만 극체가 관찰되지 않거나 매우 작은 상태인 경우가 13%, 핵이 응축된 형태인 경우가 6.5%, 핵이 없는 경우가 8.7%로 나타났다. 퇴행란으로 판단한 난모세포들은 핵염색을 한 결과 역시 세포질 상태가 정상적이지 못한 염색 상태를 보여주었다. 극체 방출 유무를 확인하지 않고 활성화 처리 후 배양하였을 때 분할율은 45.0%, 배반포기까지 발달율은 11.3%였으나, 극체 방출란만을 모아서 활성화처리를 하였을 때 분할율은 94.2%, 배반포기까지 발달율은 42.5%로 급격하게 향상되었다. 이상의 결과로 퇴행란과 극체 미방출란을 제거하고 실험에 활용한다면 배양 효과를 확인하거나 배아 생명 공학에 활용할 때 좀더 유리 할 것으로 사료된다.
텔로미어(telomere)는 염색체 양 말단에 위치하는 DNA와 단백질의 복합체로서 (TTAGGG)n의 단순 반복 염기 서열로 이루어져 있다. 그러나 일부 조류 및 척추동물의 경우 염색체의 양 말단 부위외 간질적 위치에도 telomeric DNA sequence가 분포한다. 본 연구는 닭 염색체에 있어 telomeric DNA의 분포 양상을 제시하고자 한국 재래닭의 초기 배아로부터 염색체 표본을 제작하고, telomeric DNA probe를 이용한 FISH를 수행하여 염색체 상 텔로미어의 분포 양상을 분석하였다. 분석 결과, 닭의 모든 염색체 양 말단부에 텔로미어가 분포하는 것으로 나타났으며, 더불어 대형 염색체 중 1번의 1q32, 1p11, 1p23 위치와 2번 염색체의 2q24 및 3번 염색체 3q32에 interstitial telomeric signal(ITS)이 존재하는 것이 확인되었다. 이러한 한국 재래닭 염색체의 텔로미어 분포 양상은 이전 Gallus domesticus에서 발표한 분포 양상과 거의 일치한 것으로 나타났다. 한국 재래닭의 각 염색체별 텔로미어 함유율은 4.6~16.3% 정도로 분석되었으며, 거의 대부분의 염색체에서 단완 말단부의 telomeric DNA의 함량이 장완 말단부보다 높은 것으로 나타났다. 닭 염색체에서 ITS의 존재와 분포 양상은 핵형학적으로 진화 과정 중 염색체 간의 융합에 의해 신생 염색체가 형성되었을 가능성을 시사한다.
Nucleolus Organizer Regions(NORs)는 핵인을 형성하는 염색체의 특정 부위로서 rRNA 합성에 관여하는 리보좀 유전자를 함유하고 있으며 이의 활성화가 일어나는 곳이다. 본 연구에서는 한우의 NORs의 양상을 제시하기 위하여 AgNOR 염색법을 이용하여 한우의 NORs 수와 NORs 염색체 및 이의 분포 위치 등을 구명하고 한편으로 소의 품종별, 성별 및 근원이 다른 세포간의 NORs 양상을 비교 분석하였다. 본 분석에 이용된 공시축은 한우 및 홀스타인 암수 44두로서 이들의 혈액배양으로부터 염색체를 분리하였다. 조직간 세포의 NORs 비교를 위하여 귀 조직으로부터 배양된 섬유아세포의 염색체와 백혈구 배양으로부터 분리된 염색체를 분석하였다. 분리된 중기상에 AgNOR 염색 후 G-banding을 한 결과 한우의 NORs는 2번, 3번, 4번, 11번 및 28번 염색체에 존재하고, 이들의 분포 위치는 각 염색체의 말단부에 위치한다. 한우 NORs 수는 세포에 따라 최소 2개에서부터 최대 10개까지 나타나며 평균 5.6개였다. 이러한 다형적 양상은 개체 간뿐만 아니라 동일 개체 내 세포 간에서도 달리 나타나며 발현의 크기 또한 차이가 있다. 품종 간 NORs의 비교 분석에서 한우의 NORs 수가 Holstein (5.4개)에 비해 유의적으로 높게 나타났으며, 근원이 다른 세포간 비교에서는 fibroblasts (5.9개)에서의 NORs 수가 lymphocytes (5.5개)에 비해 높은 빈도를 보였고, 성 간에는 수컷 (5.7개)이 암컷 (5.4개)에 비하여 많은 NORs 수를 나타내었다. 그러나 이들의 염색체상 분포 양상에서는 공히 동일한 염색체에 출현되었으며 염색체 상 출현 빈도에서도 세포들 간에 거의 차이가 없었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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