Primed human pluripotent stem cells (hPSCs) are highly dependent on glycolysis rather than oxidative phosphorylation, which is similar to the metabolic switch that occurs in cancer cells. However, the molecular mechanisms that underlie this metabolic reprogramming in hPSCs and its relevance to pluripotency remain unclear. Cha et al. (2017) recently revealed that downregulation of SIRT2 by miR-200c enhances acetylation of glycolytic enzymes and glycolysis, which in turn facilitates cellular reprogramming, suggesting that SIRT2 is a key enzyme linking the metabolic switch and pluripotency in hPSCs.
Cancer is the leading cause of human deaths worldwide. Understanding the biology underlying the evolution of cancer is important for reducing the economic and social burden of cancer. In addition to genetic aberrations, recent studies demonstrate metabolic rewiring, such as aerobic glycolysis, glutamine dependency, accumulation of intermediates of glycolysis, and upregulation of lipid and amino acid synthesis, in several types of cancer to support their high demands on nutrients for building blocks and energy production. Moreover, oncogenic mutations are known to be associated with metabolic reprogramming in cancer, and these overall changes collectively influence tumor-microenvironment interactions and cancer progression. Accordingly, several agents targeting metabolic alterations in cancer have been extensively evaluated in preclinical and clinical settings. Additionally, metabolic reprogramming is considered a novel target to control cancers harboring un-targetable oncogenic alterations such as KRAS. Focusing on lung cancer, here, we highlight recent findings regarding metabolic rewiring in cancer, its association with oncogenic alterations, and therapeutic strategies to control deregulated metabolism in cancer.
Cancer cells reprogram cellular metabolism to support the malignant features of tumors, such as rapid growth and proliferation. The cancer promoting effects of metabolic reprogramming are found in many aspects: generating additional energy, providing more anabolic molecules for biosynthesis, and rebalancing cellular redox states in cancer cells. Metabolic pathways are considered the pipelines to supply metabolic cofactors of epigenetic modifiers. In this regard, cancer metabolism, whereby cellular metabolite levels are greatly altered compared to normal levels, is closely associated with cancer epigenetics, which is implicated in many stages of tumorigenesis. In this review, we provide an overview of cancer metabolism and its involvement in epigenetic modifications and suggest that the metabolic adaptation leading to epigenetic changes in cancer cells is an important non-genetic factor for tumor progression, which cooperates with genetic causes. Understanding the interaction of metabolic reprogramming with epigenetics in cancers may help to develop novel or highly improved therapeutic strategies that target cancer metabolism.
Tadi, Surendar;Kim, Soung Jung;Ryu, Min Jeong;Park, Taeseong;Jeong, Ji-Seon;Kim, Young Hwan;Kweon, Gi Ryang;Shong, Minho;Yim, Yong-Hyeon
Bulletin of the Korean Chemical Society
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제34권1호
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pp.35-41
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2013
Metabolic analysis of CR6 interacting factor 1 (Crif1) deficient mouse embryonic fibroblasts with impaired oxidative phosphorylation has been carried out using LC-MS/MS and GC-MS methods. Metabolic profiles of the Crif1 deficient cells were comprehensively obtained for the first time. Loss of oxidative phosphorylation functions in mitochondria resulted in cancer-like metabolic reprogramming with consumption of majority of glucose carbon from up-regulated glycolysis to produce lactate, suppressed utilization of glucose carbon in the TCA cycle, increased amounts of amino acids. The changes in metabolic profile of the Crif1 deficient cells are most probably a consequence of metabolic reprogramming to meet the needs of energy balance and anabolic precursors in compensation for the loss of major oxidative phosphorylation functions.
Cancer cells are known to drastically alter cellular energy metabolism. The Warburg effect has been known for over 80 years as pertaining cancer-specific aerobic glycolysis. As underlying molecular mechanisms are elucidated so that cancer cells alter the cellular energy metabolism for their advantage, the significance of the modulation of metabolic profiles is gaining attention. Now, metabolic reprogramming is becoming an emerging hallmark of cancer. Therapeutic agents that target cancer energy metabolism are under intensive investigation, but these investigations are mostly focused on the cytosolic glycolytic processes. Although mitochondrial oxidative phosphorylation is an integral part of cellular energy metabolism, until recently, it has been regarded as an auxiliary to cytosolic glycolytic processes in cancer energy metabolism. In this review, we will discuss the importance of mitochondrial respiration in the metabolic reprogramming of cancer, in addition to discussing the justification for using mitochondrial DNA somatic mutation as metabolic determinants for cancer sensitivity in glucose limitation.
Hyun Kyu Kim;Yena Song;Minji Kye;Byeongho Yu;Sang Beom Park;Ji Hyeon Kim;Sung-Hwan Moon;Hyungkyu Choi;Jong-Seok Moon;Jae Sang Oh;Man Ryul Lee
International Journal of Stem Cells
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제17권2호
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pp.194-203
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2024
Evaluating cell metabolism is crucial during pluripotent stem cell (PSC) differentiation and somatic cell reprogramming as it affects cell fate. As cultured stem cells are heterogeneous, a comparative analysis of relative metabolism using existing metabolic analysis methods is difficult, resulting in inaccuracies. In this study, we measured human PSC basal metabolic levels using a Seahorse analyzer. We used fibroblasts, human induced PSCs, and human embryonic stem cells to monitor changes in basal metabolic levels according to cell number and determine the number of cells suitable for analysis. We evaluated normalization methods using glucose and selected the most suitable for the metabolic analysis of heterogeneous PSCs during the reprogramming stage. The response of fibroblasts to glucose increased with starvation time, with oxygen consumption rate and extracellular acidification rate responding most effectively to glucose 4 hours after starvation and declining after 5 hours of starvation. Fibroblasts and PSCs achieved appropriate responses to glucose without damaging their metabolism 2~4 and 2~3 hours after starvation, respectively. We developed a novel method for comparing basal metabolic rates of fibroblasts and PSCs, focusing on quantitative analysis of glycolysis and oxidative phosphorylation using glucose without enzyme inhibitors. This protocol enables efficient comparison of energy metabolism among cell types, including undifferentiated PSCs, differentiated cells, and cells undergoing cellular reprogramming, and addresses critical issues, such as differences in basal metabolic levels and sensitivity to normalization, providing valuable insights into cellular energetics.
A family of signal transduction pathways known as wingless type (Wnt) signaling pathways is essential to developmental processes like cell division and proliferation. Mutation in Wnt signaling results in a variety of diseases, including cancers of the breast, colon, and skin, metabolic disease, and neurodegenerative disease; thus, the Wnt signaling pathways have been attractive targets for disease treatment. However, the complicatedness and large involveness of the pathway often hampers pinpointing the specific targets of the metabolic process. In our current study, we investigated the differential metabolic regulation by the overexpression of the Wnt signaling pathway in a timely-resolved manner by applying high-throughput and un-targeted metabolite profiling. We have detected and annotated 321 metabolite peaks from a total of 36 human embryonic kidney (HEK) 293 cells using GC-TOF MS and LC-Orbitrap MS. The un-targeted metabolomic analysis identified the radical reprogramming of a range of central carbon/nitrogen metabolism pathways, including glycolysis, TCA cycle, and glutaminolysis, and fatty acid pathways. The investigation, combined with targeted mRNA profiles, elucidated an explicit understanding of activated fatty acid metabolism (β-oxidation and biosynthesis). The findings proposed detailed mechanistic biochemical dynamics in response to Wnt-driven metabolic changes, which may help design precise therapeutic targets for Wnt-related diseases.
Jae-Han Jeon;Chang-Won, Hong;Eun Young Kim;Jae Man Lee
IMMUNE NETWORK
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제20권6호
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pp.46.1-46.13
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2020
Neutrophils are innate immune cells that constitute the first line of defense against invading pathogens. Due to this characteristic, they are exposed to diverse immunological environments wherein sources for nutrients are often limited. Recent advances in the field of immunometabolism revealed that neutrophils utilize diverse metabolic pathways in response to immunological challenges. In particular, neutrophils adopt specific metabolic pathways for modulating their effector functions in contrast to other immune cells, which undergo metabolic reprogramming to ensure differentiation into distinct cell subtypes. Therefore, neutrophils utilize different metabolic pathways not only to fulfill their energy requirements, but also to support specialized effector functions, such as neutrophil extracellular trap formation, ROS generation, chemotaxis, and degranulation. In this review, we discuss the basic metabolic pathways used by neutrophils and how these metabolic alterations play a critical role in their effector functions.
The maintenance of mitochondrial function is closely linked to the control of senescence. In our previous study, we uncovered a novel mechanism in which senescence amelioration in normal aging cells is mediated by the recovered mitochondrial function upon Ataxia telangiectasia mutated (ATM) inhibition. However, it remains elusive whether this mechanism is also applicable to senescence amelioration in accelerated aging cells. In this study, we examined the role of ATM inhibition on mitochondrial function in Hutchinson-Gilford progeria syndrome (HGPS) and Werner syndrome (WS) cells. We found that ATM inhibition induced mitochondrial functional recovery accompanied by metabolic reprogramming, which has been known to be a prerequisite for senescence alleviation in normal aging cells. Indeed, the induced mitochondrial metabolic reprogramming was coupled with senescence amelioration in accelerated aging cells. Furthermore, the therapeutic effect via ATM inhibition was observed in HGPS as evidenced by reduced progerin accumulation with concomitant decrease of abnormal nuclear morphology. Taken together, our data indicate that the mitochondrial functional recovery by ATM inhibition might represent a promising strategy to ameliorate the accelerated aging phenotypes and to treat age-related disease.
Acute kidney ischemia-reperfusion (IR) injury is a life-threatening condition that predisposes individuals to chronic kidney disease. Since the kidney is one of the most energy-demanding organs in the human body and mitochondria are the powerhouse of cells, mitochondrial dysfunction plays a central role in the pathogenesis of IR-induced acute kidney injury. Mitochondrial dysfunction causes a reduction in adenosine triphosphate production, loss of mitochondrial dynamics (represented by persistent fragmentation), and impaired mitophagy. Furthermore, the pathological accumulation of succinate resulting from fumarate reduction under oxygen deprivation (ischemia) in the reverse flux of the Krebs cycle can eventually lead to a burst of reactive oxygen species driven by reverse electron transfer during the reperfusion phase. Accumulating evidence indicates that improving mitochondrial function, biogenesis, and dynamics, and normalizing metabolic reprogramming within the mitochondria have the potential to preserve kidney function during IR injury and prevent progression to chronic kidney disease. In this review, we summarize recent advances in understanding the detrimental role of metabolic reprogramming and mitochondrial dysfunction in IR injury and explore potential therapeutic strategies for treating kidney IR injury.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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