Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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제34권1호
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pp.11-18
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2008
Human bone marrow mesenchymal stem cells are thought to be multipotent cells, which are present in adult marrow, that can replicate as undifferentiated cells and that have the potential to differentiate to lineages of mesenchymal tissues, including bone, cartilage, fat, tenden, muscle, and marrow stroma. Cells that have the characteristics of human mesenchymal stem cells could be isolated from marrow aspirates of human and animals. This study was designed to identify and characterize genes specifically expressed by osteogenic supplements -treated cells by suppression subtractive hybridization(SSH) method. The results were as follows: 1. 2 genes were upregulated genes in osteogenic diffeentiation of hMSCs, which is further proved by Northern blot analysis. 2. IGFBP-2 has been identified playing an important role in bone formation. 3. HF1 was also upregulated during osteogenic differentiation, but its role in bone formation is not clear yet.
Kim, You-Sun;Kokturk, Nurdan;Kim, Ji-Young;Lee, Sei Won;Lim, Jaeyun;Choi, Soo Jin;Oh, Wonil;Oh, Yeon-Mok
Molecules and Cells
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제39권10호
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pp.728-733
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2016
Mesenchymal stem cells (MSCs) effectively reduce airway inflammation and regenerate the alveolus in cigarette- and elastase-induced chronic obstructive pulmonary disease (COPD) animal models. The effects of stem cells are thought to be paracrine and immune-modulatory because very few stem cells remain in the lung one day after their systemic injection, which has been demonstrated previously. In this report, we analyzed the gene expression profiles to compare mouse lungs with chronic exposure to cigarette smoke with non-exposed lungs. Gene expression profiling was also conducted in a mouse lung tissue with chronic exposure to cigarette smoke following the systemic injection of human cord blood-derived mesenchymal stem cells (hCB-MSCs). Globally, 834 genes were differentially expressed after systemic injection of hCB-MSCs. Seven and 21 genes, respectively, were up-and downregulated on days 1, 4, and 14 after HCB-MSC injection. The Hbb and Hba, genes with oxygen transport and antioxidant functions, were increased on days 1 and 14. A serine protease inhibitor was also increased at a similar time point after injection of hCB-MSCs. Gene Ontology analysis indicated that the levels of genes related to immune responses, metabolic processes, and blood vessel development were altered, indicating host responses after hCB-MSC injection. These gene expression changes suggest that MSCs induce a regeneration mechanism against COPD induced by cigarette smoke. These analyses provide basic data for understanding the regeneration mechanisms promoted by hCB-MSCs in cigarette smoke-induced COPD.
Fangdi Wang;Ruixia Hou;Junqin Li;Xincheng Zhao;Qiang Wang;Kaiming Zhang;Xinhua Li
International Journal of Stem Cells
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제15권2호
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pp.155-163
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2022
Background and Objectives: Mesenchymal stem cells (MSCs) have immunomodulatory function and participate in the pathogenesis of many immunoregulation-related diseases, including psoriasis. Previously, we found that MSCs from psoriatic lesions overexpress the proinflammatory microRNA, miR-155 and exhibit a decreased immunosuppressive capacity. But the origin of these aberrant characteristics is still not clear. To investigate whether inflammatory cytokines in serum and peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) from psoriatic patients can regulate the expression patterns of immunoregulation-related cytokines and the immunoregulation function of MSCs. Methods and Results: Normal dermal mesenchymal stem cells (nDMSCs) were treated with serum or PBMCs derived from patients with psoriasis or healthy donors. Expression of miR-155 and immunoregulation-related genes in each MSCs were measured using real-time PCR or western-blot. Meanwhile, the immunosuppressive capacity of DMSCs was evaluated by its inhibitory ability on proliferation of activated PBMCs. Compared to control serum, psoriatic serum significantly increased the expression levels of miR-155 (27.19±2.40 vs. 3.51±1.19, p<0.001), while decreased TAB2 expression (0.28±0.04 vs. 0.72±0.20, p<0.01) in DMSCs. Expression levels of immunoregulation-related genes such as PGE2, IL-10, and TLR4 were also markedly down-regulated following the psoriatic serum treatment. Those DMSCs treated with healthy serum could inhibit PBMC proliferation, while those psoriatic serum-treated DMSCs could not inhibit PBMC proliferation effectively. Conclusions: Psoriatic serum up-regulate the expression of miR-155, down-regulate the expression of immunoregulation-related genes (PGE2, IL-10, and TLR4) in DMSCs, and along with the inhibition of the immunosuppressive function of MSCs.
Human eyelid adipose-derived stem cells (hEAs) and amniotic mesenchymal stem cells (hAMs) are very valuable sources for the cell therapeutics. Both types of cells have a great proliferating ability in vitro and a multipotency to differentiate into adipocytes, osteoblasts and chondrocytes. In the present study, we evaluated their stem cell characteristics after long-time cryopreservation for 6, 12 and 24 months. When frozen-thawed cells were cultivated in vitro, their cumulative cell number and doubling time were similar to freshly prepared cells. Also they expressed stem cell-related genes of SCF, NANOG, OCT4, and TERT, ectoderm-related genes of NCAM and FGF5, mesoderm/endoderm-related genes of CK18 and VIM, and immune-related genes of HLA-ABC and ${\beta}$2M. Following differentiation culture in appropriate culture media for 2-3 weeks, both types of cells exhibited well differentiation into adipocyte, osteoblast, and chondrocyte, as revealed by adipogenic, osteogenic or chondrogenic-specific staining and related genes, respectively. In conclusion, even after long-term storage hEAs and hAMs could maintain their stem cell characteristics, suggesting that they might be suitable for clinical application based on stem cell therapy.
Sun Jeong Kim;Soojin Kwon;Soobeen Chung;Eun Joo Lee;Sang Eon Park;Suk-Joo Choi;Soo-Young Oh;Gyu Ha Ryu;Hong Bae Jeon;Jong Wook Chang
International Journal of Stem Cells
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제17권1호
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pp.80-90
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2024
Cellular senescence causes cell cycle arrest and promotes permanent cessation of proliferation. Since the senescence of mesenchymal stem cells (MSCs) reduces proliferation and multipotency and increases immunogenicity, aged MSCs are not suitable for cell therapy. Therefore, it is important to inhibit cellular senescence in MSCs. It has recently been reported that metabolites can control aging diseases. Therefore, we aimed to identify novel metabolites that regulate the replicative senescence in MSCs. Using a fecal metabolites library, we identified nervonic acid (NA) as a candidate metabolite for replicative senescence regulation. In replicative senescent MSCs, NA reduced senescence-associated 𝛽-galactosidase positive cells, the expression of senescence-related genes, as well as increased stemness and adipogenesis. Moreover, in non-senescent MSCs, NA treatment delayed senescence caused by sequential subculture and promoted proliferation. We confirmed, for the first time, that NA delayed and inhibited cellular senescence. Considering optimal concentration, duration, and timing of drug treatment, NA is a novel potential metabolite that can be used in the development of technologies that regulate cellular senescence.
Background and Objectives : Cartilage reconstruction is one of medical issue in otolaryngology. Tissue engineering is presently being utilized in part of cartilage repair. Sources of cells for tissue engineering are chondrocyte from mature cartilage and bone marrow mesenchymal stem cells that are able to differentiate into chondrocyte. Recent studies have shown that adipose tissue have mesenchymal stem cells which can differentiate into adipogenic, chondrogenic myogenic osteogenic cells and neural cell in vitro. In this study, we have examined chondrogenic potential of the canine adipose tissue-derived mesenchymal stem cell(ATSC). Materials and Methods : We harvested canine adipose tissue from inguinal area. ATSCs were enzymatically released from canine adipose tissue. Under appropriate culture conditions, ATSCs were induced to differentiate into the chondrocyte lineages using micromass culture technique. We used immunostain to type II collagen and toluidine blue stain to confirm chondrogenic differentiation of ATSCs. Results : We could isolate ATSCs from canine adipose tissue. ATSCs expressed CD29 and CD44 which are specific surface markers of mesenchymal stem cell. ATSCs differentiated into micromass that has positive response to immunostain of type II collagen and toluidine blue stain. Conclusion : In vitro, ATSCs differentiated into cells that have characteristic cartilage matrix molecules in the presence of lineage-specific induction factors. Adipose tissue may represent an alternative source to bone marrow-derived MSCs.
Mesenchymal stem cells (MSCs) can differentiate into neural cells to treat nervous system diseases. Magnetic resonance is an ideal means for cell tracking through labeling cells with superparamagnetic iron oxide (SPIO). However, no studies have described the neural differentiation ability of SPIO-labeled MSCs, which is the foundation for cell therapy and cell tracking in vivo. Our results showed that bone marrow-derived mesenchymal stem cells (BM-MSCs) labeled in vitro with SPIO can be induced into neural-like cells without affecting the viability and labeling efficiency. The cellular uptake of SPIO was maintained after labeled BM-MSCs differentiated into neural-like cells, which were the basis for transplanted cells that can be dynamically and non-invasively tracked in vivo by MRI. Moreover, the SPIO-labeled induced neural-like cells showed neural cell morphology and expressed related markers such as NSE, MAP-2. Furthermore, whole-cell patch clamp recording demonstrated that these neural-like cells exhibited electrophysiological properties of neurons. More importantly, there was no significant difference in the cellular viability and $[Ca^{2+}]_i$ between the induced labeled and unlabeled neural-like cells. In this study, we show for the first time that SPIO-labeled MSCs retained their differentiation capacity and could differentiate into neural-like cells with high cell viability and a good cellular state in vitro.
Sang-Yun Lee;Seong-Ju Oh;Rubel Miah;Yong-Ho Choe;Sung-Lim Lee;Yeon Woo Jeong;Young-Bum Son
한국동물생명공학회지
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제39권2호
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pp.95-104
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2024
Background: In healthy dentin conditions, odontoblasts have an important role such as protection from invasion of pathogens. In mammalian teeth, progenitors such as mesenchymal stem cells (MSCs) can migrate and differentiate into odontoblast-like cells, leading to the formation of reparative dentin. For differentiation using stem cells, it is crucial to provide conditions similar to the complex and intricate in vivo environment. The purpose of this study was to evaluate the potential of differentiation into odonto/osteoblasts, and compare co-culture with/without epithelial cells. Methods: MSCs and epithelial cells were successfully isolated from dental tissues. We investigated the influences of epithelial cells on the differentiation process of dental pulp stem cells into odonto/osteoblasts using co-culture systems. The differentiation potential with/without epithelial cells was analyzed for the expression of specific markers and calcium contents. Results: Differentiated odonto/osteoblast derived from dental pulp tissue-derived mesenchymal stem cells with/without epithelial cells were evaluated by qRT-PCR, immunostaining, calcium content, and ALP staining. The expression of odonto/osteoblast-specific markers, calcium content, and ALP staining intensity were significantly increased in differentiated cells. Moreover, the odonto/osteogenic differentiation capacity with epithelial cells co-culture was significantly higher than without epithelial cells co-culture. Conclusions: These results suggest that odonto/osteogenic differentiation co-cultured with epithelial cells has a more efficient application.
Lee, Hong Kyung;Lim, Sang Hee;Chung, In Sung;Park, Yunsoo;Park, Mi Jeong;Kim, Ju Young;Kim, Yong Guk;Hong, Jin Tae;Kim, Youngsoo;Han, Sang-Bae
IMMUNE NETWORK
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제14권2호
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pp.81-88
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2014
Mesenchymal stem cells (MSCs) are present in diverse tissues and organs, including bone marrow, umbilical cord, adipose tissue, and placenta. MSCs can expand easily in vitro and have regenerative stem cell properties and potent immunoregulatory activity. They inhibit the functions of dendritic cells, B cells, and T cells, but enhance those of regulatory T cells by producing immunoregulatory molecules such as transforming growth factor-${\beta}$, hepatic growth factors, prostaglandin $E_2$, interleukin-10, indolamine 2,3-dioxygenase, nitric oxide, heme oxygenase-1, and human leukocyte antigen-G. These properties make MSCs promising therapeutic candidates for the treatment of autoimmune diseases. Here, we review the preclinical studies of MSCs in animal models for systemic lupus erythematosus, rheumatoid arthritis, Crohn's disease, and experimental autoimmune encephalomyelitis, and summarize the underlying immunoregulatory mechanisms.
Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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제33권5호
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pp.405-418
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2007
Mesenchymal stem cells(MSCs) have been though to be multipotent cells that can replicate that have the potential to differentiate into lineages of mesenchymal tissue including the bone, cartilage, fat, tendon, muscle, and marrow stroma. Especially, scaffolds to support cell-based tissue engineering are critical determinants of clinical efforts to regenerate and repair the body. Selection of a matrix carrier imvolves consideration of the matrix's role as a scaffold for physical support and host tissue integration as well as its ability to support of synergize the osteoinductive program of the implanted mesenchymal stem cell. The aim of this study is to evaluate the effect of autobone and Bio-$Oss^{(R)}$ to adherent mesenchymal stem cells as scaffolds on sinus augmentation with fibrin glue mixture in a rabbit model. 16 New Zealand White rabbits were divided randomly into 4 groups based on their time of sacrifice(1, 2, 4 and 8 weeks). First, mesenchymal stem cells were isolated from iliac crest marrow of rabbits and expanded in vitro. Cell culture was performed in accordance with the technique described by Tsutsumi et al. In the present study, the animals were sacrificed at 1, 2, 4 and 8 weeks after transplantation, and the bone formation ability of each sides was evaluated clinically, radiologically, histologically and histomorphologically. According to the histological observations, autobone scaffolds group showed integrated graft bone with host bone from sinus wall. At 2 and 4 weeks, it showed active newly formed bone and neovascularization. At 8 weeks, lamellae bone was observed in sinus graft material area. Radiologically, autobone with stem cell showed more radiopaque than Bio-$Oss^{(R)}$ scaffolds group. there were significant differences in bone volume between 4 and 8 weeks(p<0.05).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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