The specificity of sandwich enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) to detect Salmonella in milk was determined in this study. The antibodies used in sandwich ELISA were egg yolk immunoglobulin G (IgY) obtained after immunization of hen with outer membrane protein (OMP) fraction from Salmonella typhimurium and rabbit IgG obtained after immunization of rabbit with the purified OMP with the molecular weight of 40,000. The immunoblot assay showed that the IgY reacted strongly with OMP with the molecular weight of 6,000 and the rabbit IgG reacted strongly with OMP with the molecular weights of 40,000, 35,000, and 6,000 from the bacteria including Salmonella which belongs to Enterobacteriaceae. The IgY and rabbit IgG also reacted with other proteins from Salmonella typhimurium in immunoblot assay. Competitive ELISA showed that IgY showed specifity to react with two strains of Salmonella typhimurium and Salmonella cholerasuis but not with Escherichia coli and Yersinia enterocolitica. Two strains of Salmonella typhimurium added to UHT milk showed the highest absorbance of all the bacteria used in the sandwich ELISA. Some strains of Salmonella cholerasuis showed higher absorbances than non-Salmonella bacteria.
In general, expression of membrane protein in Escherichia coli is very toxic to the host organism, but the mechanism for the toxicity is not clear yet. Expression of human purinergic receptor $P2X_4$ was found to be extremely toxic to the host E. coli. We examined this toxicity by isolation and analysis of less toxic mutant proteins. We could isolate 30 less toxic mutants of $P2X_4$ after hydroxylamine mutagenesis. Western blot showed that all of them produced proteins smaller than the wild type $P2X_4$. DNA sequencing of two largest mutant proteins showed that they were lost its second transmembrane domain. Localization analysis of these mutant proteins showed that they are not in cytoplasmic membrane, but in inclusion bodies. These data showed that inactive truncated $P2X_4$ is not toxic to E. coli and membrane integration and functionality of $P2X_4$ may be needed to show host toxicity.
A native strain of Pasteurella multocida was isolated from pigs suffering from severe atrophic rhinitis at domestic farms in Gyeonggi Province, Korea, and was identified as capsular serogroup 'D' and somatic serotype '4' by disc diffusion decapsulation and gel diffusion precipitation tests, respectively. The P. multocida (D:4) induced atrophic rhinitis in healthy pigs by the secondary infection. The gene for outer membrane protein H (ompH) of P. multocida (D:4) was cloned in Escherichia coli DH5$\alpha$ by PCR. The open reading frame of the ompH was composed of 1,023 bp, possibly encoding a protein with 341 amino acid residues containing a signal peptide of 20 amino acids at N-terminus, and the gene product with molecular mass of ca. 38 kDa was identified by SDS-PAGE. Hydropathy profiles indicated that there are two variable domains in the OmpH. To express the ompH in E. coli, the gene was manipulated in various ways. Expression of the truncated as well as full-length forms of the recombinant OmpH was fatal to the host E. coli BL21 (DE3). However, the truncated OmpH fused with GST was consecutively expressed in E. coli DH5$\alpha$. A large quantity of the fused polypeptide was purified through GST-affinity chromatography.
Koo Ja-Kyung;Son Dongho;Jun Hoejin;Lee Yunhee;Cho Namjun;Jang Dong Il
Membrane Journal
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v.15
no.2
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pp.121-131
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2005
Separation and purification of lysozyme from chicken egg white was studied using ultrafiltration. We have obtained experimental data through the cellulose membranes with the molecular weight cut off (MWCO) of 10 kDa, 30 kDa and 100 kDa in a stirred ultrafiltration device. Certain amounts of egg white were dissolved into 20 mM phosphate buffers of pH 6, 7 and 8 to make protein solutions of $1\%,\;2\%,\;3\%\;and\;10\%$ concentration. Permeation flux increased with increasing MWCO of the membrane. Permeation flux increased with increasing transmembrane pressure (TMP) and decreasing the protein concentration. As the MWCO of membrane decreased, the selectivity increased. The selectivity increased with increasing TMP and protein concentration of the solution.
Protein affinity membranes were prepared via coating of chitosan gel on the porous flat and hollow-fiber polysulfone membranes, followed by the immobilization of the reactive dye (Cibacron Blue 3GA) to the chitosan gel. Maximum protein binding capacity of these affinity membranes was about 70 $\mu{g/cm}^2$. Using the affinity flat membrane module, the elution chromatography of human serum albumin (HSA) was performed to determine the optimum condition of eluent buffer. The optimum condition of eluent was the universal buffer solution of 0.06 M concentration containing 1 M KCl at pH 10. For the frontal chromatography of HSA using the flat module, the dynamic protein binding capacity was rapidly decreased from the equilibrium values with increasing flow rate and HSA concentration of the loading solution. However, in the case of hollow-fiber module, the dynamic binding capacity was maintained an equilibrium value without depending on the operating conditions. These results showed that the hollow-fiber module was more effective than the flat module as an affinity chromatography column.
The membrane-bound ATPases were separated on sucrose gradient from corn roots and characterized by pH optima, sensitivity to monovalent salt, Km and Vmax. The pH optima for the activity of all the ATPases associated with 13, 000g pellet and 13, 000~80, 000g pellet were 5 and 9, respectively. The ATPases in Fractions B and C of the 13, 000 g pellet were more active at pH 5 than pH 9. While, in the case of Fractions D, E and F, they were reverse. The activities of the ATPase in Fractions A and C of the 13, 000~80, 000 g pellet were greater at pH 5 than pH 9. On the other hand, the ATPases in Fractions B, D, E, and F were more active at pH 9 than pH 5. The optimum concentraction of ATP for the assay was about 3 to 5 mM. The Km's for the membrane-bound ATPases in 13, 000g pellet and in 13, 000~80, 000 g pellet were 0.25 mM. While Vmax values for 13, 000g pellet were from 8.0 to 12.5 $\mu$M Pi/mg protein/hr. according to pH values, those for 13, 000~80, 000 g pellet were from 35.7 to 55.6 $\mu$M Pi/mg protein/hr. Activities of the membrane-bound ATPases in both 13, 000 g pellet and 13, 000~80, 000 g pellet were stimulated with increasing the concentration of $K^+$.
The activity of the phagocyte respiratory burst oxidase is regulated by complex and dynamic alterations in protein-protein interactions that result in the rapid assembly of an active multicomponent NADPH oxidase enzyme on the plasma membrane. While the enzymatic activity has been studied for the past 20 years, the past decade has seen remarkable progress in our understanding of the enzyme and its activation at the molecular level. This article describes the current state of knowledge, and proposes a model for the mechanism by which protein-protein interactions regulate enzyme activity in this system.
Journal of Korean Academy of Oral and Maxillofacial Radiology
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v.27
no.2
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pp.63-81
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1997
This study was performed in order to identify changes of the plasma membrane proteins in rat submandibular gland tumors induced by 7,12-dimethylbenz[a]anthracene [DMBA] and X-irradiation. Two kinds of tumor associated membrane proteins (protein A and B) were isolated with 3 M KCl extraction from rat submandibular gland tumors induced by DMBA and X-irradiation. To identify their antigenicities, immunoelectrophoresis and double immunodiffusion was carried out with various proteins extracted from liver, heart, skin and pancreas of adult rats and from embryonic liver, heart and skin. The rabbit antisera against the protein A did not cross-react with any of the proteins extracted from the above mentioned tissues, suggesting that protein A might be tumor specific antigen. However, the rabbit antisera against protein B was precipitated with proteins extracted from the liver of adult and embryonic rats. Polyacrylamide gel electrophoresis of these two proteins (A and B) showed that protein A was a dimer with molecular weights of 69,000 and 35,000 dalton, whereas protein B was a monomer with molecular weight of 50,000 dalton.
Viral surface proteins are known to play an essential role in attachment of the virus particle to the host cell membrane. In case of the hepatitis B virus (HBV) several reports have described potential receptors on the target cell side, but no definite receptor protein has been isolated yet. As for the viral side, it has been suggested that the preS region of the envelope protein, especially the preS1 region, is involved in binding of HBV to the host cell. In this study, preS1 region was recombinantly expressed in the form of a maltose binding protein (MBP) fusion protein and used to identify and visualize the expression of putative HBV receptor(s) on the host cell. Using laser scanned confocal microscopy and by FACS analysis, MBP-preS1 proteins were shown to bind to the human hepatoma cell line HepG2 in a receptor-ligand specific manner. The binding kinetic of MBP-preS1 to its cellular receptor was shown to be temperature and time dependent. In cells permeabilized with Triton X-100 and treated with the fusion protein, a specific staining of the nuclear membrane could be observed. To determine the precise location of the receptor binding site within the preS1 region, several short overlapping peptides from this region were synthesized and used in a competition assay. In this way the receptor binding epitope in preS1 was revealed to be amino acid residues 27 to 51, which is in agreement with previous reports. These results confirm the significance of the preS1 region in virus attachment in general, and suggest an internalization pathway mediated by direct attachment of the viral particle to the target cell membrane.
Park, Jung-Sun;Huh, Pil-Woo;Jung, Yeon-Joo;Park, Su-Jin;Lee, Kyung-Eun
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.8
no.3
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pp.141-146
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2004
Soluble N-ethylmaleimide-sensitive factor attachment protein receptors (SNARE) proteins, composed of two presynaptic membrane proteins [synaptosomal-associated protein of 25 kDa (SNAP-25) and syntaxin] and a presynaptic vesicular protein [vesicle-associated membrane protein (VAMP)], serve as a core of exocytotic fusion machinery, which can be affected by ischemia. Synaptic protein in core region, striatum and cortex has been shown to alter after focal ischemia, however, little is known in hippocampus. Hippocampus is remote from ischemic core, but it is one of the most vulnerable regions. Using immunohistochemistry, the present study was undertaken to investigate the alteration of expression of SNAP-25, syntaxin, and VAMP in the hippocampus of rats which were subjected to middle cerebral artery occlusion (MCAO) for 2h and allowed to reperfuse. At 2 weeks of reperfusion, the SNAP-25 and syntaxin immunoreactivity was increased in the stratum oriens of the CA1 and the stratum lucidum of the CA3 in the ipsilateral hippocampus. However, VAMP immunoreactivity didn't show significant change. These results demonstrate that the level of the presynatpic plasma membrane proteins (SNAP-25 and syntaxin) in the rat hippocampus is more sensitively affected by focal ischemia than that of the synaptic vesicle protein (VAMP).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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