PCB가 산개구리 여포난자의 성숙과 프로제스테론 생성에 미치는 영향을 알아보기 위해 배양액에 일정 농도의 PCB(Arochlor 1248)를 농도별로 첨가한 후 난자들을 20시간 배양하였다. 난자의 성숙과 프로제스테론 생성을 유도하기 위하여 FPH(Frog pituitary homogenate: 0.01p.e/$m\ell$)를 사용하였으며 여포난자의 성숙율은 난자 내의 핵막 붕괴율로부터 구하였고 프로제스테론 생성은 배양액내로 분비되는 양을 조사하였다. 실험 결과 PCB는 10ppb의 농도부터 여포난자의 성숙과 프로제스테론 생성을 현저히 억제하였으며 PCB 작용의 가역성을 조사하기 위해 3시간 동안 여포난자들을 PCB에 노출시킨 후 보통 배양액으로 옮겨 계속 배양을 해 본 결과 PCB 2.5ppb에서는 가역성을 나타내었으나 5 ppb에서는 비가역적인 손상을 주었다. 이와 같이 PCB는 낮은 농도에서 난자의 성숙과 프로제스테론의 분비 등을 억제하였으며, 개구리 난자 배양계는 환경오염물질의 독성 검정에 요긴하게 사용할 수 있음을 시사하였다
Decorin (DCN) is a proteoglycan belonging to the small leucine-rich proteoglycan family. It is composed of a protein core containing leucine repeats with a glycosaminoglycan chain consisting of either chondroitin sulfate or dermatan sulfate. DCN is a structural component of connective tissues that can bind to type I collagen. It plays a role in the assembly of the extracellular matrix (ECM), and it is related to fibrillogenesis. It can interact with fibronectin, thrombospondin, complement component C1, transforming growth factor (TGF), and epidermal growth factor receptor. Normal DCN expression regulates a wide range of cellular processes, including proliferation, migration, apoptosis, and autophagy, through interactions with various molecules. However, its aberrant expression is associated with oocyte maturation, oocyte quality, and poor extravillous trophoblast invasion of the uterus, which underlies the occurrence of preeclampsia and intrauterine growth restriction. Spatiotemporal hormonal control of successful pregnancy should regulate the concentration and activity of specific proteins such as proteoglycan participating in the ECM remodeling of trophoblastic and uterine cells in fetal membranes and uterus. At the human feto-maternal interface, TGF-β and DCN play crucial roles in the regulation of trophoblast invasion of the uterus. This review summarizes the role of the proteoglycan DCN as an important and multifunctional molecule in the physiological regulation of oocyte maturation and trophoblast migration. This review also shows that recombinant DCN proteins might be useful for substantiating diverse functions in both animal and in vitro models of oogenesis and implantation.
This study was undertaken to evaluate how ${\beta}$-mercaptoethanol (bME), an exogenous antioxidant, interacts with preantral follicles cultured in vitro. Mouse primary or secondary follicles were cultured in glutathione (GSH)-free or GSH-containing medium supplemented with bME of various concentrations, and the growth of preantral follicles, the maturation of intrafollicular oocytes and preimplantation development after parthenogenesis were monitored. In experiment 1, 0, 25, 50 or 100 ${\mu}M$ bME was added to culture medium supplemented with 100 ${\mu}M$ GSH or not. When secondary follicles were cultured in GSH-free medium, no significant change in follicle growth was detected after bME addition. However, exposure to bME in the presence of GSH significantly inhibited both follicle growth and oocyte maturation. Such detrimental effect became prominent in primary follicles and bME strongly inhibited follicle growth in the absence of GSH. In conclusion, there are stage-dependent effects of bME on follicle growth and oocyte maturation, and selective use of antioxidants contributes to establishing an efficient follicle culture system.
To determine whether the reproductive processes of sea bass, Lateolabrax japonicus, proceed normally after transportation from an outdoor net-cage into indoor tanks, we examined changes in the gonadosomatic index (GSI), histological gonadal tissue, and plasma levels of sex hormones (testosterone and estradiol-17ß) during their annual reproductive cycle. We also measured maturation and spawning across two sea water salinity levels (full and low salinity). Fecundity was estimated by the relationship between egg number and body size in female sea bass. Monthly changes in the GSI, histological gonadal tissues, and oocyte size showed both male and female sea bass reach final maturation in January and February, respectively, indicating that the spermiation of males occurs earlier than the spawning of females. The histological results indicated that the sea bass is a multiple spawner, similar to many marine teleosts, exhibiting group-synchronous oocyte development. Female maturation and spawning were enhanced in lower salinity seawater (29.6-31.0 psu) compared to that of normal salinity (34.5-35.1 psu). These results confirm that sea bass reproduction can occur successfully in captivity and imply that fertilized eggs can be collected from February to March. Additionally, our results show that lower salinity enhances oocyte maturation and spawning of female sea bass.
We studied steroid metabolites produced from red-spotted grouper ovarian follicles during maturation. Oocytes with 350-500 ㎛ diameter were in vitro incubated in the presence of [3H] 17α-hydroxyprogesterone as a precursor. Steroid metabolites were extracted from incubated media and oocytes. The extracts were separated and identified using thin layer chromatography, high performance liquid chromatography and gas chromatography-mass spectrometry. The identified metabolites were androstenedione (A4), testosterone (T) and estrone (E1). The metabolites of A4 was dominant in all size of oocytes and it was the highest in 480 ㎛ diameter oocytes. The metabolites of two progestins, 17α,20β-dihydroxy-4-pregnen-3-one and 17α,20α-dihydroxy-4-pregnen-3-one were detected in the oocytes less than 480 ㎛ diameter although they were not identified definitely. In the oocytes of 480 ㎛ diameter, metabolite of progestin was the highest, and germinal vesicle (GV) was still in the middle of cytoplasm. In the oocytes of 500 ㎛ diameter, GV was began to migrate and the major metabolites were A4 and E1. The metabolite of E1 was detected in all size of oocytes and it was higher than that of E2. These results suggest that oocytes of 480 ㎛ diameter are the transitional stage involving steroidogenic shift to final oocyte maturation and potential function of E1 during maturation process.
These studies were carried out to investigate the effect of gonadotropins (GTH), fetal calf serum (FCS), porcine follicular fluid (pFF) and FCS and pFF fractions obtained by the gel filtration on in vitro maturation of porcine follicular fluid. When the oocytes were cultured in TCM-199, the maturation rate was higher in pFF than in FCS in both with or without GTH and in pFF the maturation rate was higher in with GTH than in without GTH. In case of without GTH, pFF increased maturation rates in TCM-199, but not in Whitten's medium (WM). When the oocytes were cultured in WM supplemented with FCS fractions, the maturation rate(51.6%) of oocytes was significantly (P<0.05) higher in fraction B (about 30∼70 kDa) than in control, FCS and other fractions. When oocytes were cultured in WM supplemented with pFF fractions, fractions B (about 30∼70 kDa) and D (about 1∼10 kDa) were significantly (P<0.05) higher than in control, pFF and other fractions. In conclusiion, the addition of gonadotropins into the maturation media was effective for oocyte maturation. The addition of pFF was more effective than addition of FCS for maturation of porcine oocytes in vitro. And fraction B from FCS and fractions B and D from pFF was effective for oocyte maturation.
본 실험은 생쥐 난자의 성숙과 생존에 미치는 selenium의 영향을 알아보고자 수행하였다. 난자의 성숙은 현미경을 통해 관찰하였으며, 핵막 붕괴(germinal vesicle breakdown, GVBD)와 극체 형성(polar body formation, PB)은 체외 배양 시작 후 각각 2.5, 13시간에 확인하였다. 난자의 생존은 72 시간동안 체외 배양하면서 형태학적 차이로 정상 난자와 비정상 난자를 판별하였다. 또한 각 단계별로 수집된 난자의 glutathione(GSH) 함량은 spectrophotometer를 사용하여 glutathione assay로 측정하였다. 결과는 다음과 같다; 저농도의 selenium($0.005\;{\mu}g/mL{\sim}0.5\;{\mu}g/mL$)은 핵막 붕괴율과 극체 형성률을 증가시켰지만, 고농도의 selenium($5\;{\mu}g/mL$)은 감소시켰다. 저농도의 selenium은 극체 형성 시기 난자의 생존율을 증가시켰지만, 고농도의 selenium은 대조군과 별 차이가 없었다. 저농도의 selenium은 난자내 GSH 함량을 높게 유지시켰지만, 고농도의 selenium은 GSH 함량을 감소시켰다. 또한 극체 형성 시기 난자내 GSH 함량은 핵막 붕괴 시기 난자에 비해 높았다. 본 실험으로 볼 때, 저농도의 selenium은 대사과정에서 발생하는 oxidative stress에 의한 손상을 감소시킴으로써 난자의 질적 향상을 도우며, 성숙률을 증가시키는 것으로 사료된다. 또한 저농도의 selenium은 난자내 GSH 함량을 증가시켜 극체 형성 난자의 생존율을 증가시키는 것으로 사료된다.
The effect of replacement of in vitro maturation medium completely with the buffalo follicular fluid (buFF) on in vitro oocyte maturation of buffalo oocytes was studied. 5 to 8 buffalo cumulus oocyte complexes were cultured in a single drop with each of the eight media studied i.e., M199+steer serum (10% v/v), M199+steer serum (10% v/v)+PMSG, M199+buFF (10% v/v), M199+buFF (10% v/v)+PMSG, M199+buFF (50% v/v), M199+buFF (50% v/v)+ PMSG, buFF (100%) and buFF+PMSG at $39^{\circ}C$ and 5% $CO_2$ in air for 24 h. Supplementation of M199 with Steer serum alone resulted in IVM rate of 35% only. When the above medium was supplemented with PMSG, the maturation rate rallied to 82%. Significant increase in the maturation rates were observed when M199 was supplemented with increasing levels of buFF. A further increase in the maturation rate was also obtained when PMSG was incorporated into the medium of M199 supplemented with buFF. The rate of maturation was to the tune of 91% when oocytes were matured in buFF alone which was increased non significantly on the addition of PMSG. Highest maturation rate (97%) obtained with M199+buFF (50%v/v)+PMSG did not differ significantly from that obtained by either M199+buFF (10%v/v)+PMSG or buFF+PMSG. It is suggested that buFF alone without any supplementation can form the effective in vitro maturation medium for buffalo oocytes.
In the present study, effects of interleukin-2 (IL-2), a differentiator and proliferator of T-cells, on nuclear maturation and sperm penetration of bovine oocytes was examined in a serum-free or serum-containing medium. Basic medium was used TCM-199 supplemented with 2.2g / ι sodium bicarbonate, 100 i.u. /rnl penicillin. 100$\mu$g /ml streptomycin, 0.25$\mu$g/ml Fungizone, this medium treated with FCS and IL-2. In experiment 1, we examined the effect of the addition of 0, 1, 5, 10 or 15nM /ml IL-2 to tissue culture medium (TCM-199) on nuclear maturation of oocytes Development of oocytes to the Metaphase II (M II) stage (%) was significantly (P<0.05) higher at 1, 5,10 and 15 nM /ml IL-2(54.2, 73.5, 80.0 and 69.6%, respectively) than at 0 nM /ml IL-2(35.7%). In experiment 2, we examined the effect of the addition of l0nM /ml IL-2 or 5% FCS in oocyte maturation. Nuclear maturation rates were significantly(P<0.05) higher l0nM /ml IL-2(80%) than non-treatment(35.7%) and 5% FCS(63.6%) treatment. On the other hand, there were no significant difference in the proportion of oocytes developed to the 2-cell stage after addition of IL-2 and/or FCS. These results suggest that IL-2 supports nuclear maturation of bovine immature oocytes in vitro. Serum-free maturation system using IL-2 might be useful for evaluation of various factors on oocyte maturation.
To examine the production of steroids with potential oocyte maturation-inducing activity in the spotted flounder, Verasper variegatus, we have incubated post-vitellogenic oocytes (0.820.95mm in diameters) with radiolabeled pregnenolone and $17\alpha-hydroxyprogesterone$. The resulting metabolites were analyzed by thin layer chromatography (TLC) and high performance liquid chromatography (HPLC). The two main metabolites (progestogens) found in both incubations co-migrated with $17\alpha-hydroxy$, $20\alpha-dihydroprogesterone$$(17\alpha, 20\alpha OHP)$ and $17\alpha-hydroxy,\;$20\beta-dihydroprogesterone$ (17 a20{30HP). Additional chromatography by HPLC and TLC confirmed the presence of radioactive $17\alpha, 20\alpha OHP$ and a large amount of unknown metabolite. The present study did not reveal in vitro formation of $l7\alpha 20\beta OHP$. Although 1$l7\alpha 20\beta OHP$ was found in a small amount, the synthesis of this steroid suggests that it may play a role in regulating the oocyte maturation process in the spotted flounder.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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