In the present study, effects of interleukin-2 (IL-2), a differentiator and proliferator of T-cells, on nuclear maturation and sperm penetration of bovine oocytes was examined in a serum-free or serum-containing medium. Basic medium was used TCM-199 supplemented with 2.2g / ι sodium bicarbonate, 100 i.u. /rnl penicillin. 100$\mu$g /ml streptomycin, 0.25$\mu$g/ml Fungizone, this medium treated with FCS and IL-2. In experiment 1, we examined the effect of the addition of 0, 1, 5, 10 or 15nM /ml IL-2 to tissue culture medium (TCM-199) on nuclear maturation of oocytes Development of oocytes to the Metaphase II (M II) stage (%) was significantly (P<0.05) higher at 1, 5,10 and 15 nM /ml IL-2(54.2, 73.5, 80.0 and 69.6%, respectively) than at 0 nM /ml IL-2(35.7%). In experiment 2, we examined the effect of the addition of l0nM /ml IL-2 or 5% FCS in oocyte maturation. Nuclear maturation rates were significantly(P<0.05) higher l0nM /ml IL-2(80%) than non-treatment(35.7%) and 5% FCS(63.6%) treatment. On the other hand, there were no significant difference in the proportion of oocytes developed to the 2-cell stage after addition of IL-2 and/or FCS. These results suggest that IL-2 supports nuclear maturation of bovine immature oocytes in vitro. Serum-free maturation system using IL-2 might be useful for evaluation of various factors on oocyte maturation.
The effect of the presence or absence of corpus luteum in the ovaries of slaughtered buffaloes was studied for the oocytes recovery and their subsequent maturation and fertilization in vitro. On an average, 0.41 and 0.67 oocytes per ovary were recovered from ovaries with and without corpus luteum, respectively. Immature oocytes were matured in TCM-199 medium. Significant difference was observed in maturation rate between good (74%) and fair (37%) oocytes. However, there was no significant difference in cleavage rate between the two types. The results of this study show that although the presence of corpus luteum in the ovary at the time of recovery significantly affected availability of total oocytes and in-vitro maturation, but fertilization and cleavage remained unaffected under in vitro conditions.
The research of fused oocytes was conducted to investigate the in vitro mejotic maturation of immature oocytes (GV oocytes) fused with oocytes in germinal vesicle breakdown (GVBD oocytes) in the presence of dbcAMP which is known as one of the strong inhibitors to GVBD. The immature oocytes fused together as well as those fused with GVBD oocytes proceeded to GVBD in 3 hr culture in plain medium. But in the medium containing dbcAMP (100$\mu$g/ml), the immature oocytes fused together did not show any GVBD and thus the fusion itself could not affect the inhibitory activity of dbcAMP. However, all of the immature oocytes fused with GVBD oocytes underwent GVBD in 3 hr culture despite of the presence of dbcAMP. When the culture was extended to 20 hr, nearly all of the immature oocytes fused together were still arrested at the GV stage in the presence of dbcAMP. But most of the fused oocytes which had shown GVBD during 3 hr culture developed to metaphase II stage extruding one or two polar bodies regardless of the presence of dbcAMP. In this experiment, it was found that two sets of the metaphase chromosomes were somewhat concomitant with a pair of the polar bodies in the fused egg. Upon the results of the present studies, it is assumed that there may be a maturation promoting factor(s) in the cytoplasm of the GVBD occytes, and this factor(s) possibly nullifies the function of dbcAMP.
In vitro maturation (IVM) of oocytes is the procedure where the immature oocytes are cultivated in a laboratory until they are mature. Since IVM oocytes generally have low developmental competence as compared to those matured in vivo, development of an optimal IVM culture system by fine-tuning culture conditions is crucial to maintain high quality. In-depth knowledge and a deep understanding of the in vivo physiology of oocyte maturation are pre-requisites to accomplish this. Within ovarian follicles, various signaling pathways that drive oocyte development and maturation regulate interaction between oocytes and surrounding somatic cells. This review discusses the sonic hedgehog (SHH) signaling pathway, which has been demonstrated to be intimately involved in folliculogenesis and oocyte maturation. Advances in elucidating the role of the SHH signaling pathway in oocyte maturation will aid attempts to improve the current inferior in vitro oocyte maturation system.
In vitro maturation of denuded porcine immature oocytes can be enhanced by co-incubation with spermatozoa even before fertilization. This study was to determine whether the addition of spermatozoa into the culture medium could influence the nuclear maturation of porcine cumulus-enclosed germinal vesicle (GV) oocytes. Cumulus-oocyte complexes (COCs) were collected from follicles of 3- to 5-mm diameter. Porcine COCs were cultured in tissue culture medium containing spermatozoa. After 48 h culture, oocytes were examined for evidence of GV breakdown, metaphase I, anaphase-telophase I, and metaphase II. The proportion of oocytes reaching at metaphase II was significantly (P < 0.05) increased in the oocytes cultured in media containing spermatozoa compared to those in media without spermatozoa (52.3% vs 12.5%). No difference in the percentage of metaphase II was observed among the different periods of spermatozoa exposure and among the spermatozoa from different species. The proportion of oocytes reaching metaphase II was significantly different between high and low concentrations of spermatozoa. The present study suggests that manunalian spermatozoa contain a substance(s) that improves nuclear in vitro maturation of porcine cumulus-enclosed GV oocytes. Enhancing effect of spermatozoa for in vitro maturation of oocytes is a highly dose-dependent.
The objective of this experiment was to test the effect of EG F on nuclear maturation of pig immature oocytes in vitro. Basic medium used TCM-199 supplemented with 0.2 mM pyruvate, 1 ${\mu}\textrm{g}$/ml estradiol-I7$\beta$ and 25 ${\mu}\textrm{g}$/ml gentamycin, this medium treated with EGF, FSH and FBS. Experiment 1 examined to the effect according to the addition of FSH or EGF (0, 1. 10 and 100 ng EGF/ml) in oocytes maturation. Nuclear maturation rates (M ll %) of 1, 10 and 100 ng EGF/ml (83.0. 8fi.7 and H7.5%) treatments were significantly higher than those of non- and FSH-treated groups (27.3 and 60.3%, p < 0. 001). Experiment 2 examined to the interactive effects of EGF. FSH or FBS during oocytes maturation. Nuclear maturation rates (M ll %) of EGF alone, EGF plus FSH, EGF plus FBS, FSH plus FBS, and EGF plus FSH added FBS treatments (86.7, 90.2, 87.1. 89.6% and 92.6%) were significantly higher than those of non, FSH, and FBS alone treatments (22.3, 52.2 and 42.3%, p < 0.001). Also, cumulus cells expansion of oocytes maturation was examined to total treatments. Normal cumulus cells expansion was shown by FSH plus FBS, EGF or EGF with FBS combination treatments, but cumulus cells of oocyte complexes were still clumped together in EGF-treated groups although they had separated from oocytes. However, EGF showed a positive on nuclear maturation. These results conclude that EGF alone can stimulate nuclear maturation in pig immature oocytes.
This experiment was carried out to determine the possibility of using FDA on the selection of viable bovine immature oocytes. The results obtained in these experiments were summarized as follows; 1. The rates of nuclear maturation (metaphase II) of bovine oocytes according to FDA concentration were 92.5% (37/40) in the control and those rates in the dilution on FDA to 1:400,000, 1:800,000 and 1:1,600,000 were 74.4% (67/90), 80.3% (38/46) and 71.1% (32/45), respectively. 2. The fertilization rate ( 2-cell) in the control was 72.2% (39/54) and those rates in the dilution of FDA to 1:400,000, 1:800,000 and 1:1,600,000 were 28.8% (23/80), 66.7% (32/48) and 62.2% (28/45), respectively. In these results, a, pp.opriate concentration of FDA to bovine immature oocytes was 1:800,000. 3. Effect of FDA treatment to the blastocyst development of bovine oocytes was indicated that control was 22.2% (18/81) and FDA treatment groups which were classified to strong, partial and weak were 21.4% (36/168), 14.5% (9/62) and 0% (0/15), respectively. This result suggested that in vitro development to the blastocyst was severely reduced except strong group according to the FDA fluorescent level (P<0.05) and that using FDA is possible to select of bovine oocytes.
Maturation of oocytes is maintained by complex procedures along with follicular genesis and is a critical step for embryonic development. Purine known as an oocyte maturation regulator is present in follicular fluid. In this study, the roles of guanosine as a strong inhibitor of GVBD and a modulator of cyclic GMP concentration in ooyctes were revealed. Denuded immature oocytes were treated with guanosine, and the maturation rates and cGMP concentration of oocytes were measured. GVBD was blocked in a concentration dependent manner by guanosine, but this effect was reversible. However, GVBD was lagged yet not significant by adenosine. Both guanosine and adenosine modified cGMP concentration in oocytes. The characteristic of the guanosine-treated oocyte was significantly higher cGMP compared with the adenosine-treated oocyes at initial time of the maturation. Based these results, guanosine may be a strong and reversible GVBD inhibitor. Although the precise mechanism of guanosine presently is unclear, the results suggest that guanosine may lead the accumulation of cGMP in oocyte cytoplasm, which in turn suppresses GVBD.
Successful cryopreservation of mammalian oocytes would provide a source of materials for in vitro embryo production. This study was conducted to determine vitrification conditions for bovine immature oocytes using micro-drop method and, to examine maturation, fertilization and development of vitrified bovine immature oocytes. (omitted)
This objective of this experiment was to test the effect of EGF on GVBD and MII of nuclear maturation of pig immature oocytes in vitro. Experiment 1 examined to the effect of EGF on nuclear maturation of pig immature oocytes according to different maturational times. The percentage of GVBD of EGF 10mg/ml treated groups were significantly higher than untreated groups after 24hr (p < 0.001). Experiment 2 examined to the effect of duration of exposure of oocytes to EGF supplement in maturation medium. Nuclear maturation rates (M II) of EGF treated groups (during 0-24: 72.8% and 0-42hr: 84.8%) were significantly higher than 53.5 and 26.1% of EGF treated group (during 24-42hr) and untreated group (p < 0.001). Also, experiment 3 examined to the effect of EGF on nuclear maturation of CEOs or CFOs. Nuclear maturation rate (M II) 84.6% of EGF treated group of CEOs was significantly higher than 53.0, 27.6, and 44.2% of EGF treated group of CFOs and untreated groups of CEOs and CFOs (p < O.001). These results conclude that EGF alone can stimulate GVBD and M II of nuclear maturation in pig immature oocytes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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