An ELISA was established to measure bovine IgG directed against the recombinant antigenic determinant of Nc-p43, a major surface antigen of Neospora caninum. In a previous study, two thirds of the C-terminal of the molecule was expressed as a $6{\;}{\times}{\;}His$ tagged protein (Ncp43p) for ELISA using 2/3 of the N-terminal of SAG1 from Toxoplasma gondii as a control (TgSAG1A). Among 852 cattle sera collected from stock farms scattered nation-wide, 103 sera (12.1%) were found to react with Ncp43p positively, but no positive reaction was observed with TgSAG1A. This study shows that Ncp43p could be available as an efficient antigen for the diagnosis of neosporosis in cattle. Furthermore, it together with TgSAG1A, could be useful for the differential diagnosis of N. caninum and T.gondii infections in other mammals.
In current animal production in Japan, a large surplus of nitrogen and phosphorus is given to animals as their feed which are mostly imported from outside of our own country. Today, an excess of nitrogen and phosphorus from animal manure has been spread out of the area of animal production and the surroundings. These components have become the major reason for eutrophication of ground, surface and inland water. Nutritional studies for the reduction of nitrogen and phosphorus from animal waste has been done by many researchers. The reduction of excess protein in animal feed and the supplementation of deficient essential amino acids to feed have a possibility to increase the biological value of feed and to reduce nitrogen excretion, especially, via urine. The use of phytase activity to degrade phytate and to release utilizable inorganic phosphorus make it possible to cut an excess supply of feed additive inorganic phosphorus and to reduce phosphorus excretion from animal waste.
Helicobacter pylori is the etiologic agent of human gastritis and peptic ulceration and produces urease as the major protein component on its surface. H. pylori urease is known to serve as a major virulence factor and in a potent immunogen. In order to express the recombinant urease at a higher level, a DNA fragment containing the minimal H. pylori urease gene cluster was subcloned into a high copy-number vector. The recombinant H. pylori urease expressed in an E. coli strain that was grown in a rich medium supplemented with added nickel was purified to near homogeneity by using DEAE-Sepharose, Superdex HR200, and Mono-Q (FPLC) columns and the purified enzyme possessed the specific activity of 1255 U/mg. Polyclonal antibodies raised against the purified recombinant H. pylori urease were shown to be very specific when subjected to Western blot analysis, in which crude extracts from the H. pylori ATCC strain and the recombinant E. coli strains expressing various bacterial ureases were exnmined for cross-reactivity.
Helicobacter pylori is the etiologic agent of human gastritis and peptic ulceration and produces urease as the major protein component on its surface. H. pylori urease is known to serve as a major virulence factor and a potent immunogen. Deletion mutageneses were performed in the H. pylori urease accessory genes by using combinations of restriction enzymes and other DNA modifying enzymes in order to assess the function of these accessory gene products in the expression of the active urease. Selective disruptions in the accessory gene regions resulted in complete abolishment of the urease activity, which is consistent with other bacterial ureases. Interestingly, deletions in ureE-containing regions caused reduced expression of the structural enzyme subunits.
The present study was performed to identify pathogenic factors of Chlamydia trachomatis, which invade the host cell membrane. We prepared monoclonal antibody against C. trachomatis and searched for pathogenic factors using this antibody, and subsequently identified the surface components of the elementary body of C. trachomatis, i.e., major outer membrane protein (MOMP), lipopolysaccharide (LPS), and two other surface exposure proteins. These proteins are believed to be important in the pathogenesis of host cell chlamydial infection. Additionally, to identify factors related to the host cell and C. trachomatis, we prepared C. trachomatis infected and non-infected McCoy cell extracts, and reacted these with anti-chlamydial LPS monoclonal antibody. We found that anti-chlamydial LPS monoclonal antibody reacted with a 116 kDa proteinaceous McCoy cell membrane component.
Serum from mouse orally ingested with tissue cyst forming stain (Me49) of Toxoplasma gondii was assayed by Western blot and immunofluorescene assay (IFA) to establish early responses in antigenicity of the parasite in mouse model of foodborne toxoplasmosis. Sera were collected weekly to blot the RH antigen transferred onto nitrocellulose paper after being separated by 12% SDS-PAGE. With the second week serum, 34 kDa protein (p34) was detected uniquely, and all antigens of T.gondii were detected with the sera from 3 or 4 weeks. p34 was not a member of the major surface membrane proteins and confirmed to be localized in the rhoptry by IFA. It was secreted into parasitophorous vacuolar membrane (PVM) during the entry into host cells. 10.3% of sera detected p34, while all the ELISA positive sera detected the band. It has diagnostic usefulness of presumed T.gondii infection. We suggest the name of the p34 protein as ROP9.
Recombinant human bone morphogenic protein-2 (rhBMP-2), which is known as one of the major local stimuli for osteogenic differentiation, was immobilized on the surface of hyaluronic acid (HA)-modified poly$(\varepsilon-caprolactone)$ (PCL) (HA-PCL) scaffolds to improve the attachment, proliferation, and differentiation of human bone marrow stem cells (hBMSCs) for bone tissue engineering. The rhBMP-2 proteins were directly immobilized onto the HA-modified PCL scaffolds by the chemical grafting the amine groups of proteins to carboxylic acid groups of HA. The amount of covalently bounded rhBMP-2 was measured to 1.6 pg/mg (rhBMP/HA-PCL scaffold) by using a sandwich enzyme-linked immunosorbant assay. The rhBMP-2 immobilized HA-modified-PCL scaffold exhibited the good colonization, by the newly differentiated osteoblasts, with a statistically significant increase of the rhBMP-2 release and alkaline phosphatase activity as compared with the control groups both PCL and HA-PCL scaffolds. We also found enhanced mineralization and elevated osteocalcin detection for the rhBMP-2 immobilized HA-PCL scaffolds, in vitro.
In the present study, we exarnined anti-allergic effect of SGBHB in cultured B cells. B cells were prepared from isolated murine splenocytes and activated by co-treatment of anti-CD40 monoclonal antibody and recombinant IL-4 allergens. Anti-allergic effects of SGBHB in activated B cells were determined by measuring B cell surface activated molecules (CD23+ and CD11a+), and expression levels of IL-$1{\beta}$, IL-6, IL-10, TNF-$\alpha$, IgE, and HRF. The major findings are summarized as follows. 1. SGBHB treatment did not produce significant cytotoxic effects on mouse lung fibroblast cells. 2. SGBHB produced significant inhibitory effect on the expression of B cell surface activated molecules (CD23+ and CD11a) in activated B cells. 3. SGBHB treatment significantly inhibited expression levels of IL-$1{\beta}$, IL-6, and TNF-$\alpha$ mRNAs in activated B cells.IL-6 protein levels were significantly decreased by $100{\mu}g/m{\ell}$ of SGBHB treatrrient, and TNF-$\alpha$ protein levels were decreased compared to the control group, but statistically insignificant. 4. SGBHB treatment significantly increased IL-10 at both mRNA and protein levels in activated B cells. 5. SGBHB treatment significantly inhibited levels of IgE production. Thus, the present data suggest that SGBHB has an anti-allergic effect on activated B cells by controlling irnmune responses, and further implicates the possibility on clinical application as a therapeutic agent.
Although some reports have been published on the protective effect of antibodies to Toxoplasma gondii surface membrane proteins, few address the inhibitory activity of antibodies to dense granular proteins (GRA proteins) . Therefore, we performed a series of experiments to evaluate the inhibitory effects of monoclonal antibodies (mAbs) to GRA proteins (GRA2, 28 kDa; GRA6, 32 kDa) and surface membrane protein (SAGI, 30 kDa) on the invasion of T. gondii tachyzoites. Passive immunization of mice with one of three mAbs following challenge with a lethal dose of tachyzoites significantly increased survival compared with results for mice treated with control ascites. The survival times of mice challenged with tachyzoties pretreated with anti-GRA6 or anti-SAG 1 mAb were significantly increased. Mice that received tachyzoties pretreated with both mAb and complement had longer survival times than those that received tachyzoites pretreated with mAb alone. Invasion of tachyzoites into fibroblasts and macrophages was significantly inhibited in the anti-GRA2, anti-GRA6 or anti-SAG 1 mAb pretreated group. Pretreatment with mAb and complement inhibited invasion of tachyzoites in both fibroblasts and macrophages. These results suggest that specific antibodies to dense-granule molecules may be useful for controlling infection with T. gondii.
Suk-Gyun Park;Hyun Ju Lee;Taeksoo Ji;Kyungbaek Kim;Seung-Ho Ohk
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제34권2호
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pp.289-295
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2024
We have developed an aptamer that specifically binds to Porphyromonas gingivalis to reduce the cellular damage caused by P. gingivalis infection and applied it as a biosensor. P. gingivalis is one of the major pathogens causing destructive periodontal disease among the periodontal microorganisms constituting complex biofilms. Porphyromonas gingivalis G-protein (PGP) known to play an important role in the transmission of germs was used as a target protein for the screening of aptamer. The aptamer that has binds to the G-protein of P. gingivalis, was screened and developed through the Systemic Evolution of Ligands by Exponential Energy (SELEX) method. Modified-Western blot analysis was performed with the aptamer which consisted of 38 single-stranded DNA to confirm the selectivity. ELONA (enzyme linked oligonucleotide assay) used to confirm that the aptamer was sensitive to PGP even at low concentration of 1 ㎍/ml. For the rapid detection of P. gingivalis, we constructed a surface plasmon resonance biosensor with SPREETA using the PGP aptamer. It was confirmed that PGP could be detected as low concentration as at 0.1 pM, which is the minimum concentration of aptamer sensor within 5 min. Based on these results, we have constructed a SPREETA biosensor based on aptamer that can bind to P. gingivalis G-protein. It can be used as an infection diagnosis system to rapidly diagnose and analyze oral diseases caused by P. gingivalis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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