It is well known that NtMEK2, a tobacco MAPK kinase, is the upstream kinase of both salicylic acid-induced protein kinase and wound-induced protein kinase. In addition, expression of $NtMEK2^{DD}$, a constitutively active mutant of NtMEK2, is known to induce multiple defense responses in tobacco. In this study, transgenic rice plants that contained an active or inactive mutant of NtMEK2 under the control of a steroid inducible promoter were generated and used to determine if a similar MAPK cascade is involved in disease resistance in rice. The expression of $NtMEK2^{DD}$ in transgenic rice plants resulted in HR-like cell death. The observed cell death was preceded by the activation of endogenous rice 48-kDa MBP kinase, which is also activated by Xanthomonas oryzae pv. oryzae, the bacterial blight pathogen of rice. In addition, prolonged activation of the MAPK induced the generation of hydrogen peroxide and up-regulated the expression of defense-related genes including the pathogenesis-related genes, peroxidases and glutathione S-transferases. These results demonstrate that NtMEK2 is functionally replaceable with rice MAPK kinase in inducing the activation of the downstream MAPK, which in turn induces multiple defense responses in rice.
Hur, Jae-Young;Kang, Gum-Yong;Choi, Min-Yeon;Jung, Jin Woo;Kim, Kwang-Pyo;Park, Sang-Hyun
Molecules and Cells
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v.26
no.1
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pp.41-47
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2008
Mitogen-activated protein kinase (MAPK) signaling is a crucial component of eukaryotic cells; it plays an important role in responses to extracelluar stimuli and in the regulation of various cellular activities. The signaling cascade is evolutionarily conserved in the eukaryotic kingdom from yeast to human. In response to a variety of extracellular signals, MAPK activity is known to be regulated via phosphorylation of a conserved $T{\times}Y$ motif at the activation loop in which both threonine and tyrosine residues are phosphorylated by the upstream kinase. However, the mechanism by which both residues are phosphorylated continues to remain elusive. In the budding yeast, Saccharomyces cerevisiae, Fus3 MAPK is involved in the mating signaling pathway. In order to elucidate the functional mechanism of MAPK activation, we quantitatively profiled phosphorylation of the $T{\times}Y$ motif in Fus3 using mass spectrometry (MS). We used synthetic heavy stable isotope-labeled phosphopeptides and nonphosphopeptides corresponding to the proteolytic $T{\times}Y$ motif of Fus3 and accompanying data-dependent tandem MS to quantitatively monitor dynamic changes in the phosphorylation events of MAPK. Phosphospecific immunoblotting and the MS data suggested that the tyrosine residue is dynamically phosphorylated upon stimulation and that this leads to dual phosphorylation. In contrast, the magnitude of threonine phosphorylation did not change significantly. However, the absence of a threonine residue leads to hyperphosphorylation of the tyrosine residue in the unstimulated condition, suggesting that the threonine residue contributes to the control of signaling noise.
NtMEK2, which is the tobacco MAPK kinase that is upstream of SIPK and WIPK, was identified using the dexamethasone (DEX)-inducible gain-of-function transgenic system. Expression of $NtNEK2^{DD}$, a constitutively active mutant of NtNEK2, leads to HR-like cell death, which indicates that the NtMEK2-SIPK/WIPK cascade controls defense responses in tobacco. However, little is known about the downstream target substrates or defense-related genes that are regulated by the NtMEK2-SIPK/ WIPK cascade. In this study, ACP-based differential display RT-PCR was used to isolate the downstream effectors mediated by the NtMEK2-SIPK/WIPK cascade in $NtNEK2^{DD}$ transgenic plants. The results identified 6 novel differentially expressed genes (DEGs). These included pathogen induced protein 2-4 (pI2-4), monoterpene synthase 2 (MTS2), seven in absentia protein (SINA), cell death marker protein 1 (CDM1), hydroxyproline-rich glycoprotein (HRGP) and unknown genes (DEG45). The induction of these genes was confirmed by RT-PCR of samples obtained from $NtNEK2^{DD}$ plants. Additionally, when compared with other isolated DEGs, the pI2-4, CDM1 and HRGP genes were significantly up-regulated in response to treatment with salicylic acid and tobacco mosaic virus. Taken together, these results suggest that three novel DEGs were regulated by the NtMEK2-SIPK/WIPK cascade involved in disease resistance in tobacco.
Proceedings of the Microbiological Society of Korea Conference
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2007.05a
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pp.120-122
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2007
All living organisms use numerous signal-transduction pathways to sense and respond to their environments and thereby survive and proliferate in a range of biological niches. Molecular dissection of these signalling networks has increased our understanding of these communication processes and provides a platform for therapeutic intervention when these pathways malfunction in disease states, including infection. Owing to the expanding availability of sequenced genomes, a wealth of genetic and molecular tools and the conservation of signalling networks, members of the fungal kingdom serve as excellent model systems for more complex, multicellular organisms. Here, we employed Cryptococcus neoformans as a model system to understand how fungal-signalling circuits operate at the molecular level to sense and respond to a plethora of environmental stresses, including osmoticshock, UV, high temperature, oxidative stress and toxic drugs/metabolites. The stress-activated p38/Hog1 MAPK pathway is structurally conserved in many organisms as diverse as yeast and mammals, but its regulation is uniquely specialized in a majority of clinical Cryptococcus neoformans serotype A and D strains to control differentiation and virulence factor regulation. C. neoformans Hog1 MAPK is controlled by Pbs2 MAPK kinase (MAPKK). The Pbs2-Hog1 MAPK cascade is controlled by the fungal "two-component" system that is composed of a response regulator, Ssk1, and multiple sensor kinases, including two-component.like (Tco) 1 and Tco2. Tco1 and Tco2 play shared and distinct roles in stress responses and drug sensitivity through the Hog1 MAPK system. Furthermore, each sensor kinase mediates unique cellular functions for virulence and morphological differentiation. We also identified and characterized the Ssk2 MAPKKK upstream of the MAPKK Pbs2 and the MAPK Hog1 in C. neoformans. The SSK2 gene was identified as a potential component responsible for differential Hog1 regulation between the serotype D sibling f1 strains B3501 and B3502 through comparative analysis of their meiotic map with the meiotic segregation of Hog1-dependent sensitivity to the fungicide fludioxonil. Ssk2 is the only polymorphic component in the Hog1 MAPK module, including two coding sequence changes between the SSK2 alleles in B3501 and B3502 strains. To further support this finding, the SSK2 allele exchange completely swapped Hog1-related phenotypes between B3501 and B3502 strains. In the serotype A strain H99, disruption of the SSK2 gene dramatically enhanced capsule biosynthesis and mating efficiency, similar to pbs2 and hog1 mutations. Furthermore, ssk2, pbs2, and hog1 mutants are all hypersensitive to a variety of stresses and completely resistant to fludioxonil. Taken together, these findings indicate that Ssk2 is the critical interface protein connecting the two-component system and the Pbs2-Hog1 pathway in C. neoformans.
Neurotrophins regulate many aspects of neuronal function through activation of the high affinity Trk receptors. Shc family proteins are implicated in the coupling of RTK to the Ras/mitogen-activated protein kinase signaling cascade. Here we report that the fourth Shc family member, ShcD, associates with TrkB receptor and regulates BDNF-induced MAPK activation. Yeast two-hybrid assay and Co-IP experiments demonstrate ShcD interacts with TrkB in a kinase-activity-dependent manner. Confocal analysis shows ShcD cololizes well with TrkB in transfected 293T cells. Subsequent mapping experiments and mutational analysis indicate that both PTB and SH2 domains are capable of binding to TrkB and PTB domain binds to TrkB NPQY motif. Furthermore, ShcD is involved in BDNF-induced MAPK activation. In summary, we demonstrate that ShcD is a substrate of TrkB and mediates TrkB downstream signaling pathway.
Kim, Dae-Sung;Lee, Sung-Jin;Lee, Jang-Cheon;Woo, Won-Hong;Lim, Kyu-Sang;Mun, Yeun-Ja
YAKHAK HOEJI
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v.56
no.3
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pp.173-179
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2012
Saussurea lappa (SL) and major compounds, sesquiterpene lactones, have been suggested to possess various biological effects, including anti-tumor, anti-ulcer, anti-inflammatory, anti-viral and cardiotonic activities. Therefore, the ethanol extract of Saussurea lappa root (ESL) is studied for the mechanism of its action in apoptotic pathway. ESL-treated cells manifested nuclear condensation, and fragmentation. ESL also triggered the mitochondrial apoptotic pathway, as indicated by a change in Bax/Bcl2 ratio and caspase-9/-3 activation. ESL induced p38 MAPK/JNK, p53, and ASK1 phosphorylation. ROS scavenger reversed ESL-induced apoptotic cell death via inhibition of caspase-3 and p38 MAPK/JNK phosphorylation. These results suggest that ESL induced apoptosis in HepG2 cells through the ROS-p38/JNK pathway.
Park, Young Jae;Lee, Jong Min;Shin, Soon Young;Kim, Young Ho
BMB Reports
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v.47
no.12
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pp.685-690
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2014
The Ras/Raf/MEK/Erk signaling pathway is important for regulation of cell growth, proliferation, differentiation, survival, and apoptosis in response to a variety of extracellular stimuli. Lack of Erk MAPK activation is observed in several cancer cells despite active activation of Ras. However, little is known about the modulation of Erk1/2 activity by active Ras. Here, we show that overexpression of active H-Ras (H-RasG12R) in NIH3T3 fibroblasts impaired FGF2-induced Erk1/2 phosphorylation, as compared to wild-type cells. Northern blot analysis revealed that prolonged expression of active Ras increased MAP kinase phosphatase 3 (MKP3) mRNA expression, a negative regulator of Erk MAPK. Inhibition of the phosphatidylinositol 3-kinase (PI3K)/Akt pathway abrogated active Ras-induced up-regulation of MKP3 expression, leading to the rescue of Erk1/2 phosphorylation. Our results demonstrated that the Ras/Raf/MEK/Erk signaling cascade is negatively regulated by the PI3K/Aktdependent transcriptional activation of the MKP3 gene.
Shim, Jung Hee;Lim, Jong Woo;Kim, Byeong Kyu;Park, Soo Jin;Kim, Suk Wha;Choi, Tae Hyun
Archives of Plastic Surgery
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v.42
no.1
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pp.11-19
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2015
Background Wound healing is an interaction of a complex signaling cascade of cellular events, including inflammation, proliferation, and maturation. $K^+$ channels modulate the mitogen-activated protein kinase (MAPK) signaling pathway. Here, we investigated whether $K^+$ channel-activated MAPK signaling directs collagen synthesis and angiogenesis in wound healing. Methods The human skin fibroblast HS27 cell line was used to examine cell viability and collagen synthesis after potassium chloride (KCl) treatment by Cell Counting Kit-8 (CCK-8) and western blotting. To investigate whether $K^+$ ion channels function upstream of MAPK signaling, thus affecting collagen synthesis and angiogenesis, we examined alteration of MAPK expression after treatment with KCl (channel inhibitor), NS1619 (channel activator), or kinase inhibitors. To research the effect of KCl on angiogenesis, angiogenesis-related proteins such as thrombospondin 1 (TSP1), anti-angiogenic factor, basic fibroblast growth factor (bFGF) and vascular endothelial growth factor (VEGF), pro-angiogenic factor were assayed by western blot. Results The viability of HS27 cells was not affected by 25 mM KCl. Collagen synthesis increased dependent on time and concentration of KCl exposure. The phosphorylations of MAPK proteins such as extracellular-signal-regulated kinase (ERK) and p38 increased about 2.5-3 fold in the KCl treatment cells and were inhibited by treatment of NS1619. TSP1 expression increased by 100%, bFGF expression decreased by 40%, and there is no significant differences in the VEGF level by KCl treatment, TSP1 was inhibited by NS1619 or kinase inhibitors. Conclusions Our results suggest that KCl may function as a therapeutic agent for wound healing in the skin through MAPK signaling mediated by the $K^+$ ion channel.
We examined the effect of hydrogen sulfide ($H_2S$) in chemical hypoxia-induced injury in mouse hepatocytes. Cell viability was significantly decreased by cobalt chloride ($CoCl_2$), a well-known hypoxia mimetic agent in a time- and dose- dependent manner. Sodium hydrosulfide (NaHS, a donor of $H_2S$) pretreatment before exposure to $CoCl_2$ significantly attenuated the $CoCl_2$-induced decrease of cell viability. $CoCl_2$ treatment resulted in an increase of intracellular ROS generation, which is inhibited by NaHS or N-acetyl-cysteine (NAC, a ROS scavenger), and p38 MAPK phosphorylation, which is also blocked by NaHS or NAC. The $CoCl_2$-induced increase of the Bax/Bcl-2 ratio was attenuated by NaHS, NAC, and SB 203580 (p38 MAPK inhibitor). The $CoCl_2$-induced decrease of cell viability was also attenuated by NaHS, NAC, and SB 203580 pretreatment. Additionally, NaHS inhibited the $CoCl_2$-induced COX-2. Similar to the effect of NaHS, NAC blocked $CoCl_2$-induced COX-2 expression. Furthermore, NS-398 (a selective COX-2 inhibitor) attenuated not only the $CoCl_2$-induced increase of the Bax/Bcl-2 ratio, it also decreased cell viability. Taken together, $H_2S$ protects primary cultured mouse hepatocytes against $CoCl_2$-induced cell injury through inhibition of the ROS-activated p38 MAPK cascade and the COX-2 pathway.
Kim, Ji-Ha;Jeong, Il-Yeup;Lim, Yoong-Ho;Lee, Young-Han;Shin, Soon-Young
BMB Reports
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v.44
no.7
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pp.452-457
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2011
The Egr-1 is an immediate early response gene encoding a transcription factor that functions in the regulation of cell growth, differentiation, and apoptosis. Estrogen has diverse physiological effects, including cellular proliferation and neuroprotection against brain injury. There are two types of estrogen receptors (ERs), $ER{\alpha}$ and $ER{\beta}$. $ER{\alpha}$-induced Egr-1 expression has been extensively studied; however, the role of $ER{\beta}$ is yet not known. In the present study, we investigated whether or not $ER{\beta}$ induces Egr-1 expression in C6 rat glioma cells, which express $ER{\beta}$ but not $ER{\alpha}$. Our results show that $ER{\beta}$ promoted up-regulation of Egr-1 expression via a non-genomic mechanism involving the Raf/MEK1/Erk/Elk-1 signaling cascade.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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